
- •Типова програма вибіркової навчальної дисципліни ”Біохімія рослин”
- •1.1. Загальні відомості про дисципліну.
- •1.2. Мета та завдання вивчення дисципліни.
- •1.3. Тематичний план і розподіл навчального часу.
- •1.4. Програмний матеріал змістовних модулів.
- •1.5. Завдання для самостійної роботи.
- •1.6. Оцінювання знань студентів.
- •Розподіл балів обов’язкового контролю, присвоюваних студентам (у чисельнику – % від максимально можливої суми, в знаменнику – абсолютна кількість балів)
- •2. Методичні рекомендації до вивчення окремих модулів і тем дисципліни
- •Тема 1. Біохімія рослин як наука. Хімічний склад рослин.
- •Тема 2. Вуглеводи.
- •Тема 3. Ліпіди.
- •Тема 5-6. Білки.
- •Тема 7. Ферменти.
- •Тема 8. Нуклеїнові кислоти.
- •Тема 9. Метаболізм. Біохімія анаеробного перетворення вуглеводів.
- •Тема 10. Біохімія аеробного перетворення вуглеводів.
- •Тема 11. Біохімія фотосинтезу та хемосинтезу.
- •Тема 12. Білковий обмін. Обмін нуклеїнових кислот.
- •3. Лабораторний практикум Лабораторне заняття № 1
- •Теоретична частина
- •Якісна реакція на глюкозу (реакція Троммера)
- •Якісна реакція на глюкозу (реакція Фелінга)
- •Відновлення аміачного розчину гідроксиду срібла глюкозою
- •4. Реакція з α-нафтолом (реакція Мілиша)
- •5. Реакція на пентози
- •Реакція на сахарозу
- •7. Реакція крохмалю з йодом
- •8. Гідроліз крохмалю
- •9. Визначення вмісту глюкози за допомогою реакції відновлення оксиду міді (іі) в оксид міді (і)
- •10. Визначення вмісту сахарози в коренеплодах цукрових буряків
- •Контрольні питання
- •Лабораторне заняття № 2
- •1. Розчинність ліпідів і утворення емульсії
- •2. Омилення жиру
- •3. Утворення вільних жирних кислот
- •4. Утворення нерозчинних кальцієвих мил
- •5. Визначення числа омилення жиру
- •7. Визначення йодного числа жиру
- •8. Визначення перекисного числа в прогірклому жирі
- •Лабораторне заняття № 3
- •Щавлева кислота
- •Пігменти листка
- •1. Визначення вмісту щавлевої кислоти
- •2. Отримання спиртового розчину (витяжки) пігментів
- •3. Розподіл пігментів за Краусом
- •4. Омилення хлорофілу лугом
- •5. Одержання феофітину та зворотне заміщення водню атомом металу
- •6. Фотосенсибілізуюча дія хлорофілу на процес переносу водню за Гуревичем
- •Лабораторне заняття № 4
- •1. Якісні реакції на вітамін a
- •2. Якісні реакції на вітамін к
- •3. Якісні реакції на вітамін е
- •4. Реакція відновлення вітаміну в2 (рибофлавіну)
- •5. Якісні реакції на вітамін с
- •6. Якісні реакції на вітамін в5 або рр
- •7. Кількісне визначення вмісту вітаміну с за Тільмансом
- •8. Кількісне визначення вмісту вітаміну р у чаї за Левенталем
- •Лабораторне заняття № 5
- •1. Нінгідринова реакція
- •2. Реакція з азотистою кислотою
- •3. Утворення комплексної солі міді
- •4. Реакція Фоля на “слабкозв’язану” сірку цистеїну та цистину
- •5. Біуретова реакція на пептидні зв’язки
- •6. Ксантопротеїнова реакція
- •7. Мікрометод визначення амінного азоту мідним способом
- •Лабораторне заняття № 6
- •1. Визначення окремих амінокислот методом розподільної хроматографії на папері
- •2. Біуретова реакція на виявлення пептидних зв’язків у білках
- •3. Кольорові реакції з білками на виявлення карбонових амінокислот
- •4. Кольорові реакції з білками на виявлення циклічних амінокислот
- •5. Реакції осадження білків
- •6. Визначення ізоелектричної точки білків (желатину)
- •Лабораторне заняття № 7-8
- •1. Визначення оптимальної температури дії ферментів
- •2. Специфічність дії ферментів
- •3. Групова специфічність дії сахарази
- •3. Визначення активності каталази методом о.М. Баха та а.І. Опаріна
- •4. Визначення активності тирозинази
- •Лабораторне заняття № 9
- •1. Виділення нуклеопротеїнів
- •2. Виявлення вуглеводів у складі нуклеопротеїнів (реакція з орцином)
- •3. Виявлення пуринових основ у складі нуклеопротеїнів
- •4. Виявлення фосфорної кислоти в складі нуклеопротеїнів
- •5. Виявлення білків у складі нуклеопротеїнів
- •6. Якісне визначення днк за Діше
- •7. Визначення вмісту днк за Броді
- •4. Контрольні тестові завдання
- •5. Приклади завдань підсумкового контролю
- •6. Тематика індивідуальної роботи
- •7. Варіанти та завдання для виконання контрольної роботи студентам заочної форми навчання
- •8. Рекомендована література
- •Біохімія рослин. Інтерактивний комплекс навчально-методичного забезпечення
- •33028, Рівне, вул. Соборна, 11
1. Визначення оптимальної температури дії ферментів
Принцип методу. Швидкість ферментативної реакції закономірно зростає приблизно в 2-3 рази при підвищенні температури на кожні 100 С. На відміну від неферментативних процесів таке зростання спостерігається лише у вузькому інтервалі температур оптимального значення. Після досягнення температури 40-500 С швидкість більшості ферментативних процесів починає зменшуватись, що пояснюється тепловою денатурацією молекули ферменту та втратою її ферментативної активності.
Обладнання та реактиви. Штатив із пробірками, піпетки градуйовані, крапельниця, ванночка з льодом, водяна баня, термометр лабораторний, годинник, 1 %-ий розчин крохмалю, розведена слина (1:10), реактив Люголя.
Хід роботи: В чотири пронумеровані пробірки внести 2 мл розчину крохмалю та додати в кожну з них 0,5 мл розведеної слини. Одну з пробірок поставити в ванночку з льодом (температура близько 00 С), другу – залишити в штативі при кімнатній температурі, третю – поставити на водяну баню з температурою 37-400 С, четверту – на водяну баню з температурою 70-80 0С. Через 5-7 хв. у пробірки додати по 1-2 краплі реактиву Люголя. Різне забарвлення з йодом і, відповідно, різна глибина гідролізу крохмалю зумовлені різною швидкістю ферментативної реакції при різних температурах. Результати спостережень зпівставити з приведеними нижче даними:
|
00 С |
200 С |
400 С |
800 С |
забарвлення досліджува-ного розчину при реакції з йодом |
фіолетове |
червоно- буре |
жовте |
оранжеве |
назва забарвлених продуктів реакції |
амінодек- стрини |
еритро-декстрини |
мальтоза |
охродек-стрини |
2. Специфічність дії ферментів
Принцип методу. Ферменти характеризуються строгою специфічністю дії на субстрати. Вони здатні перетворювати лише певну речовину або невелику групу близьких за хімічною природою речовин. Так, наприклад, амілаза каталізує гідролітичне розщеплення глікозидних зв’язків крохмалю та нездатна гідролізувати дисахариди (сахарозу, мальтозу).
Обладнання та реактиви. Штатив із пробірками, піпетки градуйовані, скляна паличка, водяна баня, термометр лабораторний, годинник, 1 %-ий розчин крохмалю, розведена слина (1:10), препарат сахарази, реактив Фелінга.
Хід роботи: В дві пробірки внести по 3 мл розчину крохмалю. В одну з пробірок додати 1 мл розведеної слини, що містить у собі амілазу, а в другу – 1 мл препарату сахарази. Вміст пробірок перемішати й поставити на водяну баню з температурою 370 С на 10 хв. для гідролізу. Після проведення гідролізу вміст пробірок перевірити за допомогою реактиву Фелінга (див. лабор. заняття № 1) на наявність у ньому продуктів гідролізу крохмалю. За результатами реакцій зробити відповідні висновки про специфічність дії амілази.
3. Групова специфічність дії сахарази
Принцип методу. Фермент сахараза специфічна по відношенню до фруктозної частини дисариду сахарози та трисахариду рафінози. Тому розщепленню піддається ß-глікозидний зв’язок, який знаходиться ближче до фруктозної частини даних молекул. Продукти ферментативного гідролізу сахарози та рафінози дають позитивну реакцію з реактивом Фелінга.
Обладнання та реактиви. Штатив із пробірками, піпетки градуйовані, скляні палички, термостат, нагрівач, годинник, 1 %-ий розчин рафінози, 1 %-ий розчин сахарози, препарат сахарази, реактив Фелінга.
Хід роботи: В дві пробірки внести по 1 мл препарату сахарази. В одну з пробірок додати 2 мл розчину сахарози, в другу – 2 мл рафінози. Вміст пробірок перемішати й поставити на 5-10 хв. у термостат із температурою 380 С. Потім в обидві пробірки додати по 3 мл реактиву Фелінга, добре перемішати й суміш нагріти до кипіння. При цьому в обох пробірках спостерігається утворення червоного осаду оксиду міді (І).