Анаэробная инфекция

Анаэробная инфекция - это инфекционный прцесс, возбудителями которого являются анаэробные микроорганизмы.

Классификация клинических форм анаэробной инфекции лица и шеи:

1. эмфизематозная;

2. отёчная (токсическая);

3. смешанная;

4. гнилостная;

5. флегмонозная.

Характерными патологическими процессами в тканях лица и шеи, как следствие тяжёлых морфологических изменений при анаэробной инфекции являются:

1. некроз тканей;

2. гнилостный распад мышц;

3. образование в поражённых тканях пузырьков газа;

4. тромбоз артерий и вен;

5. гемолиз эритроцитов;

6. резкое нарушение крово- и лимфообращения;

Характерными клиническими признаками операционной раны при анаэробной инфекции лица и шеи являются:

1. сухая рана;

2. зловонный запах со сладковатым оттенком;

3. мимические и жевательные мышцы некротизированы;

4. кожа в области краёв раны имеет характерный "мраморный" оттенок;

Тактика челюстно-лицевого хирурга при поступлении в стационар больного с анаэробной инфекцией лица и шеи заключается в:

1. ускорении процедуры регистрации больного в приёмном покое;

2. проведении диагностики заболевания по правилу "зелёной улицы";

3. определение места выполнения хирургического вмешательства (приемный покой, экстренная операционная, гнойная операционная);

4. изоляции пациента после операции в отдельную палату с соблюдением режима ООИ;

5. извещение начмеда учреждения здравоохранения о наличии такого больного;

Антибактериальная терапия пациентов с тяжёлыми осложнениями гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области

Антимикробные лекарственные средства являются важнейшим компонентом комплексной терапии тяжёлых осложнений гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области. Известно, что ранняя адекватная эмпирическая антимикробная терапия в подобных ситуациях приводит к снижению летальности и частоты осложнений. С учётом этого эмпирическая антимикробная терапия при тяжёлых осложнениях гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области должна назначаться безотлагательно после уточнения диагноза и до получения результатов бактериологического исследования.

Учитывая, что большинство тяжёлых осложнений гнойно-воспалительных процессов челюстно-лицевой области протекает на фоне системного воспалительного ответа микробиологическая диагностика должна включать две базовые составляющие:

1. исследование вероятного гнойно-воспалительного очага;

2. исследование периферической крови.

В тех ситуациях, когда из предполагаемого очага инфекции и из периферической крови выделяется один и тот же микроорганизм, то его этиологическую роль в развитии гнойно-воспалительного процесса следует считать доказанной. При выделении различных возбудителей из очага инфекции и периферической крови необходимо оценить этиологическую значимость каждого из них. При этом следует помнить, что эффективность микробиологической диагностики находится в прямой зависимости от правильности забора и транспортировки патологического материала. В связи с чем, основными требования при забое и транспортировке патологического материала следует считать:

• максимальное приближение к вероятному гнойно-воспалительному очагу;

• предотвращение контаминации забираемого на исследование материала посторонней микрофлорой;

• предотвращение пролиферации микроорганизмов во время транспортировки и хранения забранного материала до начала микробиологического исследования.

При строгом выполнении требований забора материала и использовании современных микробиологических методик положительная гемокультура при септических состояниях, регистрируется более чем в 50% наблюдений. Если выделены типичные патогенны: Staphylococus aureus, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, а также грибы, то для постановки диагноза достаточно одного положительного результата исследования. При выделении микроорганизмов, являющихся кожными сапрофитами, способными контаминировать образец (Staphylococcus epidermidis, другие коагулазопатогенные стафилоккоки, дифтероиды), для подтверждения истинной бактериемии требуются две положительные гемокультуры.

Современные автоматические методы исследования гемокультуры позволяют зарегистрировать рост микроорганизмов в течение 6-8 часов инкубации (до 24 часов), что позволяет ещё через 24-48 часов получить точную идентификацию возбудителя.

Для осуществления адекватного микробиологического исследования крови необходимо строго соблюдать установленный перечень правил:

• кровь для исследования следует забирать до назначения антибиотиков. Если же пациент уже получает антибактериальную терапию, то кровь следует забирать непосредственно перед очередным введением препарата и выполнять исследование на средах, имеющих в своём составе сорбенты антибактериальных препаратов;

• стандартом исследования крови на стерильность является забор материала из двух периферических вен с интервалом до 30 минут, при этом из каждой вены кровь необходимо набирать в два флакона со средами для выделения аэробов и со средами для выделения анаэробов. При наличии подозрений на грибковую этиологию следует использовать специальные среды для выделения грибов;

• кровь для исследования следует забирать из периферической вены (не из артерии). Не допускается забор крови из катетера. Исключением являются ситуации с подозрением на катетер-ассоциированный сепсис. При этом целью исследования является оценка степени кантаминации микробами внутренней поверхности катетера. В подобной ситуации необходимо провести одновременное количественное бактериологическое исследование крови, полученной из интактной периферической вены и из предполагаемого инфицированного катетера. Если из обоих образцов выделен один и тот же микроорганизм, а количественное соотношение обсеменённости образцов из катетера и вены равно или более пяти, то катетер является наиболее вероятным источником инфекции (чувствительность данного метода диагностики составляет более 80%, а специфичность равняется 100%);

• забор крови из периферической вены следует проводить с тщательным соблюдением асептики. Кожу в месте вкола иглы следует дважды обработать раствором йода, концентрическими движениями от центра к периферии в течение минимум одной минуты.

Непосредственно перед забором крови кожу необходимо обработать антисептиком. При венепункции обязательно используют стерильные перчатки и стерильный сухой шприц. Каждую пробу, забирают в отдельный шприц в объёме, рекомендуемом инструкцией производителя флаконов. Крышку каждого флакона со средой перед прокалыванием иглой для инокуляции крови из шприца обрабатывают антисептиком.

На современном этапе для посева крови используют специальные магистрали, позволяющие производить забор крови из вены без помощи шприца – самотёком, под присасывающим действием вакуума во флаконе с питательной средой. Эти системы имеют преимущество перед остальными, так как исключают один из этапов манипуляции – использование шприца, который потенциально повышает вероятность контаминации