
- •I. Огляд літератури
- •1. Дріжджі Saccharomyces cerevisiae – універсальний модельний організм.
- •1.1. Дріжджі Saccharomyces cerevisiae як експериментальна система молекулярної біології
- •1.2 Експериментальні підходи у молекулярній біології дріжджів
- •2.1 Структура Ту-елементів
- •2.2 Транспозиція Ту-елементів
- •3. Альтернативні системи мультикопійної інтеграції векторів у Saccharomyces cerevisiae
- •3.1 Альтернативна система мультикопійної інтеграції у Saccharomyces cerevisiae з використанням субтеломерних y’-елементів
- •2. Матеріали і методи досліджень
- •2.1. Матеріали досліджень
- •2.2. Організми
- •2.3. Поживні середовища та умови культивування
- •2.4. Визначення біомаси клітин
- •2.5. Методи досліджень
- •2.5.1. Рестрикційний аналіз днк
- •2.5.2. Дефосфорилювання
- •2.5.3. Елюція фрагментів днк з агарозного гелю
- •2.5.4. Лігування днк-вставки з днк-вектором
- •2.5.5. Електрофорез днк в агарозному гелі
- •2.5.6. Виділення плазмідної днк з клітин e.Coli
- •2.5.7. Електротрансформація клітин е. Сoli
- •2.5.8. Полімеразна ланцюгова реакція (плр)
- •2.5.9. Виділення хромосомної днк з клітин s. Сerevisiae
- •2.5.10. Довготривале зберігання бактерійних та дріжджових трансформантів
- •2.5.11. Трансформація дріжджів s. Сerevisiae Li-Ac методом (хімічна трансформація)
- •2.5.12. Визначення стабільності дріжджових трансформантів
- •2.5.13. Отримання безклітинного екстракту
- •2.5.14. Визначення концентрації білка у безклітинних екстрактах методом Лоурі
- •2.5.15. Визначення активності лужної фосфатази
- •3. Результати
- •3.1 Модифікація гена kanMx4, що забезпечує резистентність до антибіотика генетицину.
- •3.2. Конструювання рекомбінантних штамів s. Cerevisiae з надекспресією інтактної та вкороченої форми гена pho8.
2.5.7. Електротрансформація клітин е. Сoli
Свіжу колонію бактерійних клітин інокулюють в 2 мл рідкого середовища LB та вирощують в умовах аерації при 370С протягом ночі. 1 мл „нічної” культури переносять в 100 мл рідкого середовища LB та підрощують до ОD 600 = 0,5 – 1,0 (кювета 1 см), що відповідає 1010 кл./мл. Клітини осаджують 15 хв. при 4 000 об./хв., 40С і промивають в 400 мл стерильній холодній бідистильованій воді. Клітини ресуспендують в 200 – 300 мкл холодного стерильного 10 % гліцерину і переносять в стерильні епендорфи по 40 мкл для довготривалого зберігання при – 700С.
До 40 мкл суспензії клітин додають 1-4 нг плазмідної ДНК (зразок) і вносять суміш на дно охолодженої 2-мм кювети; здійснюють електротрансформацію (12,25 кВ/см, 50 мкФ, 129 Ом) тривалістю 5-6 мс. До кожного зразка додають по 960 мкл рідкого середовища LB, трансформовані клітини інкубують протягом 1 год при 370С. Отриману суспензію висівають на чашки з селективним середовищем та інкубують від 12 до 16 годин при 370С.
2.5.8. Полімеразна ланцюгова реакція (плр)
Для забезпечення протікання кількох паралельних реакцій готували реакційну суміш, у склад якої входили вода, буфер, дезоксинуклеотидтрифосфати (дНТФ), праймери і полімераза, в одному епендорфі, а потім розділяли на кілька окремих проб. Після розділення додавали розчин ДНК. Дані реакції проводилися на ампліфікаторі Gene Amp© PCR System 9700.
Склад реакційної суміші
реагент кінцева концентрація
стерильна деіонізована вода -
10х PCR буфер 1х
2 мМ суміш дНТФ 0,2 мМ кожного
праймер 1 0,1-1 мкл
праймер 2 0,1-1 мкл
полімераза 1,25 u/ 50мкл
матриця ДНК 10 пг- 1 мкг
2.5.9. Виділення хромосомної днк з клітин s. Сerevisiae
Реактиви:50мМ ЕДТА (рН 8,0); літиказа (50 мг/мл); ізопропанол; 70% етанол; РНКаза А; Фенол; 96% етанол; 5 М калій ацетат; 3 М натрій ацетат; Nuclei Lysis Solution: 0,2% ДСН; 50мМ ЕДТА (рН 8,0).
Культуру клітин підрощували протягом ночі у поживному середовищі (3 мл) при температурі 28-30˚С. Культуру осаджували при 13000 g потягом 2 хвилин. Клітини ресуспендували в 293 мкл 50мМ ЕДТА та додавали 7 мкл літикази (концентрація 20 мг/мл) і перемішували. Клітини інкубували при 37˚С протягом години для руйнування клітинної стінки. Після цього клітини осаджували, додавали 300 мкл Nuclei Lysis Solution та інтенсивно піпетували. Епендорфи прогрівали при температурі 65˚С протягом 15 хвилин. Потім додавали 100 мкл 5 М калій ацетату для осадження білків. Білки відділяли центрифугуванням при 13000 g потягом 3 хвилин. Супернатант додавали у епендорфи до 0,7 обєму ізопропанолу, центрифугували при 13000 g 2 хв, промивали в 500 мкл 76% етанолу, висушували, розчиняли в 100 мкл дистильованої води.
Потім додавали рівний об’єм фенолу, перемішували, центрифугували при 14000 об/хв 10 хв. Верхню (водну) фазу відбирали, до неї додавали 1/10 об’єму 3 М натрій ацетату і 2,5 об’єми 96% етанолу. Інкубували при температурі -20°С 10-15 хв. Суміш центрифугували при 14000 об/хв 10 хв при температурі +4°С, осад ДНК промивали 76% етанолом. Розчиняли в дистильованій воді чи ТЕ буфері.