
- •Глава 1. Обзор литературы……………………………………………………………………………………………………………...4
- •Глава 2. Материалы и методы исследования………………………………………………………………………………………..28
- •Глава 3. Результаты……………………………………………………………………………………………………………………….39
- •Глава 4. Обсуждение результатов………………………………………………………………………………………………………..46
- •Глава 1. Обзор литературы
- •1.1.1. Регуляция экспрессии генов
- •1.1.1.1. Экспрессия генов и её особенности
- •1.1.1.2. Регуляция экспрессии генов на уровне транскрипции
- •1.1.1.3. Посттранскрипционная регуляция экспрессии генов
- •1.1.2. Проблемы изучения транскриптома
- •1.2. Церебральная ишемия
- •1.2.1. Реакция тканей на снижение уровня кровотока
- •1.2.2. Клеточные реакции при ишемии головного мозга
- •1.2.3. Глутамат-кальциевый каскад
- •1.2.4. Реакция генома на ишемию
- •1.2.5. Комплексины и их возможное участие в глутаматной эксайтотоксичности
- •1. 3. Нейропротекция при ишемии
- •1.3.1 Семакс и pgp
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2. 1. Объект исследования
- •Дистальная окклюзия средней мозговой артерии у крыс
- •2.2. Методы исследования
- •2.2.1. Электрофоретическое разделение рнк
- •2.2.2. Синтез одноцепочечной кДнк
- •2.2.3. Подбор праймеров
- •2.2.4. Полимеразная цепная реакция в реальном времени (Real-time pcr)
- •2.2.5. Анализ уровня экспрессии генов методом от-пцр
- •Глава 3. Результаты
- •3.1. Влияние ишемии на экспрессию гена Cplx2 в коре и подкорковых структурах головного мозга крыс
- •3.2. Влияние семакса на экспрессию гена Cplx2 в коре и подкорковых структурах головного мозга крыс
- •3.3. Влияние pgp на экспрессию гена Cplx2 в коре и подкорковых структурах головного мозга крыс
- •Глава 4. Обсуждение результатов
- •53. Клигуненко е.Н., Дзяк л.А., Площенко ю.А., Емельянова е.А., Зозуля о.А. Нейропротекция в анестезиологии и интенсивной терапии // Международный неврологический журнал, 2008, 2 (18).
2.2.2. Синтез одноцепочечной кДнк
Препараты суммарной РНК использовали для синтеза комплементарной ДНК (кДНК) с использованием реактивов RevertAid First Strand cDNA Sinthesis (MBI Fermentas, Латвия) в реакционной смеси объёмом 20 мкл. Спиртовую смесь, содержащую 5 мкг РНК, в течение 15 минут центрифугировали при 10000 оборотов в минуту, затем промывали 75% этанолом (100 мкл) и центрифугировали 5 минут в том же режиме. Остаток высушивали в концентраторе и растворяли в 12 мкл деионизированной воды, добавляли 1 мкл праймера олиго(dT)18 и в течение 5 минут инкубировали при 70оС, а затем помещали в лёд. Далее добавляли 4 мкл 5х буфера для обратной транскрипции, 1 мкл (20 ед.) ингибитора РНКаз, 2 мкл 10мМ смеси трифосфатов и выдерживали 5 минут при 37оС. Затем в пробу добавляли 200 единиц ревертазы и инкубировали в течение часа при 42оС. Реакцию останавливали 10-минутной инкубацией при 70оС. Пробы одноцепочечной кДНК хранили при -20оС.
2.2.3. Подбор праймеров
Специфичные праймеры к референсным генам Gapdh, Lhda, Rpl3 и двум транскриптам были подобраны с помощью пакета программ OLIGO Primer Analysis Software 6.31 и синтезированы фирмой ЗАО «Евроген».
Таблица 1. Нуклеотидные последовательности праймеров, использованных в ПЦР.
Праймер |
Последовательность праймера |
GeneBank acc. no. |
Позиция нуклеотидов |
Длина ПЦР-продукта |
Gapdh (F) |
5’-TGCCATCAACGACCCCTTCA-3’
|
NM_017008 |
117 - 136 |
188 п.н. |
Gapdh (R) |
5’-ACTCAGCACCAGCATCACCC-3’ |
285 – 304 |
||
Rpl3 (F) |
5’-ATGGGTCCTTGGGCTTCTTG-3’ |
NM_1987532 |
58 - 77 |
239 п.н. |
Rpl3 (R) |
5’-CACAATACCCACAACCACCA-3’ |
277 - 296 |
||
Ldha (F) |
5’-GCGTCTCCCTGAAGTCTCTGA-3’ |
NM_017025 |
726 - 746 |
232 п.н. |
Ldha (R) |
5’-TCCTTGATTCCATAGAGACCCT-3’ |
936 - 957 |
||
Cplx2_v1 (F) |
5’-GGAGGAGTGAGGAGGACGGG-3’ |
U35099 |
24 - 43 |
132 п.н. |
Cplx2_v1 (R) |
5’-CACCAAGCAGGGTAGATAGCAT-3’ |
134 - 155 |
||
Cplx2_v2 (F) |
5’-CTGGCTGAGGGGCGTGATT-3’ |
NM_053878 |
25 - 43 |
172 п.н. |
Cplx2_v2 (R) |
5’-CAGCAACCGTCTAAGCCACTG-3’ |
176 - 196 |
2.2.4. Полимеразная цепная реакция в реальном времени (Real-time pcr)
Реакционная смесь для ПЦР объёмом 25 мкл содержала 0,02 мкл пробы реакции обратной транскрипции, по 5 пкмоль прямого и обратного праймеров, 5x реакционной смеси («Евроген»), включающей буфер, Taq ДНК-полимеразу, набор дНТФ и интеркалирующий краситель SYBR Green I. Амплификация кДНК в присутствии праймеров к генам Cplx2 и ряда генов домашнего хозяйства (housekeeping genes), используемых в качестве референсных - Rpl3 (ген одного из рибосомальных белков), Gapdh (ген глицеральдегидфосфатдегидрогеназы), Ldha (ген лактатдегидрогеназы) - проводилась на приборе Step One Plus (Applied Biosystems).
Каждый образец кДНК анализировался трижды. На графиках зависимости уровня флуоресценции от температуры плавления продуктов амплификации для каждой пары праймеров обнаружен один максимум, соответствующий температуре плавления продукта ПЦР.
Амплификация проводилась в следующем режиме: нагревание до 95оС (10 минут), далее шло 40 циклов следующего состава: денатурация при 95оС - 10 секунд, отжиг праймера при 65оС в течение 15 секунд, элонгация цепи при 72оС - 20 секунд.
Работы по подготовке ПЦР (приготовление растворов, дозирование кДНК и реакционных смесей) проводились в ламинарном боксе. Носики для автоматических пипеток, вода и пипетки предварительно выдерживались под УФ-излучением в течение 15 минут.