
- •Экология. Повреждение и репарация днк. Ирина Михайловна Спивак Предисловие
- •Введение
- •1. Изучение днк-метаболизма
- •1.1. Начало исследования репарации
- •1.2. Репликация днк
- •1.2.1. Репарация за счет проверки днк-полимеразой
- •1.2.2. Участие корректирующих автономных экзонуклеаз в репликации и репарации днк
- •2. Типы повреждений днк
- •3. Многообразие систем репарации днк
- •4. Прямая репарация днк
- •4.1. Фотореактивация
- •4.2. Репарация о6-алкилированного гуанина
- •4.3. Репарация однонитевых разрывов днк
- •4.4. Репарация ар-сайтов за счет прямой вставки пуринов
- •5. Эксцизионная репарация
- •5.1. Эксцизионная репарация оснований (base excision repair, ber)
- •5.1.1. Многочисленные возможности репарации 8-оксигуанина
- •5.1.2. Роль pcna в эксцизионной репарации оснований
- •5.1.3. Ber, спаренная с репликацией
- •5.2. Эксцизионная репарация неспаренных оснований (mismatch repair, mmr)
- •5.2.1. Функциональные гены-гомологи у про– и эукариот
- •5.3. Эксцизионная репарация нуклеотидов (ner, nucleotide excision repair)
- •5.3.1. Эксцизионная репарация нуклеотидов у эукариот
- •5.3.2.Ner, спаренная с транскрипцией: tcr (transcription coupled repair)
- •5.3.3. Болезни, связанные с нарушением системы ner
- •5.3.3.1. Пигментная ксеродерма (хр)
- •5.3.3.2. Тиотриходистрофия (ttd). Транскрипционная гипотеза
- •5.3.3.3. Синдром Коккейна. (cs)
- •5.3.3.4. Cиндромы повышенной чувствительности к уф-облучению (uvs-s)
- •6. Репарация, связанная с рекомбинацией
- •7. Рекомбинация
- •7.1. Сайт-специфическая рекомбинация
- •7.2. Случайная рекомбинация
- •7.3. Гомологичная рекомбинация
- •7.3.1. Генная конверсия
- •8.1. Низкопроцессивные днк-полимеразы эукариот
- •9. Репарация двунитевых разрывов
- •9.1. Репарация двунитевых разрывов днк путем негомологического воссоединения концов (nhej)
- •9.2. Однонитевой отжиг (ssa, single strand annealing)) по прямым повторам
- •9.3. Репарация путем гомологической рекомбинации (hrr)
- •9.3.1. Роль гистона н2ах в репарации dsBs
- •9.3.2. Механизмы, обеспечивающие стабильность хромосом при наличии повторов и системы гомологической рекомбинации
- •9.3.3. Болезни, связанные с дефектами генов, вовлеченных в репарацию двунитевых разрывов
- •9.3.3.1. Атаксия-телеангиэктазия. Белок атм
- •9.3.3.2. Белки brca1 и brca2
- •9.3.3.3. Геликазы семейства RecQ
- •9.3.3.4. Синдром Блюма
- •9.3.3.5. Синдром Вернера
- •9.3.3.6. Анемия Фанкони
- •10. Защитники генома
- •10.1. Защитники генома. Белок р53
- •10.2. Защитники генома. Роль parp в репарации
- •10.3. Белки, комплементирующие чувствительность клеток грызунов к ионизирующей радиации
- •11. V(d)j рекомбинация
- •12. Перемещение мобильного элемента Sleeping Beauty
- •13. Пострепликативная репарация
- •13.1. Пострепликативная, или рекомбинационная, репарация
- •13.2. Убиквитин и убиквитин-связывающие белки
- •13.3. Rad6-зависимая пострепликативная репарация
- •14. Репарации поврежденных вилок репликации и ресинтез
- •14.1. Модель прохода повреждения с переключением матрицы
- •14.2. Остановка репликации и ресинтез. Привлечение белков репарации
- •15. Современные представления и знания о механизмах активации чекпойнтов и белках, вовлеченных в разные стадии этого процесса
- •15.1. Генеральные концепции и основные игроки
- •15.2. Молекулярные механизмы g1-чекпойнта
- •15.2. Молекулярные механизмы s-чекпойнта
- •15.3. Молекулярные механизмы g2-чекпойнта
- •15.4. Чекпойнты, вызванные повреждениями днк и репарация двунитевых разрывов
- •Заключение
- •Приложения Приложение 1
- •Xpa, xpb, xpc, xpd, xpe, xpf, xpg – пигментная ксеродерма
- •Приложение 2
- •Cписок литературы
14. Репарации поврежденных вилок репликации и ресинтез
Для репарации поврежденных вилок репликации существенна рекомбинация, которая снижает уровень мутагенеза, связанного с «перескакивающими» полимеразами. Доказано существование репликации, зависящей от рекомбинации в таких случаях, как конъюгация и трансдукция у бактерий, а у эукариот при мейозе, поддержании стабильности теломер и немутагенной репарации репликативных вилок. Документально подтверждено существование ресинтеза (рестарта репликации), связанного с рекомбинацией. В УФ-облученных клетках пекарских дрожжей в районе остановившихся вилок репликации образуются Холлидеевские структуры, а в выживших клетках возрастала частота генной конверсии и межгенной мититической рекомбинации. Одновременно было показано, что мутанты Rad6, Rad18 и Rad52 дефектны по пострепликативной репарации. Мутантный фенотип Rad6 и Rad52 при этом полностью соответствуют мутантному фенотипу Reca у E.coli. Вероятно, Rad52 играет ведущую роль в самом процессе рекомбинации, а Rad6 участвует в нем только на уровне регуляции. Нужно помнить, что для возникновения видимой Холлидеевской структуры требуется только отжиг цепей и ничего больше.
Гетеродимер Rad6/Rad18 совершенно необходим для работы любой системы, способной успешно завершать репликацию поврежденной ДНК. Мутанты по обоим этим генам крайне УФ-чувствительны и неповрежденные новосинтезированные нити ДНК в них после УФ-облучения не образуются.
Специфическая для структуры Холлидея геликазная-эндонуклеазная активность, способствующая ее разрешению, связана с комплексами Rad1/XPF и Mus81-Mms4. Одновременно оба эти комплекса способны к распознаванию остановившейся вилки репликации (выглядящей как вилка с «хвостом») и не проявляют сродства к обычным вилкам репликации. Вероятно, комплекс Mus81-Mms4 привлекается в район остановившейся вилки репликации белками чекпойнт-ответа, а его эндонуклеазная активность может участвовать в процессах, направленных на продолжение репликации. Для этого предложено множество моделей.
Белок Mgs1 (WHIP) является еще одним из возможных участников специального субпути PRR. Это ДНК-независимая АТФаза, способная образовывать комплекс с ДНК-полимеразой-δ и геликазой Sgs1 (так же как человеческий WHIP с WRN), появляется в районе остановившейся репликативной вилки и способствует проходу репликативным комплексом зоны повреждения.
14.1. Модель прохода повреждения с переключением матрицы
Схематически эти модели изображены на рис. 39 и 40.
Первый способ, изображенный на рис. 39, основан на том, что при остановке вилки репликации перед повреждением на лидирующей нити, синтез на отстающей может продолжаться и приводить к появлению более длинного фрагмента вновь синтезируемой нити. Происходит разворот вилки с отжигом на сестринской хроматиде и продолжением синтеза лидирующей нити на вновь синтезированной отстающей. Как только лидирующая нить удлиниться так, чтобы перекрыть остановившее продвижение вилки повреждение, вилка разворачивается обратно и матричные нити спариваются со вновь синтезированными. Таким образом синтез продолжается, а повреждение оказывается обойденным.
На рис. 40 показано, что этот процесс может проходить и несколько иначе. При остановке вилки репликации перед повреждением на лидирующей нити, синтез на отстающей может продолжаться и приводить к появлению более длинного фрагмента вновь синтезируемой нити.
Эта вновь синтезированная нить может спариться со вновь синтезированной ДНК на лидирующей нити, так что вновь образованная ДНК на лидирующей нити сможет обойти повреждение. После прохождения поврежденного участка восстанавливается нормальная структура вилки репликации.
Рисунк 39. Модель обхода повреждения с восстановлением репликативной вилки (1).
.
Рисунок 40. Модель обхода повреждения с восстановлением репликативной вилки (2).