
- •Типова програма вибіркової навчальної дисципліни ”Біохімія рослин”
- •1.1. Загальні відомості про дисципліну.
- •1.2. Мета та завдання вивчення дисципліни.
- •1.3. Тематичний план і розподіл навчального часу.
- •1.4. Програмний матеріал змістовних модулів.
- •1.5. Завдання для самостійної роботи.
- •1.6. Оцінювання знань студентів.
- •Розподіл балів обов’язкового контролю, присвоюваних студентам (у чисельнику – % від максимально можливої суми, в знаменнику – абсолютна кількість балів)
- •2. Методичні рекомендації до вивчення окремих модулів і тем дисципліни
- •Тема 1. Біохімія рослин як наука. Хімічний склад рослин.
- •Тема 2. Вуглеводи.
- •Тема 3. Ліпіди.
- •Тема 5-6. Білки.
- •Тема 7. Ферменти.
- •Тема 8. Нуклеїнові кислоти.
- •Тема 9. Метаболізм. Біохімія анаеробного перетворення вуглеводів.
- •Тема 10. Біохімія аеробного перетворення вуглеводів.
- •Тема 11. Біохімія фотосинтезу та хемосинтезу.
- •Тема 12. Білковий обмін. Обмін нуклеїнових кислот.
- •3. Лабораторний практикум Лабораторне заняття № 1
- •Теоретична частина
- •Якісна реакція на глюкозу (реакція Троммера)
- •Якісна реакція на глюкозу (реакція Фелінга)
- •Відновлення аміачного розчину гідроксиду срібла глюкозою
- •4. Реакція з α-нафтолом (реакція Мілиша)
- •5. Реакція на пентози
- •Реакція на сахарозу
- •7. Реакція крохмалю з йодом
- •8. Гідроліз крохмалю
- •9. Визначення вмісту глюкози за допомогою реакції відновлення оксиду міді (іі) в оксид міді (і)
- •10. Визначення вмісту сахарози в коренеплодах цукрових буряків
- •Контрольні питання
- •Лабораторне заняття № 2
- •1. Розчинність ліпідів і утворення емульсії
- •2. Омилення жиру
- •3. Утворення вільних жирних кислот
- •4. Утворення нерозчинних кальцієвих мил
- •5. Визначення числа омилення жиру
- •7. Визначення йодного числа жиру
- •8. Визначення перекисного числа в прогірклому жирі
- •Лабораторне заняття № 3
- •Щавлева кислота
- •Пігменти листка
- •1. Визначення вмісту щавлевої кислоти
- •2. Отримання спиртового розчину (витяжки) пігментів
- •3. Розподіл пігментів за Краусом
- •4. Омилення хлорофілу лугом
- •5. Одержання феофітину та зворотне заміщення водню атомом металу
- •6. Фотосенсибілізуюча дія хлорофілу на процес переносу водню за Гуревичем
- •Лабораторне заняття № 4
- •1. Якісні реакції на вітамін a
- •2. Якісні реакції на вітамін к
- •3. Якісні реакції на вітамін е
- •4. Реакція відновлення вітаміну в2 (рибофлавіну)
- •5. Якісні реакції на вітамін с
- •6. Якісні реакції на вітамін в5 або рр
- •7. Кількісне визначення вмісту вітаміну с за Тільмансом
- •8. Кількісне визначення вмісту вітаміну р у чаї за Левенталем
- •Лабораторне заняття № 5
- •1. Нінгідринова реакція
- •2. Реакція з азотистою кислотою
- •3. Утворення комплексної солі міді
- •4. Реакція Фоля на “слабкозв’язану” сірку цистеїну та цистину
- •5. Біуретова реакція на пептидні зв’язки
- •6. Ксантопротеїнова реакція
- •7. Мікрометод визначення амінного азоту мідним способом
- •Лабораторне заняття № 6
- •1. Визначення окремих амінокислот методом розподільної хроматографії на папері
- •2. Біуретова реакція на виявлення пептидних зв’язків у білках
- •3. Кольорові реакції з білками на виявлення карбонових амінокислот
- •4. Кольорові реакції з білками на виявлення циклічних амінокислот
- •5. Реакції осадження білків
- •6. Визначення ізоелектричної точки білків (желатину)
- •Лабораторне заняття № 7-8
- •1. Визначення оптимальної температури дії ферментів
- •2. Специфічність дії ферментів
- •3. Групова специфічність дії сахарази
- •3. Визначення активності каталази методом о.М. Баха та а.І. Опаріна
- •4. Визначення активності тирозинази
- •Лабораторне заняття № 9
- •1. Виділення нуклеопротеїнів
- •2. Виявлення вуглеводів у складі нуклеопротеїнів (реакція з орцином)
- •3. Виявлення пуринових основ у складі нуклеопротеїнів
- •4. Виявлення фосфорної кислоти в складі нуклеопротеїнів
- •5. Виявлення білків у складі нуклеопротеїнів
- •6. Якісне визначення днк за Діше
- •7. Визначення вмісту днк за Броді
- •4. Контрольні тестові завдання
- •5. Приклади завдань підсумкового контролю
- •6. Тематика індивідуальної роботи
- •7. Варіанти та завдання для виконання контрольної роботи студентам заочної форми навчання
- •8. Рекомендована література
- •Біохімія рослин. Інтерактивний комплекс навчально-методичного забезпечення
- •33028, Рівне, вул. Соборна, 11
5. Одержання феофітину та зворотне заміщення водню атомом металу
Принцип методу. Атом магнію порівняно слабко утримується в порфіриновому ядрі хлорофілу й при обережній дії сильних кислот легко заміщується двома протонами з утворенням феофітину бурого кольору
H 39C20OOC
C 32H30ON4Mg + 2HCl
H 3COOC
H 39C20OOC
C 32H30ON4H2 + MgCl2 .
H3COOC
Якщо на феофітин діяти солями міді, цинку або ртуті, то замість двох протонів у ядро входить відповідний метал і продукти реакції забарвлюються в зелений колір. Однак, отримане забарвлення трохи відрізняється від забарвлення хлорофілу
H39C20OOC
C32H30ON4H2 + Cu (CH3COO)2
H3COOC
H39C20OOC
C32H30ON4Cu + 2CH3COOH .
H3COOC
Таким чином, колір хлорофілів обумовлений металоорганічним зв’язком у їхніх молекулах. Зворотне введення магнію в феофітин відбувається досить важко.
Обладнання та реактиви: Штатив із пробірками, піпетки градуйовані, крапельниця, корок, водяна баня, 10 %-ий розчин соляної кислоти, кристали ацетату міді.
Хід роботи. В дві пробірки внести по 2-3 мл спиртової витяжки пігментів і додати по одній-дві краплі розчину соляної кислоти. При збовтуванні зелене забарвлення хлорофілу переходить у буре, що характерне для феофітину. Одну пробірку з феофітином залишити для контролю, а в другу внести кілька кристалів ацетату міді та нагріти розчин на водяній бані до кипіння. В міру нагрівання бурий колір розчину змінюється на зелений у результаті утворення хлорофілоподібного похідного міді.
6. Фотосенсибілізуюча дія хлорофілу на процес переносу водню за Гуревичем
Принцип методу. Сутність світлової фази фотосинтезу полягає в окисленні води до молекулярного кисню з використанням променевої енергії, що поглинається хлорофілом. Електрони, що вивільняються при цьому, передаються на НАДФ+, який відновлюється до НАДФ(Н)Н+.
Фотоокислення води та виділення кисню відбувається в ході реакцій, які протікають у фотосистемі ІІ, тоді як НАДФ+ відновлюється в фотосистемі І. Обидві фотосистеми пов’язані одна з одною послідовністю переносників електронів, які утворюють між ними “міст“, що спрямований ніби “під гору”. В результаті електрони від води проходять Z-подібний шлях. Під впливом індукованого світлом потоку електронів виникає трансмембранний протонний градієнт, унаслідок чого з внутрішньої сторони тилакоїдної мембрани середовище стає більш кислим, ніж із зовнішньої. Послідуюче повернення йонів H+ із тилакоїда в строму через вмонтовану в мембрані АТФ-азу призводить до утворення АТФ із АДФ і неорганічного фосфату, тобто відбувається фотофосфорилювання.
Фотосенсибілізуюча роль хлорофілу може бути продемонстрована на модельних реакціях із виділеним із рослин пігментом. Для цього як джерело водню беруть аскорбінову кислоту, а як акцептор водню – метиленовий червоний, який, приєднуючи водень, відновлюється до незабарвленої лейкосполуки. Аскорбінова кислота окислюється при цьому в дегідроаскорбінову кислоту.
Обладнання та реактиви: Ваги технохімічні, штатив із пробірками, піпетки градуйовані, піпетки мірні на 5 мл, крапельниця, шпатель, електрична лампочка потужністю 300 Вт, годинник, чорний папір, насичений спиртовий розчин метиленового червоного, 96 %-ий розчин етилового спирту, спиртова витяжка хлорофілу, кристалічна аскорбінова кислота.
Хід роботи. Взяти чотири пробірки: в три з них налити по 5 мл спиртової витяжки хлорофілу, в четверту – 5 мл етилового спирту. В першу, другу та четверту пробірки внести по 50 мг кристалічної аскорбінової кислоти й декілька раз їх струсити. В усі пробірки з хлорофілом додати краплинами відфільтрований спиртовий розчин метиленового червоного до тих пір, поки зелене забарвлення не перейде в червоно-буре. В четвертій пробірці забарвлення розчину за допомогою цього індикатора довести до яскраво-червоного. Другу пробірку закрити чохлом із чорного паперу. Потім усі пробірки поставити в штатив і освітлювати електричною лампочкою (на 300 Вт), розмістивши її на відстані приблизно 15 см від штативу.
Після десяти-п’ятнадцятихвилинного освітлення в першій пробірці в результаті відновлення метиленовий червоний знебарвиться й розчин знову набуде зеленого кольору. В інших пробірках забарвлення розчину не зміниться, оскільки без світла, аскорбінової кислоти або хлорофілу метиленовий червоний не відновлюється. Результати досліду занести в таблицю 3.1.
Табл. 3.1. Визначення фотосенсибілізуючої дії хлорофілу
варіант |
склад суміші в пробірках |
умови |
результат |
|||
хлоро-філ, мл |
етило-вий спирт, мл |
крист. аскор-бінова кисло-та, мг |
спирт. розчин метиле-нового червоно-го |
|||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
1 |
5 |
- |
50 |
додають до появи червоно-бурого кольору |
світ-ло |
|
2 |
5 |
- |
50 |
те саме |
тем-нота |
|
3 |
5 |
- |
- |
те саме |
світ-ло |
|
4 |
- |
5 |
50 |
додають до появи яскраво-червоно-го кольору |
світ-ло |
|
КОНТРОЛЬНІ ПИТАННЯ
Біологічна роль, форми знаходження та окремі представники органічних кислот.
Поширення, вміст і форми знаходження щавлевої кислоти.
Принцип кількісного визначення вмісту щавлевої кислоти в рослинному матеріалі.
Поняття про рослинні пігменти, їх склад, функціональна роль і локалізація в клітині.
Загальне поняття про хлорофіли рослин, їх загальна структура.
Хімічна будова хлорофілів a і b.
Загальне поняття про фікобіліни.
Каротиноїди, їх склад, функціональна роль, окремі представники.
Основні фізико-хімічні та хімічні властивості рослинних пігментів і їх визначення в лабораторних умовах.
У чому проявляється фотосенсибілізуюча роль хлорофілу та її демонстрація в лабораторних умовах.