
- •1. Общие положения
- •1.2. Диагноз на пироплазмидозы ставят на основании эпизоотологических,
- •1.3. Лабораторные исследования на пироплазмидозы включают:
- •2. Отбор и пересылка материала для исследования
- •2.1. В лабораторию для исследования направляют от подозреваемых в за-
- •2.2. Мазки крови берут а период развития симптомов болезни, при повы-
- •2.3. Перед отбором материала у животного шерсть на месте взятия крови
- •2.4. При взятии пунктата из лимфатических узлов животное надежно
- •2.5. На высушенных мазках из крови и пунктата острым предметом или
- •2.6. Материал от павших или убитых животных отбирают до наступления
- •2.7. Мазки упаковывают в чистую непористую бумагу, складывая их по-
- •3. Микроскопическое исследование
- •3.3. При микроскопии обнаруживают пироплазмы (бабезии) в эритроци-
- •4. Дифференциальная диагностика возбудителей и оценка результатов
- •4.1. Пироплазмид дифференцируют между собой по их форме, углу со-
- •5.4. Животных, с сывороткой крови которых получена сомнительная
- •6. Диагноз считают установленным при получении одного из следующих
- •7.Сроки исследования:
МИНИСТЕРСТВО
СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА Утверждаю
РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Заместитель руководителя
(Минсельхоз России) Департамента ветеринарии
Е.А.Непоклонов
ДЕПАРТАМЕНТ ВЕТЕРИНАРИИ
09.11.2000 г. N 13-7-2/2183
Методические указания
по лабораторной диагностике
пироплазмидозов животных
1. Общие положения
2. Отбор и пересылка материала для исследования
3. Микроскопическое исследование
4. Дифференциальная диагностика возбудителей и оценка результатов
5. Постановка и учет реакции длительного связывания комплемента (РДСК) с нутталлийным
антигеном ВИЭВ
6. Диагноз считают установленным при получении одного из следующих
показателей
7.Сроки исследования
1. Общие положения
1.1. Пироплазмидозы (бабезиоз, тейлериоз) - протозойные болезни жи-
вотных, вызываемые возбудителями отряда Piroplasmida. Возбудители пиро-
плазмидозов обладают видовой специфичностью.
Пироплазмидозы вызывают у лошадей - Рiroplasma сaballi (Bаbеsiа ca-
balli), Nuttallia equi (В. equi): у крупного рогатого скота - Р. bigeminum (В. bi-
gemina), Babesia bovis (Francaiella colchica), B. divergens; у овец и коз - P. ovis
(В. motasi). B.ovis; у собак Р. canis (B. canis).
Тейлериоз вызывают у крупного рогатого скота - Theileria annulata и Th.
sergenti; у овец и коз - Th. ovis.
Заболевания протекают остро, подостро, хронически и сопровождаются лихорадкой,
анемией, желтушностью и кровоизлияниями на слизистых оболочках,
гемоглобинурией (при пироплазмозе - бабезиозе), увеличением лимфати-
ческих узлов (при тейлериозе) и заканчиваются нередко гибелью животных.
1.2. Диагноз на пироплазмидозы ставят на основании эпизоотологических,
клинических, патологоанатомических данных и результатов лаборатор-
ных исследований (микроскопического, серологического).
1.3. Лабораторные исследования на пироплазмидозы включают:
микроскопию мазков из крови, внутренних органов, головного мозга,
пунктатов лимфатических узлов:
морфологическую дифференциацию возбудителей;
постановку и учет реакции длительного связывания комплемента (РДСК) с
нуталлийным антигеном для диагностики пироплазмидозов лошадей.
2. Отбор и пересылка материала для исследования
2.1. В лабораторию для исследования направляют от подозреваемых в за-
болевании или больных животных: тонкие мазки крови из периферических со-
судов уха, хвоста или венчика; на тейлериоз дополнительно - мазки из пункта-
тов лимфатических узлов; 1 - 2 куб.см нативной сыворотки крови для серологиче-
ского исследования на нутталлиоз, пироплазмоз лошадей; от павших и убитых
животных - часть печени, легких, селезенки, почки, сердца, головного мозга и
лимфатические узлы.
2.2. Мазки крови берут а период развития симптомов болезни, при повы-
шенной температуре, до применения специфического лечения..
2.3. Перед отбором материала у животного шерсть на месте взятия крови
выстригают, кожу тщательно протирают в начале ватным тампоном, смочен-
ным а растворе этилового спирта, а затем сухим. Стерильной иглой делают
прокол вены ушной раковины или ножницами надрезают край верхушки уха
или хвоста. К свободной выступившей капле крови легко прикасаются поверх-
ностью сухого обезжиренного предметного стекла. Затем стекло быстро пово-
рачивают вверх каплей и удерживают пальцами левой руки в горизонтальном
положении. Шлифованным краем другого предметного стекла (или покровно-
го) прикасаются к капле крови. Как только кровь равномерно распределится по
ребру этого стекла, им быстро проводят по поверхности стекла справа налево
под углом 45°. Ширина мазка должна быть уже предметного стекла. Для каж-
дого нового мазка берут свежую каплю крови. От каждого животного готовят
по 2 мазка.
При исследовании большого количества подозрительных в заболевании жи-
вотных, размещенных в помещении при беспривязном содержании, можно брать
кровь с соблюдением правил асептики из яремной вены (V. Jugularis) одновремен-
но в 2 пробирки для приготовления мазков и получения сыворотки.
Для приготовления мазков кровь берут в пробирки, содержащие трилон Б*
(из расчета 0,1 куб.см 10% раствора трилона Б на 1 куб.см), в объеме 1,0 куб.см,
в другие пробирки - для получения сыворотки. Пробирки закрывают резиновыми пробкамИ.
Мазки крови готовят из трилоновой крови в лабораторных условиях в день
ее взятия. Готовые мазки крови высушивают на воздухе; подсушивать их над пла-
менем или на солнце нельзя. В холодное время года мазки делают в теплом поме-
щении или на стеклах, подогретых на крышке стерилизатора. Правильно приго-
товленные мазки должны быть тонкими, равномерными, достаточной длины и за-
канчиваться на 0,5 - 1,0 см от края стекла.
Кровь для получения сыворотки ставят в термостат (+37°С) или другое
теплое место; после полной ретракции сгустка, его отделяют от стенок пробир-
ки, обводя вокруг тонкой стерильной металлической спицей, и ставят в темное
(прохладное) место для отстаивания сыворотки. Используют для исследования
в РДСК сыворотку без следов гемолиза эритроцитов.