
- •Иммунология
- •Темы самостоятельных работ
- •Тема 1. Конституционные неспецифические факторы резистентности животных
- •1. Неспецифические (естественные) факторы иммунитета
- •1.1. Анатомофизиологические факторы неспецифической резистентности
- •1.2. Гуморальные факторы неспецифической резистентности
- •1.3. Клеточные факторы неспецифической резистентности
- •Тема 2. Первичные (врожденные) иммунодефициты
- •Тема 3. Приобретенные (вторичные) иммунодефициты
- •(С.А.Кетлинский, в.С.Смирнов, 2000)
- •3.1. Физиологические иммунодефициты
- •Тема 4. Патологические иммунодефициты (алиментарные, вирусные иммунодефициты человека, стрессовые, экологические, иммунодефициты, вызываемые лекарственными препаратами)
- •Тема 5. Серопрофилактика и серотерапия
- •Тема 6. Антигенные структуры бактерий, вирусов и других микроорганизмов
- •Тема 7. Феномен розеткообразования в иммунологии
- •7.1. Проведение исследований
- •7.2. Выделение лимфоцитов на градиенте плотности
- •7.3. Изготовление эритроцитарных маркеров
- •7.4. Постановка и учет реакций розеткообразования
- •Тема 8. Клеточные методы диагностики инфекционных болезней
- •Тема 9. Роль макрофагов в иммунном ответе
- •Тема 10. Иммунология мнфекционных болезней. Методы оценки иммунологической реактивности животных
- •Тема 11. Серодиагностика инфекционных болезней
- •11.1. Характеристика серологических реакций
- •Тема 12. Иммунопрофилактика инфекционных болезней биопрепараты. Биотехнологические основы производства
- •Тема 13. Иммунологический статус животных Методика оценки иммунного статуса у животных на основе взаимосвязей
- •Тема 14. Возрастные особенности иммунитета животных
- •Тема 15. Технология белковых биочипов и их применение в диагностике болезней
- •Контрольные вопросы и задания
- •Тема 16. Биосенсоры – экспресс методы анализа
- •Тема 17. Неспецифические иммуномодуляторы
- •Основные биологические активности эндогенных иммуномодуляторов
- •Тема 18. Специфические иммуномодуляторы
- •Тема 1. Конституционные неспецифические факторы резистентности животных……………………………………………….……………………………...3
- •1. Неспецифические (естественные) факторы иммунитета……….………....3
7.3. Изготовление эритроцитарных маркеров
Эритроцитарные маркеры получают на основе эритроцитов мелкого и крупного рогатого скота, используя стандартные коммерческие компоненты для диагностики туберкулеза животных. Эти компоненты соединяют при стандартных условиях приготовления гемолитической системы и постановки реакции связывания комплемента (РСК), применяющихся в ветеринарных лабораториях.
Маркер для спонтанного розеткообразования. В качестве индикаторной системы для определения Т-лимфоцитов используют свежеприготовленную или хранящуюся при температуре +4°С не более суток 0,5%-ную взвесь эритроцитов барана или коз в растворе Хенкса. Перед постановкой реакции эритроциты отмывают физиологическим раствором, осаждая каждый раз центрифугированием при 400 g в течение 10 минут до тех пор, пока надосадочная жидкость не станет бесцветной (обычно 2-3 раза). Для приготовления 0,5%-ной взвеси 0,05 мл отмытого плотного осадка эритроцитов смешивают с 10 мл раствора Хенкса. Их общепринятая маркировка - Е.
Маркер для комплементарного розеткообразования. В качестве индикаторной системы для определения В-лимфоцитов используют свежеприготовленную или хранящуюся при температуре +4°С не более трех суток 1%-ную взвесь эритроцитов быка в растворе Хенкса, образовавших иммунные комплексы с гетерофильными антителами и комплементом. После осаждения и трехкратного отмывания центрифугированием от непрореагировавших компонентов в течение 5 минут при 600 g, используя 30-40-кратные объемы физиологического раствора, их обрабатывают комплементом 30 минут при +37°С и вновь отмывают при аналогичных условиях. Общепринятая маркировка-ЕАС.
Приготовление гемолитической сыворотки. Антиэритроцитарную сыворотку получают на 15-й день после восьми внутривенных инъекций 10%-ной суспензии свежих эритроцитов быка на физиологическом растворе, растворе Хенкса или забуференном физиологическом растворе. Эритроциты вводят через 2 дня из расчета 1 мл клеточной суспензии на 1 кг массы кролика. Антисыворотку инактивируют при 56°С в течение 30 минут, готовят двукратные разведения и ставят реакцию прямой агглютинации с 5%-ной суспензией эритроцитов быка. Определив субагглютинирующий титр (обычно - 1:100-1:200), сыворотку замораживают.
В качестве комплемента для постановки реакции розеткообразования берут свежую сыворотку белой мыши в оптимальном разведении (1:10).
Маркер для непрямого глобулинового розеткообразования. В качестве индикаторной системы для определения лимфоцитов-киллеров используют 1%-ную взвесь в растворе Хенкса эритроцитов быка, образовавших иммунные комплексы лишь с гетерофильными антителами гемолитической сыворотки. Для их получения 2,5%-ную взвесь эритроцитов в физиологическом растворе обрабатывают при +37°С в течение 30 минут гетерофильной для них гемолитической сывороткой. Затем 3 раза отмывают от непрореагировавших компонентов центрифугированием по 5 минут при 600 g, используя 30-40-кратные объемы физиологического раствора. Сыворотку гемолитическую готовят на физиологическом растворе и берут в дозе, превышающей ее титр не более чем в 50 раз. Общепринятая маркировка - ЕА.
Маркер для туберкулинового розеткообразования. В качестве индикаторной системы для определения антиген-реактивных лимфоцитов используют 1%-ную взвесь в растворе Хенкса эритроцитов быка, адсорбировавших ППД-туберкулин. Для их получения 2,5%-ную взвесь эритроцитов в физиологическом растворе обрабатывают в течение 2-6 часов при +37°С ППД-туберкулином для млекопитающих. Затем 3 раза отмывают от непрореагировавших компонентов центрифугированием по 5 минут при 600 g, используя 30-40-кратные объемы физиологического раствора. Туберкулин готовят на физиологическом растворе (берут в концентрации - 1 мг/мл). Общепринятая маркировка - ЕТ.