Методы определения госсипола

Определение свободного госсипола в хлопчатниковом жмыхе:

1.Анилиновый метод. Извлечение госсипола производится из воздушно-сухого жмыха обезвоженным серным эфиром в аппарате Сокслета в течение 72 часов.

По окончании экстракции часть эфира удаляют и в экстракт приливают 2 мл анилина. Снова отгоняют эфир. В остаток приливают 4 мл пиридина. Смесь энергично встряхивают и оставляют на четверо суток. Затем раствор фильтруют через тигель Гуча и осадок на фильтре промывают петролейным эфиром. Тигель с осадком дианилин- госсипола сушат при температуре 100⁰ до постоянного веса. Вес осадка умножают на 0,775 и таким образом определяют количество госсипола во взятой навеске жмыха.

Если нет тигля, можно пользоваться маленькой стеклянной воронкой и обыкновенным складчатым фильтром. Фильтр должен быть предварительно выдержан в эфире, высушен при температуре 100⁰ и взвешен.

2.Сернокислотный метод. Метод основан на способности госсипола под действием серной кислоты окрашиваться в ало-красный цвет. Для использования небольшие кусочки жмыха (около 200г) из разных мест нескольких плиток и измельчают в ступке в мелкий порошок. Из равномерно перемешенной массы жмыхового порошка отвешивают навеску 20-40 мг и помещают на стекло. Все комочки размельчают, а шелуху семян отбрасывают. Навеску жмыха равными частями распределяют на 20-30 предметных стеклах, смачивают 1-2 каплями концентрированной серной кислоты, препарат перемешивают и покрывают покровным стеклом.

Приготовленный таким образом препарат рассматривают под микроскопом при малом увеличении и подсчитывают окрашенные под действием серной кислоты круглые или овальные железки, из которых вытекает струйка алой жидкости, а также круглые алые пятна с едва заметными остатками оболочки.

Эту работу следует производить по возможности быстро при дневном свете или лампе дневного света. Каждый отдельный препарат следует смачивать серной кислотой только перед его рассмотрением под микроскопом.

Подсчитывают общее количество окрашенных пятен во всех препаратах (20-30). После этого процент госипола в жмыхе начисляют по формуле:

Х = 64

20

где: 0,085 – постоянный коэффициент госсипола;

64 – количество подсчитанных алых пятен на предметных стеклах;

20- навеска жмыха (в мг).

Определение госсипола в печени. Определение основано на образовании железо- гемосидерина от воздействия железосинеродистым калием на измененную печень.

Реактивы. 1. 2%-ный водный раствор железосинеродистого калия (красная кровяная соль – К₃Fe (CN)₆).

2. 1%-ный раствор соляной кислоты.

Реактивы смешивают в соотношении 1: 1,5, в полученную смесь опускают тонкий срез печени. При наличии госсипола печень окрашивается в синий цвет (проба будет положительной и от лошадей, больных энцефаломиелитом). Параллельно ставят пробу с печенью от нормального животного (для сравнивания).

Определение госсипола в моче. В мочу добавляют равный объем солянокислого раствора желтой кровяной соли (2,0г желтой кровяной соли + 100 мл 1% -ного раствора соляной кислоты). При наличии госсипола моча окрашивается в цвет берлинской лазури или происходит окрашивание осадка мочи в синий цвет.

Контрольные вопросы:

1 Определение госсипола в хлопчатниковом жмыхе?

2 Определение госсипола в печени?

3 Определение госсипола в моче?

Тема: Токсикологический анализ при отравлениях полынью

Цель занятия: Освоить метод определения полыни на белой мыши.

Материальное обеспечение:

1 Колба емкостью 50мл

2 Сухие веточки полыни

3 Спиртовая горелка.

4 Марля

5 Лабораторное животное (белая мышь)

Токсичность полыни определяют следующим обра­зом. В колбочку емкостью 50 мл вносят 10 г измельчен­ных сухих веточек полыни и кипятят в небольшом коли­честве воды в течение 15 минут при частом помешива­нии. Полученный отвар отжимают через марлю, затем жидкость выпаривают до 1 : 1 (т. е. до 10 мл), 0,25— 0,3 мл полученного экстракта вводят подкожно белой мыши (20—23 г). При токсичности полыни белая мышь погибает спустя 30—35 минут. Гибель наступает при характерной судорожной картине отравления.

Контрольные вопросы:

1 Определение полыни на лабораторных животных?

2 Клинические признаки при отравлениях полынью?

Тема: Лабораторная диагностика отравлений растениями,

содержащими алкалоиды

Цель занятия: Изучить лабораторную диагностику отравлений растениями, содержащими алкалоиды.

При подозрении на отравление животных алкалоид содержащими растениями в лабораторию направляют пробы корма, отобранные в соответствии с требования­ми Ветеринарного законодательства СССР, патологоа-натомический материал (содержимое желудка или руб­ца, мочи, внутренние органы, мышцы).

Обнаружение и идентификация алкалоидов осуще­ствляется в три этапа: изоляция, обнаружение в изо­лированном остатке и хроматографическая идентифи­кация.

Изоляция алкалоидов. 100 г измельченного кор­ма заливают дистиллированной водой в соотношении 1:4 для сочных и 1:10 для сухих. При постоянном поме­шивании содержимое подкисляют 10 %-ным раствором серной кислоты до рН 3, после чего выдерживают на водяной бане в течение 2 ч при температуре 40 °С. Вы­тяжку из сочных кормов сразу, из сухих через 24 ч на­стаивания сцеживают, фильтруют в делительную ворон­ку и обрабатывают 2 раза 30 мл хлороформа.

После отделения хлороформа водную вытяжку под­щелачивают 10 %-ным раствором аммиака до рН 9 и 3 раза обрабатывают хлороформом по 50, 30 и 20 мл, сливая после отделения в одну емкость. Затем фильтру­ют ее через смоченный хлороформом бумажный фильтр и 62ИИ62вляяяют в вытяжном шкафу. Для обнаружения алкалоидов используют полученные из щелочного во­дного извлечения хлороформенные вытяжки.

Изоляция алкалоидов из патматериал а. Навески измельченного патматериала до 100 г поме­щают в широкогорлые колбы емкостью 750 мл, залива­ют водой в соотношении 1:4 (кроме мочи) и подкисляют винной, виннокаменной или щавелевой кислотами до рН 3 (по индикаторной бумажке). После тщательного сме­шивания содержимого колбы ставят в водяную баню при температуре 40 °С на 1 ч. После 2-часового остыва­ния жидкость фильтруют через ватный фильтр в дели­тельную воронку и 3 раза обрабатывают хлороформом по 25 мл в течение 10 мин. Если отделение хлороформен-ного слоя затруднено ввиду образования эмульсии, то ее центрифугируют в течение 10 мин при 3—4 тыс. об/мин.

После отделения хлороформа водную вытяжку под­щелачивают (лучше на холоду) 10 %-ным раствором аммиака до рН 9 и обрабатывают так же, как и при изоляции алкалоидов из кормов.

Обнаружение алкалоидов в изолиро­ванном остатке. С этой целью предложено не­сколько способов, но наибольшее распространение получило обнаружение при помощи реактива Драгендорфа.

Для ускорения испарения хлороформа в изолирован­ном остатке целесообразно содержимое химического стакана продувать с помощью вентилятора. После сгущения вытяжку каплями при помощи ка­пилляров наносят на заранее подготовленные полоски размером ЗХ 7 см из чистой хроматографической бума­ги марки «М» или беззольного фильтра с синей полосой в центре. Вытяжку наносят в четыре точки, помечая их карандашом 1, 3, 5 и 15, что соответствует числу наноси­мых капель (очередную каплю в одно место наносят после испарения предыдущей).

После высыхания бумагу проявляют в одном из реактивов, приготовленных заблаговременно по прописи:

реактив 7:8,5 г основного висмута нитрата растворя­ют в 400 мл воды, после чего добавляется 100 мл уксус­ной кислоты. Отдельно 80 г калия йодида растворяется в 200 мл воды. Оба раствора смешивают и выдерживают в темноте в течение месяца. Реактив для проявления готовят из 20 мл основного раствора, 20 мл уксусной кислоты в 100 мл воды. Чувствительность реакции 3— 5 мкг;

реактив 2:200 г винной кислоты и 17 г основного висмута нитрата растворяют в 800 мл воды; 160 г калия йодида растворяют в 400 мл воды. Оба раствора смеши­вают и хранят в темном месте.

Реактив для проявления готовят из 10 мл основного раствора, 10 г винной кислоты и 50 мл воды. Чувстви­тельность реакции 1—3 мкг.

При наличии алкалоидов в извлечениях на бумаге появляются красные или малиновые пятна, которые осо­бенно хорошо видны после отмывания бумаги водой до полного обесцвечивания фона. При высоком содержа­63ИИ алкалоидов пятно появляется после первой капли, при меньшем — после последующих. Это дает возмож­ность судить о примерном количественном содержании яда в исследуемом объекте.

Хроматографическая идентификация алкалоидов проводится на бумаге или в тонком слое. Эти методы требуют наличия эталонных образцов чистых алкалои­дов или смеси их, выделенной из заведомо известного растения.

Контрольные вопросы:

1 Изоляция алкалоидов?

2 Обнаружение алкалоидов?

Тема: Определение гликозидов и сапонинов

Цель занятия: Ознакомить студентов с методами качественного обнаружения гликозидов и сапонинов в кормах и патматериале.

Материальное обеспечение: Пробы кормов, содержимое желудка кролика предварительно отравленного листьями наперстянки, необходимый набор реактивов и посуды.

Извлечение гликозидов из растений. 100-200 г измельченного материала помещают в колбу, заливают 96 °С спиртом и подкисляют спиртовым раствором винно-каменной кислоты. Содержимое колбы сбалтывают и через час проверяют её реакцию лакмусовой бумажкой. При щелочной реакции в жидкость добавляют ещё раствор винно-каменной кислоты и через час снова проверяют реакцию. Если реакция кислая, то колбу закрывают ватной пробкой и оставляют на сутки при температуре 25-30 °С время от времени взбалтывая содержимое. Проверяют вытяжку на наличие кислой реакции и осторожно сливают, оставшийся в колбе материал снова заливают спиртом и оставляют на вторые сутки. Спиртовые вытяжки объединяют и фильтруют. Остаток пробы переносят из колбы на фильтр и дважды промывают спиртом, который присоединяют к вытяжкам. Полученную вытяжку выпаривают в фарфоровой чашке на водяной бане при температуре 40°С до состояния жидкого сиропа.

К упаренной вытяжке для осаждения белков приливают по каплям, при помешивании, этиловый спирт (96°) до прекращения образования осадка. После отстаивания жидкость фильтруют и выпаривают до густы жидкого сиропа. Осаждение белков проводят до тех пор, пока прибавление спирта не будет давать мути. После этого жидкость упаривают до полного удаления спирта, а осадок растворяют в 50 мл воды. Если раствор получается мутным , его фильтруют. Для группового обнаружения гликозидов используют следующие реакции:

1 Реакция с фелинговой жидкостью. Испытуемый раствор кипятят с какой-либо оразведенной кислотой (серной или соляной) и фильтруют. К фильтрату добавляют фелинговую жидкость. При наличии гликозидов в растворе фильтрат восстанавливает фелинговую жидкость, так как происходящий при кипячении с кислотой гидролиз приводит к образованию глюкозы или иного сахара, обладающих восстановительными свойствами.

Фелинговая жидкость, представляющая собой смесь растворов медного купороса, сегнетовой соли и едкой щелочи, имеет синий цвет; при восстановлении же ее синий цвет исчезает и при этом появляется желтый осасдок гидрата закиси меди, который при нагревании становится красным.

2 Реакция с бычьей желчью. Растворяют в 1 мл воды в пробирке немного бычьей желчи, прибавляет равный объем концентрированной серной кислоты и осторожно наслаивают на эту смесьиспытуемый раствор. При наличии гликозидов в месте соприкосновения жидкостей образуется кроваво-красное кольцо, а при взбалтывании вся жидкость становится красной.

3 Биологическая проба. Берут обездвиженную лягушку, прикалывают ее к доске и обнажают сердце. Подсчитывают количество сердечных сокращений за минуту , а затем в область лимфатического мешка вводят 0,5-1 мл исследуемого отвара или настоя. Наблюдение ведут в течение часа периодический подсчитывая сердечные сокращения. При наличии гликозидов наблюдают урежение сердечных сокращений с последующей остановкой сердца в стадии систолы.

Обнаружение сапонинов. Сапонины извлекают из растений горячим спиртом (метиловым), из которого они выпадают при охлаждении в виде белого порошка.

1 Концентрированная серная кислота окрашивает их в красный цвет. Для них характерна так называемая дегиталиновая проба, которая заключается в том, что при нагревании со смесью равных объемов концентрированной серной кислоты и спирта и прибавлении одной капли раствора сернорй закиси железа сапонины дают сине-зеленое окрашивание.

2 Реакция пенообразования. Исследуемый материал в еоличестве 1-2 мл помещают в пробирку, приливают 5 мл воды и сильно встрахивают. Образование большой устойчивой пены указывает на присутствие сапонинов.

3 Гемолитическая проба. Готовят 5%-ую взвесь эритроцитов.

Берут две пробирки, в одну помещают 2 мл фильтрата, а в другую – 2 мл физиологического раствора. В обе пробирки добавляют по 0,5 мл 5%-ую взвесь эритроцитов. Встряхивают и оставляют на 5 –10 минут. При наличии сапонины в пробирке с фильтратом наступает гемолиз, а в контрольной пробирке изменений не наблюдается.

Контрольные вопросы:

1 Назовите гликозидо- и сапониноносные растения?

2 В какую стадию вегетации наиболее опасны гликозидо- и

сапониноносные растения?

3 Как влияют условия заготовки корма на содержание гликозидов и сапо

нинов?

4 Какая должна быть помощь при подозрении на отравлении гликозидами и сапонинами?

5 Назовите экспресс-методы по обнаружению гликозидов и сапонинов в кор-

мах?

Тема: Качественное определение сапонина в растительном

материале

Цель занятия: Освоить методы определение сапонинов в растениях и кормах.

Качественная проба. Гемолитическая проба. Проба основана на гемолизе эритроцитов.

Реактивы:

1 Физиологический раствор хлористого натрия: 9 г хлористого натрия растворяют в 1000 мл дистиллированной воды.

2 5%-ная взвесь эритроцитов.

Кровь берут из яремной вены любого животного в стеклянный стаканчик, дефибринируют ее круговым помешиванием деревянной палочкой в течение 10-15 минут. Фибрин с палочкой удаляют, а плазму с эритроцитами с дефибринированной крови фильтруют через 2 слоя марли. Фильтрат смешивают с 2-3 объемами физиологического раствора поваренной соли и производят центрифугирование в течение 8-10 минут. Во время центрифугирования эритроциты оседают на дно пробирки, а сверху остается слегка окрашенная в розовый цвет жидкость. Затем прозрачную розовую жидкость осторожно отсасывают , стараясь не задевать слоя эритроцитов, после чего к нему доливают до первоначального уровня физиологический раствор поваренной соли и снова центрифугируют. Если после второго промывания жидкость над эритроцитами стала бесцветной и прозрачной, то на этом заканчивают промывку эритроцитов, в противном случае промывку повторяют третий раз. Затем берут 0,5 осадка отмытых эритроцитов и к ним добавляют 9,5 мл физиологического раствора.

Исследование материала проводят следующим образом. В колбочку помещают 1 г измельченного сена или муки, или отрубей и добавляют 10 мл физиологического раствора поваренной соли, измельченное сегно ставят на 10 минут в кипящую водяную баню, а муку или отруби экстрагируют 15 минут при комнатной температуре, периодически встряхивая. После этого фильтруют через бумажный фильтр. Полученный фильтрат в количестве 2 мл помещают в пробирку. Такое же количество физиологического раствора хлористого натрия наливают в другую пробирку. Затем добавляют по 0,5 мл 5%-ной Взвесм эритроцитов в обе пробирки, встряхивают и оставляют их в штативе. Через 5-10 минут учитывают результат. При наличии сапонинов в исследуемом извлечении наступает гемолиз эритроцитов, тогда как в контрольной пробирке гемолиза не бедет.

Контрольные вопросы:

1 Приготовление 5%-ной взвеси эритроцитов?

2 Исследование патматериала на сапонины?

Тема: Обнаружения госсипола в кормах растительного

происхождения (по В.М. Серову)

Цель занятия: Определения госсипола в кормах растительного

происхождения.

Метод основан на извлечении из растительного матери­ала в виде госсиполята натрия, очистке экстракта от коэкстрактивных веществ, переводе госсиполята натрия в свободный госсипол, извлечении его хлороформом, отгонке хлороформа с последующим анализом сухого остатка цветной реакцией на госсипол. Количественное определение проводят способом хроматографии в тон­ком слое.

Ход анализа. 5 г измельченной и просеянной через сито пробы переносят в колбу на 250 мл, заливают 80 мл экстрагирующей смеси (70 мл ацетона с 30 мл 0,2 %-ного водного раствора едкого натра) и вносят стеклянные бусинки. Колбу закрывают и оставляют на 24 ч в вытяжном шкафу для настаивания при частом взбалтывании, после чего экстракт фильтруют через бумажный фильтр в делительную воронку. Содержимое колбы дважды промывают 15—20 мл экстрагирующей смеси и фильтруют.

В делительную воронку вносят 20 мл петролейного эфира и перемешивают; после отстаивания нижний слой сливают в химический стакан, а верхний отбрасывают.

Очистку нижнего слоя повторяют 3 раза, а при нали­чии травяной муки — 5—6 раз.

Очищенную экстракционную жидкость переносят в делительную воронку, куда добавляют 50 мл 2 %-ного водного раствора серной кислоты. Смесь выдерживают 15 мин, после чего госсипол трижды переэкстрагируют хлороформом в объеме 15, 10 и 10 мл. Хлороформенный экстракт фильтруют через бумажный фильтр в стеклян­ный низкий бюкс и ставят для испарения в вытяжной шкаф. Сухой остаток хранят в закрытом бюксе в темном сухом месте.

Для исследования сухой остаток растворяют в 1 мл хлороформа.

Качественная реакция обнаружения госсипола. 0,1 мл хлороформенного раствора сухого остатка нано­сят на полоску хроматографическои бумаги (10X4 см) с левой стороны, отступая от края 3 см. На расстоянии 3 см от пробы наносят 0,1 мл стандартного госсипола (5 мг госсипола растворяют в 50 мл хлороформа). После высыхания места нанесения растворов проявляют путем проводки через раствор проявителя (20 г флороглюци-на, 100 мл этилового спирта, 10 мл концентрированной соляной кислоты). При появлении в исследуемой пробе красного или малинового пятна (как и в стандартном растворе госсипола) дают заключение о наличии госсипола в пробе. В дальнейшем проводят хроматографический анализ.

Контрольные вопросы:

1 Метод извлечения госсипола из растительного материала?

2 Качественная реакция обнаружения госсипола?

Тема: Работа с гербарием ядовитых растений

Цель занятия: Ознакомить студентов с гербарием ядовитых и вредных растений.

Материальное обеспечение: Гербарий ядовитых и вредных растений, слайды, таблицы.

Ход занятия. Студенты просматривают гербарий и другие наглядные материалы и самостоятельно конспектируют основные положения, касающиеся токсикологической характеристики растений.

Контрольные вопросы:

Назовите действующие вещества в растениях?

1 От каких условий зависит содержание действующих веществ?

2 Как поступить сеном, содержащим большое количество лютиков?

3 Опасно ли чемерица при силосовании?

4 В какой период времени года чаще наблюдается фитотоксикозы и почему?

5 Какая лечебная помощь должна быть оказана животному на пастбище при подозрении на отравления растительными ядами?

6 Как поступить с мясом при вынужденном убое с подозрением на отравление растительными ядами?

7 Назовите фотосенсибилизирующие растения?

8 Назовите растения, вызывающие нарушение солевого обмена и половой функции?

Тема: Определение токсичности патогенных грибов

Цель занятия: Ознакомить студентов с методами определения токсичности патогенных грибов.

В дифференциальной диагностике микотоксикозов важную роль играет определение токсичности ядов. С этой целью выращенную на агаре культуру патогенных грибов сих ядовитыми продуктами скармливают животным тех видов, среди которых выявлено заболевание. Биологическую пробу ставят на лабораторных объектах.

Сначала готовят экстракты из выращенных на плотных средах культур. Пленку гриба помещают в пробирку, заливают водопроводной водой и оставляют на 24 часа при температуре 4-10 ⁰ С.

Через сутки на предметное стекло наносят одну каплю взвеси простейших (парамециум каудатум) и две капли исследуемого экстракта, после чего наблюдают в течение 24 часов, периодически просматривая объект исследования под малым увеличением микроскопа. Высокотоксичные экстракты патогенных грибов убивают парамеций в первые 3 минуты. Токсичные экстракты губительно воздействуют на парамеций в течение 8-10 минут, слаботоксичные грибы на морфологических изменений, ни гибели парамеций не вызывают.

Определение токсичности грибов на животных. Необходимо приготовить стерильные экстракты из культур гриба. Для этого берут навеску культуры и заливают ее стерильным физиологическим раствором в соотношении 1:3, выдерживают 1 час при постоянном помешивании. Полученный экстракт отжимают через несколько слоев марли и фильтруют через фильтр Зейца.

Лабораторным животным (белым мышам, крысам, кроликам, голубям, котятятам) его вводят подкожно в объеме 0,5-3 мл, внутрибрюшинно –0,5-20 мл. за животными наблюдают в течение 2 недель. Если культура гриба токсична, то у них развивается токсикоз (общее недомогание, тремар, парезы).

При подкожном введении возможна местная воспалительная реакция, при внутрибрюшинном - перитонит.

Из химических методов обнаружения ядов патогенных грибов доступны для практики пробы с соляной и трихлоруксусной кислотами.

В пробирку берут несколько капель эфирного экстракта из культуры гриба и добавляют 1-2 капли кислоты. При положительной реакции на токсины грибов из рода фузариум содержимое пробирки приобретает ярко красный цвет при добавлении соляной кислоты и зеленый при добавлении трихлоруксусной.

Методы определения токсичности кормов. Наиболее известна –кожная проба. Для приготовления экстракта берут 50 г. корма, измельчают, если нужно подсушивают, затем в аппарате Соксклета экстрагируют токсины эфиром в течение 6ч. экстракт упаривают до 10-15 мин. токсины можно извлекать в стеклянных колбах или банках. Берут 100 гр сена, измельчают заливают 200мл эфира, измельчают, заливают 200 мл эфира, настаивают в течение 24 часов при комнатной температуре и упаривают до густой консистенции.

Затем на выстриженный участок кожи кролика дважды с интервалом в одни сутки наносят полученный экстракт, принимая меры, чтобы кролик не смог слизать исследуемый экстракт. Учет реакции проводят в течение 3-7 дней.

По степени токсичности различают: первую степень- покраснение кожи, повышение чувствительности - покраснение, болезненность, шелушение; вторую степень- покраснение, болезненность, шелушение, утолщение кожи, мелкая сыпь в виде пузырьков темноватого окрашивания; третью степень- покраснение, выраженное утолщение кожи, болезненность и складчатость, поверхностный некроз, образование струпа; четвертая степень- покраснение, сильный отек в виде валика на нижней границе участка, сухой некроз, сплошной толстый струп.

Токсичность кормов устанавливают также биопробой на животных по клиническим признакам и данным патологоанатомических изменений. Это достигается путем скармливания белым мышам испорченного корма с предварительной выдержкой их на голоде или введением под кожу экстрактов исследуемых кормов. Иногда проводят пробу на бородках кур. Исследуемый экстракт вводят в одну из бородок, а вторая служит контролем. Степень воспалительной реакции бородки служит показателем токсичности экстракта.

Метод тонкого слоя хроматографии дает возможность определить состав и количество ядов микозного происхождения.

Общие меры профилактики микотоксикозов предусматривают скармливание животным доброкачественных кормов, которые заготавливают в оптимальные сроки. Злаки необходимо скашивать до цветения, хорошо просушивать, правильно хранить в скирдах, укрывая сено пленкой или слоем соломы. Особое внимание должно быть уделено хранению концентрированных кормов как наиболее питательных и ценных.

Консервированных грубых кормов 25%-ным раствором аммиака из расчета из расчета 10 л/ц сена или соломы предупреждает прорастание многих грибов. С целью консервирования сена и соломы применяют каустическую кальцинированную соду, негашеную известь. Для снижения токсичности зерна используют пиросульфат натрия (5-10кг/т) или термическую обработку, кроме кормов, которые поражены грибами рода фузариум.

Зерно первой и второй степени токсичности, пораженное грибами из рода пенициллиум, ризопус, мукор, подлежит сухой термической обработке с помощью АВМ-0,65; СБ-1,5 в течение 10-15 мин, а также в котлах под давлением 1-1.2 атм.

Важным условием профилактики микотоксикозов является соблюдение агротехники возделывания кормовых культур, для чего проводят своевременное лущение стерни, раннюю вспашку зяби, соблюдают правила скирдования сена и соломы.

Выпасанию животных на пожнивных полях только после предварительного анализа остатков растений на безвредность.