
- •Экологическая физиология
- •Глава 1. Проблемы экологии 6
- •Глава 2. Природные экологические адаптации 27
- •Глава 3 Антропогенные воздействия на окружающую среду 90
- •Глава 4 Техногенные факторы в изменении окружающей среды 133
- •Глава 5 Общие патогенетические механизмы токсикоза 194
- •Глава 6 Антиоксидантная система организма 257
- •Глава 7 Экология и адаптация 294
- •Глава 8 Организация экологичесчкого мониторинга и методы иследования 389
- •Глава 9 Экологический стресс 434
- •Глава 10 Принципы детоксикации организма 463
- •Глава 1. Проблемы экологии
- •1.1 Эколого-физиологические исследования
- •1.1.1 Природные факторы среды и их влияние на организм
- •1.1.2. Световое излучение и его действие на организм
- •1.1.3. Влияние магнитного поля на организм
- •1.1.4. Воздушная среда – метеорологические факторы
- •Глава 2. Природные экологические адаптации
- •2.1. Адаптации к температурным условиям
- •2.1.1. Границы температурной выносливости живых организмов
- •2.1.2. Тепловой баланс организмов
- •2.1.3 Температурные адаптации пойкилотермных организмов
- •2.1.4 Элементы регуляции температуры у растений
- •2.1.5 Механизмы терморегуляции у пойкилотермных животных
- •2.1.6 Температурные адаптации гомойотермных организмов
- •2.1.7 Экологические выгоды пойкилотермии и гомойотермии
- •2.1.8 Полярная одышка
- •2.2 Адаптации к условиям освещенности
- •2.2.1 Экологические группы растений по отношению к свету и их адаптивные особенности
- •2.2.2 Роль света в жизни животных
- •2.3 Поддержание водно-солевого гомеостаза
- •2.3.1 Адаптация растений к поддержанию водного баланса
- •2.3.2 Водный баланс наземных животных
- •2.4 Влияние гипоксии на газотранспортную систему человека и животных
- •Глава 3 Антропогенные воздействия на окружающую среду
- •3.1 Основные виды антропогенных воздействий на окружающую среду
- •3.2 Загрязнение атмосферы
- •3.2.1 Основные источники антропогенного загрязнения атмосферы
- •3.2.2 Экологические последствия глобального загрязнения атмосферы
- •3.2.2.1 Возможное потепление климата («парниковый эффект»)
- •3.2.2.2 Разрушение озонового слоя
- •3.2.2.3 Кислотные дожди
- •3.2.3 Основные загрязнители атмосферы и здоровье человека
- •3.3 Антропогенные воздействия на гидросферу
- •3.3.1 Загрязнение гидросферы
- •3.3.2 Экологические последствия загрязнения гидросферы
- •3.3.3 Состояние гидросферы и здоровье человека
- •3.4 Антропогенные воздействия на литосферу
- •3.4.1 Деградация почв
- •3.4.2 Загрязнение литосферы и здоровье человека
- •3.5 Антропогенные воздействия на биотические сообщества
- •3.5.1. Антропогенные воздействия на леса и другие растительные сообщества
- •3.5.2 Антропогенные воздействия на животный мир
- •Глава 4 Техногенные факторы в изменении окружающей среды
- •4.1 Влияние химических факторов окружающей среды на систему крови
- •4.2 Проблема возникновения отравлений фосфорорганическими ингибиторами ацетилхолинэстеразы
- •4.2.1 Характеристика фосфорорганических инсектицидов применяемых в сельском хозяйстве и отравления возникающие в результате их применения
- •4.2.2 Механизм антихолинэстеразного действия
- •4.2.3 Действие на м-холинорецепторы
- •4.2.4 Клинические эффекты антихолинэстеразных средств
- •4.2.5 Антимиорелаксантный эффект
- •4.2.6 Антимиастенический эффект
- •4.2.7 Влияние на вегетативные ганглии
- •4.2.8 Влияние на тонус гладких мышц полых органов
- •4.2.9 Дистантное действие ацетилхолина и его токсические проявления
- •4.3 Токсикоз при почечной недостаточности
- •4.4 Токсикоз при абстиненции
- •4.5 Патологические последствия курения табака
- •4.5.1 Влияние табачных изделий на состояние организма человека и животных
- •4.6 Ожирение как медико-социальная проблема
- •Глава 5 Общие патогенетические механизмы токсикоза
- •5.1 Роль молекул средней массы в патогенезе токсикозов
- •5.1.1 Группы метаболитов со свойствами эндогенных токсинов
- •5.1.2 Биологические эффекты молекул средней массы
- •5.1.3 Биохимические методы определения веществ со свойствами эндогенных токсинов
- •5.1.4 Методы определения внсмм
- •5.2. Микроциркуляторные расстройства
- •5.2.1 Типичные нарушения микроциркуляции
- •5.2.1.1 Внутрисосудистые нарушения
- •5.2.1.2 Нарушение проницаемости сосудов обмена
- •5.2.1.3 Транскапиллярный транспорт
- •5.2.2.1 Внесосудистые нарушения
- •5.3. Перекисное окисление липидов
- •5.3.1 Физико-химические основы свободно радикального окисления
- •5.3.2 Повреждающее действие свободных радикалов
- •5.3.3 Регуляция свободнорадикального окисления
- •5.3.4 Радикалы, встречающиеся в организме
- •5.3.5 Функции ненасыщенных жирных кислот в организме
- •5.3.6 Окисление ненасыщенных жирных кислот
- •5.3.7 Регуляция процессов перекисного окисления ненасыщенных жирных кислот
- •Глава 6 Антиоксидантная система организма
- •6.1 Классификация антиоксидантов
- •1 Антиоксиданты косвенного действия
- •2 Антиоксиданты прямого действия
- •6.2 Ферментные антиоксиданты
- •6.3 Низкомолекулярные вещества
- •6.4 Синтетические антиоксиданты
- •6.5 Структурные аналоги природных антиоксидантов
- •6.6 Синергизм антиоксидантов
- •6.7 Прооксидантные свойства антиоксидантов
- •6.8 Кислородзависимая природа образования свободных радикалов
- •Глава 7 Экология и адаптация
- •7.1 Характер адаптивных сдвигов вызванных химическим загрязнением окружающей среды
- •7.2 Резистентность организма – стратегия выживания
- •7.2.1 Значение изучения резистентности
- •7.2.2 Природа и категории устойчивости животных к заболеваниям
- •7.2.3 Основы иммунологии и микробиологии, защитные силы организма
- •7.2.4 Специфическая и неспецифическая резистентность
- •7.3 Пути повышения защитных сил организма
- •7.3.1 Колостральный иммунитет, факторы его определяющие и корректирующие
- •7.4 Прогнозирование устойчивости животных
- •7.4.1 Устойчивость к жаре
- •7.4.2 Изменение устойчивости
- •7.4.3 Влияние обмена веществ на сопротивляемость
- •7.4.4 Зависимость состояния организма от условий содержания и кормления
- •7.4.5 Внешние и внутренние факторы снижения защитных свойств организма
- •Глава 8 Организация экологичесчкого мониторинга и методы иследования
- •8.1 Мутагенное влияние химических факторов на систему крови
- •8.2 Краткая экологическая характеристика изучаемых районов
- •8.3 Влияние химического загрязнения окружающей среды на морфоцитологические показатели крови
- •8.3.1 Особенности состояния эритроцитов крови при воздействии химического загрязнения окружающей среды
- •8.4 Влияние химического загрязнения окружающей среды на лейкоцитарную формулу крови
- •7.5. Особенности состояния тромбоцитов крови при воздействии химического загрязнения окружающей среды
- •Глава 9 Экологический стресс
- •9.1 Механизм и последствия стресса как нарушение экологического благополучия организма
- •9.1.1 Стресс и продуктивность животных
- •9.1.2. Стресс-факторы, их классификация
- •9.1.3 Механизм развития стресс-реакций
- •9.1.4 Влияние стрессов на здоровье и продуктивность
- •9.1.5 IIрофилактика состояний стресса
- •9.2 Гипоталамо-гипофизарно-адренокортикальная система как одна из ведущих адаптационных систем организма
- •9.2.1 Онтогенетические особенности реакции гипоталамо-гипофизарной-адренокортикальной системы
- •Глава 10 Принципы детоксикации организма
- •10.1 Биотрансформация токсинов в организме
- •10.2 Специфическое лечение токсикозов
- •10.3 Методы профилактики и ослабления течения лучевой болезни
- •10.4 Антидотная терапия и прифилактика отравлений фои
- •10.5 Лечение алкогольного абстинентного синдрома
- •2. Седативная терапия
- •10.6 Неспецифическое лечение токсикозов
- •10.6.1 Применение вакуум-градиентной терапии для лечения лучевых поражений
- •10.6.2 Применение вакуум-градиентной терапии для лечения отравлений фосфорорганическими средствами
- •10.6.3 Применение вакуум-градиентной терапии для лечения хпн
- •10.6.4 Влияние лод на выполнение физической нагрузки
- •Заключение
8.3.1 Особенности состояния эритроцитов крови при воздействии химического загрязнения окружающей среды
Данные, полученные в результате исследования состава крови в динамике, раскрывают определенные закономерности реакции организма млекопитающих на химическое загрязнение окружающей среды. Как в ИЗР, так в УЗР были выявлены достоверные изменения гематологических показателей (р<0,05). В ОЧР отмечались лишь небольшие статистически незначимые колебания со стороны показателей периферического состава крови.
Анализ показателей красной крови выявил вполне определенную тенденцию, указывающую на анемизацию в условиях химического загрязнения окружающей среды. Изменения количества эритроцитов у животных, содержащихся в ИЗР, носили фазовый характер. Так, в исходном состоянии содержание эритроцитов в среднем равнялось 5,2±0,15x1012/л, а на 15, 30, 60, 90-е сутки составляло 4,7±0,16х1012/л; 4,5±0,12х1012/л; 4,2±0,13х1012/л; 3,9±0,15х1012/л. соответственно.
Следовательно, на 15-е сутки от начала исследования количество эритроцитов резко снижалось. В дальнейшем наблюдалось плавное снижение количества эритроцитов, с максимально выраженным изменением их числа к концу срока наблюдений. Количество эритроцитов в крови у кроликов в УЗР по мере продолжения исследований снижалось постепенно. Если в исходном состоянии этот показатель в среднем равнялся 5,2±0,14х1012/л, то на 15, 30, 60, 90 сутки, соответственно, 4,9±0,17х1012/л; 4,7±0,16х1012/л; 4,5±0,13х1012/л; 4,2±0,15х1012/л. Очевидно, что снижение количества эритроцитов в крови исследуемых животных было обусловлено воздействием химического загрязнения окружающей среды. Негативное влияние факторов окружающей среды, обуславливающее тканевую гипоксию, по механизму обратной связи должно стимулировать синтез эритропоэтинов и, соответственно, вызвать усиление эритропоэза. Для подтверждения данного предположения нами изучалось состояние ретикулоцитов крови. При этом у животных, находящихся в УЗР и ИЗР, был выявлен ретикулоцитоз.
У кроликов в ОЧР исходное количество ретикулоцитов в среднем составляло 30,5±0,91%. На 15, 30, 60, 90-е сутки опыта этот показатель равнялся, соответственно, 31,5±0,89 %; 29,8±0,96%; 29,1±0,93%. Очевидно, что увеличение количества ретикулоцитов происходило прямолинейно. Через 15 суток нами выявлено нарастание количества ретикулоцитов и эта тенденция сохранялась до конца исследования. У животных в УЗР исходное количество ретикулоцитов составляло 29,9±0,97 %. На 15, 30, 60, 90-е сутки опыта этот показатель равнялся, соответственно, равнялся 31,6±0,95; 32,1±0,96; 32,9±0,94; 33,8±0,98%, что указывает на равномерное повышение числа ретикулоцитов. У животных, находящихся в ИЗР, исходные показатели количества ретикулоцитов в среднем были равны 29,9±0,89 %. На 15, 30, 60, 90-е сутки наблюдения нами было обнаружено плавное нарастание этого показателя, который равнялся 31,5±0,91; 32,8±0,87; 33,6±0,90; 34,7±0,92% соответственно.
Сопоставление диаграммы концентрации ретикулоцитов крови у кроликов в ОЧР, УЗР и ИЗР, показало, что пик кривой по числу ретикулоцитов крови во всех трех изучаемых районах приходился на 15-е и 90-е сутки исследований. Следовательно, в наших экспериментах было обнаружено нарастание концентрации ретикулоцитов вплоть до 90-х суток, в ОЧР (от 30,5±0,91 до 29,1±0,93%), в УЗР (от 29,9±0,97 до 33,8±0,98%) и в ИЗР (от 29,9±0,89 до 34,7±0,92%). Все это, в условиях дефицита количества эритроцитов, является отражением механизмов повреждения и защиты системы крови в условиях химического загрязнения окружающей среды. При экстремальных воздействиях на организм саморегулирующая система крови формирует защитно-приспособительную реакцию, которая подчиняется ряду общих законов развития. Среди этих законов важнейшим является то, что в условиях нормального течения саморегулирующихся процессов сила максимально возможных защитных приспособлений организма всегда должна быть больше, чем сила максимально возможного отклонения данного конечного приспособительного эффекта от константного уровня. Вторым, важным законом, обеспечивающим приспособление организма к стрессорным факторам, является закон опережающего отражения действительности. Эта закономерность, при последовательном влиянии любого агента внешнего мира на живую материю, может стать сигналом этой конечной жизненно важной реакции, которой замыкается ряд последовательных воздействий.
Значительное увеличение концентрации ретикулоцитов в крови может быть вызвано и продолжительностью воздействия химических загрязнителей на организм животных. Однако, было отмечено, что наиболее высокое содержание в крови ретикулоцитов во время опытов соответствует меньшему количеству эритроцитов, что не компенсирует его дефицита. Это, очевидно, связано с тем, что в условиях выраженной эритроцитопении в организме развивается гипоксия, которая в свою очередь стимулирует эритроцитопоэз.
Таким образом, оценивая и обобщая вышеизложенные результаты исследования состава красной крови, следует отметить, что:
в результате пребывания животных в районах химического загрязнения окружающей среды развивалась тканевая гипоксия, что вызывало усиление кислородно-транспортной функции циркулирующей крови;
накопление продуктов распада эритроцитов стимулировало эритроцитопоэз.
У животных, содержащихся в УЗР, на 15-е сутки выявлено усиление эритроцитопоэза, что привело к восстановлению количества эритроцитов до исходного уровня. У животных в ИЗР, очевидно, эритродиэрез преобладал над эритроцитозом, что и привело к прогрессивному падению количества эритроцитов.
В ходе эксперимента также изучался объем эритроцита. У животных в УЗР исходный показатель составлял 71,6±2,1 мкм3 , а затем наблюдалась тенденция к его уменьшению, на 15, 30, 60, 90-е сутки (68,9±1,9 мкм3; 67,8±1,8 мкм3; 64,4±2,2 мкм;3 63,8±2,3 мкм3 соответственно). В ИЗР изменения в показателях среднего объема эритроцита имели такой же характер, но диапазон колебаний был более выраженным (от 71,1±1,95 мкм3 до 59,1±1,92 мкм3).
У животных в ОЧР средний объем эритроцита в процессе исследования изменялся волнообразно. Он носил фазовый характер, т.е. вначале опыта имелась тенденция к повышению, затем к снижению, и снова к повышению показателя к концу исследования (до опыта 70,6±1,93 мкм3, на 15, 30, 60, 90-е сутки – 73,1±1,88 мкм3; 68,9±1,96 мкм3; 71,5±1,78 мкм3; 69,1±1,97 мкм3 соответственно).
Наряду с изучением среднего объема эритроцитов мы рассматривали и величину разброса эритроцитов по объему. Так у животных, содержащихся в ОЧР, исходный показатель величины разброса эритроцитов по объему составлял 38,6±1,22 мкм3, на 15, 30, 60, 90-е сутки он равнялся 39,1±1,25 мкм3; 37,8±1,21 мкм3; 38,1±1,24 мкм3; 39,3±1,26 мкм3 соответственно.
У животных в УЗР исходный показатель величины разброса эритроцитов по объему был равен 38,7±0,98 мкм3, на 15, 30, 60, 90-е сутки 41,2±0,89 мкм3; 43,1±1,12 мкм3; 44,8±1,05 мкм3; 46,3±1,09 мкм3 соответственно. Животные в ИЗР имели исходный показатель величины разброса эритроцитов по объему 38,5±1,23 мкм3; на 15, 30, 60, 90-е сутки 39,9±1,25; 45,7±1,26; 48,2±1,22; 49,3±1,24 мкм3 соответственно. Таким образом, у кроликов, содержащихся, в УЗР и в ИЗР по мере продолжения исследования величина разброса эритроцитов по объему увеличивалась, что, по-видимому, носило компенсаторный характер, и было направлено на увеличение общей функционирующей поверхности эритроцита. У животных в ОЧР наблюдался фазовый характер и тенденция к волнообразному изменению показателя величины разброса эритроцита по объему.
В процессе эксперимента нами изучен так же показатель гематокрита, указывающий на общий объем эритроцитов. У животных в ОЧР показатель гематокрита изменялся волнообразно, т.е. вначале исследования имелась тенденция к повышению, затем к понижению показателя в конце исследования (исходный показатель равнялся 39,5±1,21%, на 15, 30, 60, 90-е сутки 41,5±1,17; 38,9±1,22; 42,1±1,24; 39,4±1,19%, соответственно).
Величина гематокрита у животных, содержащихся в УЗР, имела тенденцию к уменьшению от исходного значения, равного 40,1±1,12% в относительных единицах. На 15,30, 60, 90-е сутки – 39,3±1,09; 38,3±1,14; 37,7±1,11; 36,4±1,15%, соответственно. Наблюдение за животными в ИЗР также указывало на снижение показателя гематокрита, по сравнению с исходными данными от 40,1±1,22 до 38,5±1,24% на 15-е сутки исследования. Далее, на 30, 60, 90-е сутки этот показатель составлял 36,9±1,23; 34,1±1,25; 32,9±1,24%. Таким образом, у животных, находящихся в районах химического загрязнения окружающей среды (УЗР и ИЗР) наблюдалось снижение показателя гематокрита, начиная с 15-х суток и до конца исследования.
Снижение показателя гематокрита у животных в УЗР и ИЗР было, очевидно, обусловлено наблюдаемой в период всего исследования эритроцитопенией. Таким образом, обнаруженные при морфометрии эритроцитов сдвиги, сводились к следующему:
- в ИЗР у животных начиная с 15-х суток и на протяжении всего исследования отмечалось достоверное снижение показателя гематокрита и среднего объема эритроцита (р<0,05). Эти сдвиги, безусловно, указывают на преобладание фазы эритродиэреза над эритроцитопоэзом, процесса деструкции над репарацией. Аналогичные изменения были выявлены и у животных, находящихся в УЗР однако они были менее значимыми;
- наряду с понижением показателей гематокрита и среднего объема эритроцита, величина разброса эритроцитов по объему имела тенденцию к повышению как в УЗР, так и в ИЗР пребывания животных, однако в УЗР диапазон изменений был менее значительным.
Таким образом, изменение величины разброса эритроцитов по объему указывало на увеличение общей поверхности эритроцита в условиях негативного воздействия неблагоприятных факторов окружающей среды и носило компенсаторный характер.
Изучение содержания гемоглобина в условиях негативного воздействия химических факторов окружающей среды выявило снижение показателя к концу исследования. Так, у животных, содержащихся в ОЧР, исходный уровень концентрации гемоглобина составлял 112,3±2,7 г/л, на 15, 30, 60, 90- е сутки этот показатель, равнялся 113,2±3,1; 114,8±3,3; 110,8±2,8; 113,11±3,4 г/л соответственно. В УЗР, исходный уровень концентрации гемоглобина равнялся 114,3±2,5 г/л. На 15, 30, 60, 90-е сутки 111,8±2,6; 108,9±2,4; 103,8±2,7; 98,9±2,6 г/л соответственно. У животных, содержавшихся в ИЗР, имелась тенденция к плавному снижению содержания гемоглобина (113,1 ±2,8 г/л в начале исследования, на 15,30,60,90-е сутки, соответственно, 109,2±3,1; 107,8±2,9; 102,8±2,6; 96,2±2,7 г/л).
Параллельно со средним значением концентрации гемоглобина в 1 эритроците, нами было исследовано среднее содержание гемоглобина. Так, у животных, содержащихся в ОЧР, исходный уровень среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците составлял 18,4±0,33 pg, на 15, 30, 60, 90-е сутки показатель равнялся 17,7±0,41 pg; 19,3±0,38 pg; 18,9±0,38 pg; 17,9±0,31 pg; в УЗР исходный показатель был равен 18,3±0,36 pg, на 15, 30, 60, 90-е сутки - 17,9±0,34 pg; 17,5±0,38 pg; 16,4±0,35 pg; 16,8±0,37 pg. соответственно.
У животных, содержащихся в УЗР, исходный уровень среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците составлял 18,9±0,31 pg, на 15, 30, 60, 90- е сутки был равен 17,5 ±0,29 pg; 16,3±0,33 pg; 15,9±0,32 pg; 15,1±0,38 pg. Исходный уровень средней концентрации гемоглобина в 1 эритроците у животных, содержащихся в ОЧР, составлял 27,9±0,79 pg, на 15,30,60,90-е сутки равнялся 26,5±0,88 pg; 28,8±0,79 pg; 27,7±0,86 pg; 29,8±0,87 pg. соответственно.
В УЗР исходный уровень составлял 28,1 ±0,79 pg, на 15,30,60,90-е сутки равнялся 27,4±0,78 pg; 26,9±0,72 pg; 26,1±0,76 pg; 26,6±0,71 pg. соответственно. У животных, содержащихся в ИЗР, в течение всего эксперимента наблюдалось плавное снижение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците (от 18,4±0,31pg в начале опыта и до 15,1 ±0,3 pg. в конце исследования), также линейно снижалась средняя концентрация гемоглобина в 1 эритроците (от 27,8±0,79 pg. в начале опыта и до 25,3±0,76 pg. в конце исследования).
Таким образом, изучение состояния гемоглобина в условиях негативного воздействия химических факторов окружающей среды выявило неоднозначные изменения. Так, со стороны средней концентрации гемоглобина в 1 эритроците, существенных изменений во всех исследуемых районах не было обнаружено. Сдвиги показателя на 15-е и 90-е сутки носили достоверный характер (р<0,05). Сопоставление данных среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците позволило заключить:
у животных содержащихся, в УЗР и в ИЗР на 15-е сутки исследования наблюдалась умеренно выраженная анемия, которая очевидно, обусловлена интенсивным процессом эритродиэреза. Эта тенденция прослеживалась до конца исследования;
снижение среднего содержания гемоглобина имело линейный характер, что проявилось к концу эксперимента. В основе снижения показателя гемоглобина лежит, очевидно, ингибирующий эффект действия химических факторов окружающей среды.
Таким образом, прослеживается прямо пропорциональная зависимость сдвигов между количественными и качественными показателями состава крови.
Было проведено исследование эритроцитов крови с микроядрами с целью выявления мутации в эритроне в условиях воздействия на организм химических факторов, загрязняющих окружающую среду. Количество эритроцитов с микроядрами по мере пребывания животных в УЗР и в ИЗР прогрессивно возрастало, у животных же в ОЧР этот показатель не выходил за пределы нормы. В исходном состоянии число эритроцитов с микроядрами у животных, содержащихся в ОЧР, составило 4,8±0,11%, на 15, 30, 60, 90 сутки, соответственно, 4,9±0,23; 4,8±0,85; 4,8±2,1; 4,6±1,6%. У животных в УЗР выявлены аналогичные исходные показатели числа эритроцитов с микроядрами до начала опыта, что равнялось 4,8±0,11 %, на 15, 30, 60, 90-е сутки – 4,7±0,12; 5,1±0,13; 5,6±0,14; 5,4±0,13%. Аналогичные результаты были получены и при исследовании крови животных, находящихся в ИЗР. Так, исходный уровень количества эритроцитов крови с микроядрами в среднем равнялся 4,8±0,11 %, на 15, 30, 60, 90-е сутки опыта этот показатель составлял 4,9±0,12; 5,7±0,14; 6,1±0,11; 5,9±0,13%. Наблюдаемые сдвиги содержания эритроцитов с микроядрами в циркулирующей крови указывали на мутагенный эффект химических факторов, загрязняющих окружающую среду как в УЗР, так и в ИЗР, однако эти сдвиги у животных в ИЗР были более значительны и достоверны (р<0,05).
Анализ микронуклеограммы эритроцитов крови кроликов, содержащихся в УЗР и в ИЗР, также указывает на усиление процесса мутации в хромосомном аппарате клеток красной крови в условиях химического загрязнения. Так, индекс сдвига микронуклеограммы у животных в УЗР в начале опыта равнялся 0,302±0,01%, а на 15, 30, 60, 90-е сутки составлял 0,273±0,02; 0,256±0,03; 0,257±0,03; 0,253±0,03% соответственно. Снижение индекса сдвига микронуклеограммы за счет достоверного увеличения содержания эритроцитов с тельцами Говелл-Жолли (от 76,6±1,4% до 79,6±1,6%) и, соответственного, уменьшения эритроцитов с пылинками Вайденрайха (от 4,7±0,11 до 3,9±0,09%), штриховатостью Негелли (от 7,6±0,14 до 6,8±0,16%) и кольцами Кебота (от 11,1 ±0,21 до 9,7±0,19% на 90-е сутки эксперимента). Индекс сдвига микронуклеограммы на 15-е сутки от начала опыта мало отличался от исходного значения (0,305±0,01 и 0,270±0,02%) и не носил статистически достоверных значений. Однако, в последующие сроки, наблюдалось значительное снижение показателя, что свидетельствовало об усилении мутагенного эффекта и увеличении числа эритроцитов с микроядрами.Аналогичные данные получены у животных в ИЗР, однако степень изменения показателей носила более выраженный характер. Также как и у животных в УЗР, у животных находящихся в ИЗР, уже на 15-е сутки опыта отмечались достоверные сдвиги (р<0,05). в микронуклеограмме (от 0,305±0,01% в начале исследования до 283±0,02; 0,233±0,03; 0,237±0,03, 0,243±0,03% на 15, 30, 60, 90-е сутки). Также отмечалось увеличение относительного количества эритроцитов с микроядрами в виде телец Говелл-Жолли от 76,6±1,4 до 80,4±1,6% на 90-е сутки эксперимента. Выявлено уменьшение количества эритроцитов с микроядрами в виде пылинок Вайденрайха от 4,7±0,11 до 3,4±0,09%, штриховатостью Негелли от 7,6±0,14 до 6,7±0,11%, кольцами Кебота от 11,1 ±0,21 до 9,5±0,19% на 90-е сутки исследования.
Таким образом, если определение концентрации эритроцитов, ретикулоцитов, содержания гемоглобина, размеров эритроцитов указывает на общетоксическое действие, то увеличение количества эритроцитов с микроядрами выявило мутагенное воздействие на хромосомный аппарат клеток крови в условиях пребывания животных в районах химического загрязнения окружающей среды.
Для полного представления об ответной реакции организма на негативное воздействие химического загрязнения окружающей среды мы считаем целесообразным выбор объекта исследования с более низким порогом восприятия и ещё не полностью сформировавшимися структурами образованиями. Исходя из этого, нами были изучены гематологические показатели у крольчат в динамике. Так, количество эритроцитов у 30-ти сутки крольчат в ОЧР составляло 4,7±0,12х1012/л, на 60-е и 90-е сутки 4,2±0,13х1012/л; 4,3±0,15х1012/л соответственно. Крольчата, содержащиеся в УЗР, имели следующее количество эритроцитов: на 30-е сутки – 5,2±0,16х1012/л; на 60-е сутки – 4,5±0,14х1012/л; на 90-е сутки – 5,02±0,15х1012/л. У крольчат в ИЗР количество эритроцитов составляло 3,9±0,14х1012/л; 3,6±0,16х1012/л; 3,8±0,12х1012/л, соответственно.
Параллельно с изучением среднего объема эритроцитов мы рассматривали величину разброса эритроцитов по объему. Так, у крольчат в ОЧР, этот показатель был равен на 30-е сутки – 45,7±1,26 мкм3 , на 60-е сутки – 48,2±1,22 мкм3, на 90-е сутки – 49,3±1,24 мкм3 соответственно. У крольчат в УЗР показатель был равен на 30-е сутки – 45,7±1,26 мкм3; на 60-е сутки – 48,2±1,22 мкм3; на 90-е сутки – 49,3±1,24 мкм3 соответственно. У крольчат в УЗР показатель разброса эритроцитов по объему на 30-е сутки – 37,02±0,21 мкм3; на 60-е сутки – 40,2±1,22 мкм3; на 90-е сутки – 36,2±1,24 мкм3, т.е. имел место фазовый характер изменений. У крольчат в ИЗР этот показатель на 30, 60, 90-е сутки равнялся 46,6±1,26 мкм3; 46,1± 1,22 мкм3; 47,3±1,24 мкм3 соответственно. Так же, как и у животных в УЗР он имел фазовый характер.
В ходе исследования нами изучался показатель гематокрита. У крольчат в ОЧР показатель гематокрита на 30-е сутки был равен 36,9±1,23%, на 60-е сутки – 34,1±0,25%, на 90-е сутки – 32,9±1,24% соответственно. В УЗР крольчата имели показатель гематокрита равный 41,1±1,29; 34,21±1,27; 34,1±1,31%; в ИЗР – 31,7±1,24, 28,6±1,25, 28,9±1,21% соответственно. Таким образом, показатель гематокрита у крольчат в ОЧР и в УЗР имел тенденцию к снижению, а в ИЗР изменения носили фазовый характер. Так же, как и у взрослых кроликов, у крольчат имелись определенные сдвиги в морфометрии эритроцитов. Во всех изучаемых районах у крольчат отмечалось снижение показателя гематокрита и среднего объема эритроцитов, однако, величина их разброса имела тенденцию к повышению, что, по-видимому, указывает на увеличение общей поверхности эритроцита.
Нами было исследовано состояние гемоглобина у крольчат, находящихся во всех изучаемых районах. Так, у крольчат в ОЧР, на 30-е сутки концентрация гемоглобина составляла 109,8±2,9х1012/л; на 60-е сутки - 102,8±2,6х1012 /л; на 90-е сутки – 96,2±2,7х1012/л. В УЗР этот показатель был равен на 30-е сутки -129,3±2,9х1012/л.; на 60-е сутки - 106,2± 2,7х1012/л;., на 90-е сутки 124,8±2,3х10,2/л. В ИЗР 93,5±3,69х1012/л; 89,1±3,67х1012/л; 92,8±3,71х1012/л соответственно. В ОЧР и в УЗР у крольчат концентрация гемоглобина носила фазовый характер изменений. Было исследовано среднее содержание гемоглобина в 1 эритроците. Так, у крольчат в ОЧР показатель равнялся 16,3 ±0,33 pg. на 30-е сутки, 15,9±0,32 pg на 60-е сутки, и 15,1±0,3 pg на 90-е сутки исследования. В УЗР, соответственно, 18,9±0,29 pg; 17,3±0,31 pg; 21,3±0,28pg, а в ИЗР – содержания гемоглобина в 1 эритроците составило 14,9±0,31pg; 14,4±0,33 pg; 13,9±0,29 pg. соответственно.