- •Классификация продуктов биотехнологии.
- •Получение накопительной культуры.
- •Выделение чистой культуры.
- •Рассев шпателем (метод Коха):
- •Рассев петлей (метод истощающего штриха):
- •Определение чистоты выделенной культуры.
- •Основными объектами биотехнологии являются м/о т. К.:
- •Виды микроорганизмов используемые в биотехнологии.
- •Подходы к генетическому изменению объектов биотехнологии, in vivo.
- •Отбор случайных мутаций.
- •Отбор среди мутантов с определенным фенотипом.
- •Создание биологических штаммов in vitro.
- •1972 Г. – начаты исследования по ги в лаборатории Берга. Получена первая рекомбинантная днк, которая представляла собой фрагмент вируса sv 40, фрагмент e. Coli, фрагмент оперона.
- •Инструментами ги являются:
- •Методы выделения генов.
- •Выделение генов из природных (нативных) днк.
- •Синтез гена на м-рнк, как матрице (получение комплемента (к- днк).
- •Классификация векторных молекул для бактериальных клеток в зависимости от цели клонирования.
- •Клонирование в клетках Bacillus subtilis.
- •Искусственная бактериальная хромосома.
- •В молекуле на основе фаговых днк м. Б. Получены на основании 1-нитевых фагов. Это м 13, fd, f1 и др.
- •Векторы для клонирования в клетках животных.
- •Векторы для клонирования высших растений.
- •Способы введения рекомбинантных днк в клетку.
- •Культивирование биотехнологических объектов.
- •Преимущества непрерывного культивирования:
- •Твердофазная ферментация (тфф).
- •Получение белка одноклеточных организмов (боо).
- •Кормовые дрожжи.
- •В настоящее время пробиотики как биотехнологический продукт делятся на несколько типов:
- •Основы инженерной энзимологии.
- •Иммобилизированные ферменты:
- •Клеточная инженерия
- •Культуры каллусных клеток
- •Получение протопластов
- •Культивирование протопластов
- •Слияние протопластов
- •Гибридизация соматических клеток
- •Культивирование животных клеток
- •Культуральные системы животных клеток
- •50 Пересевов, которые затем трансформируются в постоянные (переви-
- •Первичные культуры
- •0,25 % Трипсин, 200−2000 ед./мл коллагеназа) дезагрегации. В случае
- •Постоянные культуры
- •1,5−3 Раза), по снижению зависимости от сыворотки и возможности под-
- •Типы культуральных систем
- •Монослойные культуры
- •Суспензионные культуры
- •0,01 % Эдта с последующим длительным периодом адаптации, сопро-57
- •Монослойное культивирование на микроносителях
- •Питательные среды
- •Клеточный цикл и цикл роста
- •24 Часа. При отсутствии каких-либо ограничений клетки равномерно
- •Синхронизация клеток
Векторы для клонирования в клетках животных.
SV 40 – обезьяний вирус – содержит 2-нитевую ДНК размером 5 тыс. пар оснований. Он может с различным результатом размещаться в клетках макак резус и в клетках грызунов. При заражении обезьян данный вирус проходит литический цикл развития, т. е., после проникновения в цитоплазму клетки, происходит раздваивание вируса. ДНК попадает в ядро клетки, где начинается транскрипция ранних, а затем и поздних генов.
Ранние гены обеспечивают образование вирусных НК и обозначаются как T, t-антиген.
Поздние гены – обеспечивают образование 3 белков вирусного капсида VP 1, VP 2, VP 3.
В результате происходит образование зрелых вирусных частиц, ч/з 30 мин – лизис инфицированной клетки. Клетки, в которых происходит литический цикл развития – клетки пермиссивные.
Если SV 40 попадает в организм грызуна, он встраивается в одну из хромосом и развивается. Наблюдается неупластическая трансформация – непермиссивные.
Необходимо наличие точки начала репликации, наличие регуляторной последовательности, для начала транскрипции и-РНК.
Суммарные размеры рекомбинантной ДНК не должны быть более 5 тыс. пар оснований.
Либо в составе рекомбинантной ДНК, либо в составе генома клетки д. б. гены, которые обеспечивают образование белков малого и большого антигена, а также белков вирусного капсида.
В настоящее время существует 3 вектора на основе SV 40.
1. Векторы трансдуцирующие – рекомбинантные ДНК вводятся в пермиссивные клетки, которые образуют вирусные частицы.
2. Векторы плазмидные - рекомбинантные ДНК вводятся в непермиссивные клетки, в которые она за определенное время либо встраивается, либо наследуется как плазмида.
3. Векторы пассивные (трансформирующие векторы) – служат для введения ДНК в клетки, обеспечивая ее встраивание в хромосому, но сам вектор в клетке не наследуется.
С учетом этих подходов можно использовать 2 приема для введения рекомбинационной ДНК в клетку. В составе вирусной ДНК на чужеродном фрагменте можно заменить либо ранние области генома, либо поздние. В случае, если идет замещение поздней области генома, необходимо использовать вирусы-помощники, прошедшие постртрасвекции или заражение 2 типовыми вирусными частицами, которые различаются дефектам в ранней или поздней области гена. Образуется потомство с частицами без рекомбинантных ДНК и с частицами вируса-помощника.
Замещение ранней области генома – используются специальные клеточные линии (cos линии клеток) в которой содержатся гены связанные с образованием малого и большого Т-антигена и при попадании в такие клетки рекомбинантных ДНК инициируется репликация такой ДНК, синтезируются белки вирусной оболочки и образуются вирусные частицы, все из которых содержат рекомбинационные ДНК.
Также можно использовать ретровирусы, осповакцины, папиломовирусы, аденовирусы. Для клонирования в клетке-носителе - бакуловирусы.
Векторы для клонирования высших растений.
Сегодня используется 1 вектор. Он построен на основе Ti-плазмиды. Она содержится у бактерий Agrobacterium tumefacies при инфицировании корней двудольных растений (виноград, олива, роза) может вызывать образование корончатых галлов (опухолей). Другие векторы – ДНК некоторых вирусов, хлоропласты и митохондрии ДНК – в теории.
Векторы на основе Ti-плазмиды были предложены в 1980 г. Ti-плазмиды крупные, различаются от 200 и более тыс. пар оснований, и выделением в ее составе 4 функциональных групп генов.
Tra – гены отвечающие за передачу Ti-плазмиды м/у клетками.
Rep – гены связанные с репликацией.
Vir – отдельно; гены вирулентности – их продукты отвечают за образование опухоли, т. е. они стимулируют синтез ИУК (индолилуксусная кислота).
Ок. 10% тела Ti-плазмиды – Т-ДНК - этот фрагмент способен передаваться растительной клетке и случайным образом встраиваться в одну из хромосом. Важным для вырезывания Ti-плазмид явл. наличие на концах Т-ДНК коротких последовательностей размером 25 пар оснований. За счет активности продуктов vir генов в пределах этих последовательностей происходит вырезание Т-ДНК и перенос ее в растительную клетку. Исходя из этого были сконструированы 2 типа векторов используемые для клонирования в растительных клетках.
Общим подходом для конструирования в этих векторах – клонированный фрагмент или чужеродная ДНК вводится в векторную молекулу (чаще E. Coli), затем такая рекомбинантная ДНК переносится в клетку агробактерий и уже из них она м. б. введена в растительную клетку.
1 тип векторов – о-интегративные – для их получения в клетке E. Coli конструируется промежуточный вектор. Это плазмида в составе которой есть чужеродна ДНК, селективный маркер, область гомологии с фагом Т-ДНК. Такая конструкция вводится в клетку агробактерии, в клетке агробактерии есть рецепторы Ti-плазмиды в составе которой есть vir гены, обладающие гомологией с Т-ДНК, которая ограничена последовательностью 25 пар оснований. В клетках агробактерий, в результате рекомбинации по области гомологии образуется интегративный вектор, в который входит и клонированная ДНК, в которую входит последовательность из 25 пар оснований и vir гены. Т. е., есть все возможности, чтобы последовательность, ограниченная 25 парами оснований была вырезана и передана растению.
2 тип векторов – бинарные векторы – здесь также используются 2 типа плазмид. В клетках агробактерий получена хелперная плазмида, которая создает гены вирулентности. В клетках E. coli получают бинарный вектор, который соединяет чужеродную ДНК, ограниченную 25 парами оснований. При совмещении этих плазмид в векторах бактерий продукт в транс- положении способен вырезать чужеродную ДНК и переносить ее в клетки агробактерий.
