
- •246019, Г. Гомель, ул. Советская, 104
- •246029, Г. Гомель, просп. Октября, 50
- •1Требования образовательного стандарта………………………...... 6
- •2 Учебная программа ………………………………………………… 10
- •3 Тексты лекций………………………………………………………. 14
- •4 Тематика практических занятий…………………………………... 219
- •5 Глоссарий ………….……………………..……………………........ 254
- •1 Требования образовательного стандарта
- •2 Учебная программа
- •Раздел 1 введение Тема 1 Становление и основные направления развития
- •Тема 6 Конечные стадии получения продуктов
- •Раздел 5 ферментная технология
- •Тема 7 Применение ферментов в биотехнологических
- •Раздел 6 биотехнология в медицине,
- •Тема 8 Биотехнология в пищевой промышленности и
- •Тема 9 Использование биотехнологических процессов в
- •Раздел 7 клеточная инженерия
- •Тема 10 Использование культуры клеток организмов в
- •Тема 14 Клонирование генов.
- •Тема 15 Анализ фрагментов днк и определение полных
- •Раздел 9 достижения современной
- •Тема 16 Гены и геномы (геномика).
- •Тема 17 Успехи биотехнологии и генетической инженерии в
- •Тема 18 Биотехнология и окружающая среда.
- •2 Развитие биотехнологии в снг.
- •3 Развитие биотехнологии в Беларуси.
- •1. Путем использования культур клеток растений или животных,
- •2. Путем использования микроорганизмов, при необходимости
- •3. Путем использования измененных методами генетической
- •1 Микроорганизмы как основные объекты биотехнологии.
- •2 Селекция биотехнологических объектов.
- •1 Микроорганизмы как основные объекты
- •1. Одноклеточные организмы, как правило, характеризуются
- •2. Особое внимание как объекты биотехнологических разработок
- •3. Определенное внимание уделяется таким объектам
- •2 Селекция биотехнологических объектов.
- •1 Субстраты для культивирования биообъектов.
- •2 Сырьевые материалы и перспективы биотехнологии.
- •1 Субстраты для культивирования биообъектов. Питательные среды для выращивания объектов биотехнологии,
- •2 Сырьевые материалы и перспективы биотехнологии.
- •1 Биореакторы.
- •2 Конструкция биореакторов.
- •3 Специализированные ферментационные процессы.
- •1 Биореакторы.
- •1 Отделение биомассы.
- •1. Флотация. Метод используется в том случае, если клетки
- •2. Фильтрация. Различны применяемые в настоящее время
- •3. Центрифугирование. Данный способ требует более
- •2 Методы разрушения клеток.
- •3 Отделение и очистка продуктов.
- •4 Концентрирование, модификация, стабилизация
- •1. Биотехнология маломасштабного производства;
- •2. Биотехнология крупномасштабного производства.
- •2 Производство молочных продуктов.
- •3% Закваски йогурта. Главную роль здесь играют бактерии
- •3 Производство хлебопродуктов.
- •4 Бродильные производства, получение белковых
- •1. Они растут гораздо быстрее, чем растения или животные:
- •2. В зависимости от выращиваемых микроорганизмов в качестве
- •2 Производство и применение гормонов.
- •43 Диаметр опухоли уменьшился на 50%. Однако действие
- •191 Аминокислотного остатка, и имеющий молекулярную массу
- •22000. Он образуется и секретируется передней долей гипофиза и
- •3 Ферменты.
- •3600 Раз по сравнению с нативным ферментом. Все перечисленное
- •4 Иммунологический анализ.
- •1% И редко более 2%) использования солнечной энергии при
- •2•1011 Т. Из них приблизительно 1,2•1011 т составляет древесина (в
- •2 Производство этанола.
- •0,65 Л спирта, а из 1 кг крахмала - 0,68 л спирта.
- •12%. Она зависит от штамма дрожжей и начальной концентрации
- •3 Получение метана.
- •20 До 50%. Состав газа существенно изменяется в зависимости от
- •2 Улучшение сортов растений.
- •3 Биологическая фиксация азота бобовыми культурами
- •4 Биологический контроль.
- •1. Отходы производств, основанных на использовании
- •2. Отходы химической промышленности.
- •3 Отходы молочной промышленности, производства
- •4 Биодеградация нефтяных загрязнений, пестицидов и
- •30% Поверхностно-активного соединения. К числу остальных
- •1 Бродильное производство растворителей.
- •2 Производство органических кислот.
- •3 Производство аминокислот.
- •0С и при рН 1,2 на пирите (Fe s2) и, по-видимому, окисляет только
- •2 Биополимеры.
- •1. Химический состав полисахаридов зависит от метаболических
- •2. При переработке происходят изменение и разрушение
- •3. Количество получаемого растительного продукта зависит от
- •1. Потенциальный объем годового производства продукта и спрос
- •2. Уникальность свойств данного продукта по сравнению с
- •3. Экономичность производства и предполагаемую длительность
- •15•06. Ксантан был первым микробным полисахаридом, который
- •3 Биоповреждение материалов.
- •XX в. Немецкие ученые X. Фехтинг (1892), с. Рехингер (1893), Дж.
- •2 Методы и условия культивирования изолированных
- •In vitro большое влияние оказывают физические факторы —свет,
- •3 Дифференцировка каллусных тканей.
- •1. Высокий коэффициент размножения. Одно растение герберы
- •2 Оздоровление посадочного материала.
- •3 Перспективы использования клонального
- •130 Млн. До 513 млн. Мировыми лидерами в этой области являются
- •4 Криосохранение.
- •90 % Общего объема клетки, т.Е. Клетка представляет собой как бы
- •11), Между цепочками –через
- •5’3’ 3’5’ Рис. 12. Модель двухцепочечной структуры днк
- •2 Реализация генетической информации.
- •3 Свойства генетического кода.
- •1 Принцип действия и функция рестриктаз.
- •2 Виды рестриктаз.
- •1 Принцип действия и функция рестриктаз.
- •2 Виды рестриктаз.
- •2 Построение рестрикционных карт днк.
- •3 Метод Саузерн-блот гибридизации.
- •2 Простейшие плазмидные векторы pSc101 и pBr322.
- •3 Плазмидные векторы усложненной конструкции.
- •2,7 Кб селекционным маркёром является ген резистентности к
- •10 Сайтов рестрикции. В результате инсерции (вставки) чужеродной
- •2 Создание генных библиотек и их использование,
- •3 Методы скрининга.
- •2 Генная дактилоскопия.
- •3 Методы секвенирования фрагментов днк.
- •2, 6, 11 И 16 нуклеотидов от меченого конца, как в случае,
- •3' Цепи разделяют и получают препарат одной из них
- •1. Д ен ат ур ац ия. Инкубационную смесь, в которой содержится
- •2. Г иб ри ди за ци я п ра йм ер ов. Температуру снижают до 50 с.
- •3. П ол им ер из ац ия. Инкубационную смесь нагревают до
- •1993Г. Кэри Мюллис (k. Mullis) был удостоен звания лауреата
- •2 Использование пцр в диагностике наследственных
- •3 Пцр и направленный сайт-специфический мутагенез.
- •20 И 50 повторами цтг, образцы 2-4 –члены семьи с нормальными
- •1 Определение нуклеотидных последовательностей в
- •2 Аннотация расшифрованной последовательности. После определения нуклеотидной последовательности встает
- •3 Характеристика геномов прокариот. На сегодняшний день завершена расшифровка
- •4 Характеристика геномов эукариот. Эукариоты по сравнению с прокариотами имеют низкую
- •100000 Генов. Однако, в результате проведенных исследований в
- •14 Килобаз, так как более чем 80 интронов удаляются из
- •5%. По крайней мере 50% генома приходится на транспозон
- •5 Минимальный геном необходимый для жизни.
- •1 Основные этапы получения трансгенных животных.
- •2 Получение трансгенных животных с необходимыми признаками.
- •3 Генная терапия.
- •1 Основные этапы получения трансгенных животных.
- •37, Представленный ниже);
- •2 Получение трансгенных животных с необходимыми
- •31% При дозе 13 мг в день. Разработаны формы препарата
- •VIII в крови человека. Это позволило успешно решить проблему
- •Vitro); 2 –введение генной конструкции (микроинъекция в пронуклеус); 3 –пересадка
- •1 Т сыра из коровьего молока.
- •3 Генная терапия.
- •1984 Г. После серьезных клинических испытаний на токсичность
- •2 Получение антибиотиков на основе генно-инженерных
- •Vitreoscilla приходилось примерно 0,1% всех клеточных белков s.
- •3 Получение новых вакцин.
- •1 Получение трансгенных растений.
- •Inducing—индуцирующие опухоль). Ti-плазмиды —это
- •2 Применение методов генетической инженерии для
- •3 Повышение устойчивости растений к болезням и
- •4 Перспективы использования трансгенных растений. Скорость, с которой генно-инженерная биотехнология осваивает
- •260), Сои (более 200), хлопчатника (более 150), тыквенных растений
- •1992 Году в Рио-де-Жанейро, каждая страна, подписавшая
- •3’ Тагтатцггц-5’.
- •3’Ааацаацтаг т тгтагааацаццатцагта-5’ 5’т т тгтг гатцаацатцтт тгтг г тагт цат-3’ –. Один из вариантов решения: 3’гцаггагаацаагцг-5’ 5’цгтццтцтtг т тцгц-3’ Тест 4
- •2. Для фракций на геле, полученных после разрезания сразу двумя
- •10. Ген для белка β-тубулина был
- •11. Фрагмент человеческой днк
- •12. Исследователи для клонирования важного фрагмента
- •20. Геном Drosophila melanogaster, состоящий из четырёх
- •21. В ходе создания геномной библиотеки человека использовали
- •1. Что называется вектором?
- •In vitro (лат.), "в пробирке" —биологические процессы,
- •In vivo —выращивание живого материала в естественных условиях.
- •In vitro. У некоторых ретровирусов (см.) о. Т. Является мономером, у других — димером.
- •1950 Г. И лежит в основе классической модели днк Уотсона—Крика.
- •I и др., а также путем удаления однонитчатых концов с помощью s1-нуклеазы
- •2%. У эукариот молекулы рнк, как правило, транскрибируются в виде больших
- •4 Типов реакции, подвергаются электрофорезу (см.) в полиакриламидном геле, и
- •90 Нуклеотидов), обеспечивающая перенос аминокислот к рибосомам (см.) для
- •4. Изменение наследственных свойств клетки в результате проникновения в нее
- •In vitro путем обработки эксплантов или добавления в питательную среду
2, 6, 11 И 16 нуклеотидов от меченого конца, как в случае,
рассмотренном на рисунке выше, то обработка данной цепи ДНК
реагентами, разрушающими Г, приведёт к образованию меченых
фрагментов длиной 2, 6, 11 и 16 нуклеотидов (при этом, естественно
Химическим путем разрушают одно из четырех
оснований, в результате чего происходит расщепление
цепи в соответствующих точках. Условия реакции
подбирают таким образом, чтобы в каждой точке
расщеплялись только некоторые из цепей; при этом
получается набор фрагментов разной длины
Радиоактивная метка
5'
3'
5'
Двухцепочечная ДНК
3'
5'
3' Цепи разделяют и получают препарат одной из них
Т А Г Ц
Одноцепочечная ДНК
С помощью электрофореза в геле фрагменты разделяются
по размеру; те из них. которые содержат радиоактивную
метку, оставляют «отпечатки» на рентгеновской пленке.
По положению этих отпечатков можно определить, какое
именно основание было разрушено при образовании
каждого из радиоактивных фрагментов
Радиоавтограф геля
Т А Г Ц
Последователь
ность
Т
Т
А
Г
А
Ц
Ц
Ц
Г
А
Т
А
А
Г
Ц
Ц
Ц
Г
Ц
А
Длинные
фрагменты
Короткие
фрагменты
320
образуются еще и фрагменты длинной 3 и 4 нуклеотида, но эти фраг-
менты, расположенные между остатками Г, будут не меченными).
Наборы меченых фрагментов, образующихся при каждой из четырёх
реакций, подвергают электрофорезу в соседних дорожках
полиакриламидного геля, при этом происходит разделение
фрагментов ДНК в соответствии с их размерами. Затем проводят ра-
диоавтографию геля. Набор полос, регистрируемых на рентгеновской
плёнке, «читают», определяя, таким образом, нуклеотидную
последовательность ДНК. Так в примере, представленном на
рисунке стр. 164, после-довательность цепочки ДНК от меченого
конца будет следующая: 5'-АЦГЦЦЦГААТАГЦЦЦАГАТТ-3'.
Для анализа последовательностей ДНК широко используется
также метод Сэнгера, основанный на использовании дидезокси нук-
леотидов.
На рис. 27 приведена радиоавтография полиакриламидного геля,
полученного в результате секвенирования по методу Сэнгера
небольшого фрагмента ДНК важного гена
человека длиной 50 нуклеотидных пар.
Исходя из электрофоретического спектра ДНК
представленного на радиограмме (рис. 27) можно
легко определить нуклеотидную
последовательность данного фрагмента уже
рассмотренным нами способом. Так,
просеквенированный фрагмент ДНК важного гена
человека будет иметь следующую
последовательность своих 50 нуклеотидов:
5'-АТЦАГАТЦТГЦААЦТЦАТАТГАТЦГАГАГГ-
ГАААТЦАТТЦТГТГААЦГ-3'.
В последние годы вместо радиоактивных
меток при анализе последовательностей ДНК
используются флюоресцентное окрашивание.
Флюоресцентные красители разного цвета
применяются для каждого из четырёх нуклеотидов
и четыре смеси электрофорезируются вместе.
Флюоресцентный анализ позволяет
определять последовательность ДНК автоматически, что даёт
возможность прочитывать более 1000 нуклеотидных пар за одну
операцию.
Часто для анализа используется и митохондриальная ДНК.
Известно, что она передаётся потомкам только с яйцеклеткой, т. е.
наследуется по материнской линии.
Рис. 27. Схема
радиограммы
сиквенса ДНК
Г Т А Ц
321
Анализ нуклеотидной
последовательности
митохондриальной ДНК
позволил установить истину в
одной почти детективной
истории. Долгие годы многие
верили, что некая Анна
Мэнехен является Анастасией,
спасшейся от смерти дочерью
русского царя Николая II и его
жены Александры (рис. 28).
Другие же считали Анну
Мэнехен самозванкой. Однако
однозначных объективных доказательств своей правоты ни та, ни
другая сторона
предоставить не могли.
Ниже приведён фрагмент
нуклеотидной
последовательности
митохондриальной ДНК
(мтДНК) Анны Мэнехен, её
племянника Карла Маучера,
а также герцога
Эдинбургского, который
является племянником
последней русской царицы
Александры –матери
Анастасии.
Если бы Анна Мэнехен действительно была принцессой
Анастасией, то её мтДНК была такой же, как у всех родственников
последней русской царицы Александры, включая её племянника
герцога Эдинбургского,и короткий фрагмент проанализированной
мтДНК у неё был бы ТТЦЦТЦ. Но фрагмент её мтДНК имеет другой
состав и полностью совпадает с мтДНК её истинного племянника
Карла Маучера, все предки и родственники которого никогда не
имели родственных связей с королевскими семьями Европы, в том
числе с семьёй последнего русского царя Николая II.
Следовательно, исходя из полученных молекулярно-генети-
ческих данных по сиквенсу короткого фрагмента митохондриальной
ДНК, можно однозначно утверждать, что Анна Мэнехен не являлась
принцессой Анастасией.
Фрагмент
митохондриальн
ой ДНК
Анна Мэнехен
Ц Ц Т Т Ц Т
Карл Маучер
(племянник
Мэнехен)
Ц Ц Т Т Ц Т
герцог
Эдинбургский
(племянник
Александры)
Т Т Ц Ц Т Ц
Рис. 28. Семья последнего российского
императора Николая II. Царица
Александра Фёдоровна вверху справа,
Анастасия и Алексей сидят обнявшись.
322
Таким образом, в последние годы, разработанные технологии и
методы генной дактилоскопии и секвенирования нуклеотидных
последовательностей ДНК, рассмотренные выше, становятся широко
доступными и с успехом применяются не только в молекулярной
генетике и других биологических науках, но и в таких практических
областях как криминалистика, медицина, санитарная эпидемиология.
Ключевые слова и понятия
минисателлитная ДНК
повторяющаяся последова-
методы секвенирования фрагмен-
тов ДНК
тельность
минисателлитная цепочка
тандемно повторяющиеся по-
следовательности
генная дактилоскопия
гипервариабельные миниса-
теллиты
фингерпринт ДНК
участки минисателлитной
ДНК отличающиеся по длине
метод определения
последовательности ДНК
элонгация ДНК
ДНК-полимеразы
секвенирование ДНК по Мак-
самому-Гилберту
препарат меченой ДНК
набор меченых фрагментов
«чтение» нуклеотидной последова-
тельности ДНК
323
ЛЕКЦИЯ 22. АМПЛИФИКАЦИЯ ФРАГМЕНТОВ ДНК
С ПОМОЩЬЮ МЕТОДА ПОЛИМЕРАЗНОЙ
ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ (ПЦР)
1 Характеристика метода ПЦР и его основные стадии.
2 Использование ПЦР в диагностике наследственных заболеваний.
3 ПЦР и направленный сайт-специфический мутагенез.
1 Характеристика метода ПЦР и его основные стадии.
Несмотря на то, что методы исследования наследственного
материала (нуклеиновых кислот) все время совершенствовались, тем
не менее, для анализа структуры ДНК требовалось определенное
количество клеточного материала. Например, даже при
использовании такого чувствительного метода, как фингерпринт,
требуется наличие капли крови или другого эквивалентного
количества образца животной или растительной ткани, содержащих в
клетках достаточное для анализа количество копий ДНК.
Ситуация радикально изменилась благодаря появлению метода,
который был разработан Кэри Мюллисом. Этот метод получил
название полимеразной цепной реакции (ПЦР) и стал
неотъемлемой процедурой, освоенной во всех генно-инженерных
лабораториях мира. Использование ПЦР методики позволяет
амплифицировать (размножать) ДНК или её фрагмент in vitro
увеличивая количество копий в миллионы раз за несколько часов.
ПЦР осуществляют в пробирке с помощью специального
термостабильного фермента ДНК-полимераза (Tag-полимеразы),
набора всех четырех нуклеотидов А, Т, Г и Ц и коротких
олигонуклеотидных затравок –праймеров. Праймеры –это
короткие, длиной в 20-30 нуклеотидов, одноцепочечные фрагменты
ДНК, комплементарные 3’-концевым последовательностям
324
копируемой ДНК-матрицы. Благодаря праймерам ограничивается
фрагмент ДНК, который будет скопирован Tag-ДНК-полимеразой,
присоединяющейся к 3’-концам праймеров и достраивающие их до
заданной длины. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) протекает в три
стадии (рис. 29).