- •50.Эпидемиология и патогенез возбудителя проказы.
- •8. Главные факторы патогенности возбудителя чумы
- •9. Плазмиды и факторы патогенности возбудителя чумы
- •19. Эпидемиология бруцеллеза.
- •20. Почему бруцеллез – особо опасная инфекция?
- •21. Патогенез бруцеллеза.
- •22. Микробиологическая диагностика бруцеллеза.
- •23. Методы мб диагностики бруцеллеза. Наверное тоже самое, что и в 22 вопросе.
- •24. Серодиагностика бруцеллеза.
- •38. Бактериоскопическая диагностика сибирской язвы
- •Вопрос 37: биологический и бактериологический методы
- •44. Факторы патогенности возбудителя туляремии
- •45. Географические расы возбудителя туляремии
- •46.Эпидемиология туляремии.
- •47.Патогенез туляремии.
- •48.Основные клинические формы туляремии.
- •52.Специфическая профилактика туляремии.
- •49. Микробиологическая диагностика туляремии.
- •50.Особенности выделения чистой культуры возбудителя туляремии.
- •51. Аллергический метод диагностики туляремии.
- •10. Факторы патогенности стафилококков, влияющие на фагоцитоз
- •11. Как определяют гиалуронидазную акт-ть?
- •12. Мембраноповреждающие токсины , разновидности , мех-м действия
- •14. Как у стаф-в определяют наличие плазмокоагулазы?
- •15. Методы определения чувствительности к антибиотикам
- •16. Классификация стрептококков по росту на кровяном агаре.
- •17.Культуральные св-ва стрептококов
- •18. Выделение чистой культуры пиогенных страптококков
- •20. Серологическая классиф.Стрепток.
- •21.Факторы патогенности стрепток.
- •31. Методы микробиологической диагностики менингококков.
- •36. Бактериоскопический метод.
- •37. Серологическая классификация.
- •39. Профилактика.
11. Как определяют гиалуронидазную акт-ть?
Гиалуронидазную акт-ть опред-ют ,прибавляя к 0.5 мл бульонной культуры стаф-ка 0.5 мл гиалуроновой к-ты с пупочного канатика . смесь инкубируют 30 мин при 37 С и 10мин при 4С. В прбирку добавляют 4 кап. 15% уксусной к-ты , встряхивая и через 5 мин делают учет рез-ов. Отсутствие сгустка- наличие гиалуронидазы, наличие сгустка- ее отсутствие . Для изготовления к-ты свежую пуповину новорожденных измельчают и заливают водой. Смесь выдерживают 24ч в холодильнике , затем нагревают и кипятят до свертывания кусочков пуповины. Полученный гиалуронт фильтруют через ватно-марлевый фильтр и проверяют на юбраз-ие сгустка
12. Мембраноповреждающие токсины , разновидности , мех-м действия
Мембраноповреждающие токсины- альфа,бета,гамма,дельта. Ранеее описывали как гемолизины, некротоксины, лейкоцидины, летальные токсины, т.е. по хар-ру действия: гемолиз эр-ов,некроз при в\к введении кролику, разрушение лейк-в, смерть кролика при в\в введении. Такой эффект вызывает один и тот же фактор-мнмбраноповреждающийтоксин . ОН обладает цитолитическим действием, по отношению к различным клеткам. Мол-лы токсина связ-ся с неизвестными пока рецепторами мембраны клетки-мишени или адсорбируются липидами, затем форм-ют 7 мол-л грибовидный гептамер, состоящий из 3 доменов. Домены ,формирующие шляпку и край, расположены на внешней поверхности мембран, а домен ножки служит трансмембранным каналом –порой. Через нее происходит вход и выход молекул и ионов , вкдущии к набуханию и гибели кл.,и осмотическому лизису эр-ов.
13. СВ-ва стаф-х энтеотоксинов?
Энтеротоксины А, В, С1, С2, С3, D, Е. Они характеризуются антигенной специфичностью, термостабильностью, устойчивостью к действию формалина(не превращаются в анотоксины) и пищеварительных ферментов. Энтеротоксины –низкомолекулярные белки от 26 до 34 кД со св-ми суперантигенов.
14. Как у стаф-в определяют наличие плазмокоагулазы?
Плазмокоагулазу выявляют путем внесения выделенной культуры в пробирку с цитратной плазмы кролика. У кролика из сердца берут 8 мл крови, вносят в пробирку с 2 мл 5% лимонно-кислого натрия и ставят в холодильник. После полной осадки форменных элементов плазму отсасывают в стерильную пробирку. Она может храниться в холодильнике 8-10 дней. Перед использованием ее разводят 1:5 (1 мл плазмы и 4 мл изотонического раствора хлорида натрия) и разливают в аглютинацийни стерильные пробирки по 0,5 мл. Полную петлю культуры стафилококков эмульгируют в плазме и помещают в термостат на 3 часа, затем оставляют при комнатной температуре на 18-20 часов. Предварительный учет свертывания плазмы проводят через 3 ч, окончательный - на второй день. Очень удобно пользоваться стандартной сухой цитратной плазмы кролика. Перед употреблением в ампулу добавляют 1 мл изотонического раствора хлорида натрия и после полного растворения ее разводят 1:5. Плазма человека малопригодна для постановки реакции плазмокоагуляции, поскольку в ней могут быть консерванты, лекарственные вещества, антитела, которые могут подавлять образование плазмокоагулаза.