- •Дс. 03 технохимический контроль спиртового производства лабораторный практикум
- •260200 Производство продуктов питания из растительного сырья Специальность 260204 Технология бродильных производств и виноделие
- •Оглавление
- •Введение
- •Лабораторная работа №1 методы определения массовой доли влаги. Анализ качества зерна
- •Лабораторная работа №2 методы определения массовой концентрации углеводов. Определение условной крахмалистости зерна
- •Лабораторная работа №3 анализ качества осахаривающих материалов. Часть I
- •2.1 Фотоколориметрический метод
- •Лабораторная работа №4 анализ качества осахаривающих материалов. Часть II
- •Лабораторная работа №5 приготовление и анализ качества разваренной и осахаренной массы методы определения кислотности
- •Лабораторная работа №6 анализ зрелой бражки. Методы определения объемной доли этилового спирта.
- •Задание 5 Определение концентрации спирта в зрелой бражке
- •Лабораторная работа №7 микробиологический контроль спиртового производства. Количественное определение микроорганизмов
- •Лабораторная работа №8 анализ этилового спирта. Часть 1
- •Лабораторная работа №9 анализ этилового спирта. Часть 2
- •2.1 Анализ ректификованного спирта
- •2.2 Анализ спирта-сырца
- •3.1 Анализ ректификованного спирта
- •3.2 Анализ спирта-сырца
- •Библиографический список
Лабораторная работа №4 анализ качества осахаривающих материалов. Часть II
Цель работы: изучить требования, предъявляемые к осахаривающим материалам, используемым в спиртовой промышленности; освоить модифицированный фотоэлектроколориметрический метод определения амилолитической активности ферментных препаратов.
Аппаратура и реактивы:
- фотоэлектроколориметр;
- водяная баня, лабораторная посуда, пипетки;
- 2 %-ный раствор крахмала;
- буферные растворы ацетатный, рН 4,7;
- 0,1 н раствор соляной кислоты;
- основной раствор йода;
- рабочий раствор йода, дистиллированная вода;
- амилолитические ферментные препараты.
Задание 1 Определить α-амилазную активность ферментных препаратов модифицированный фотоколориметрическим методом
Метод разработан К. М. Бендецким и Е. С. Павловой под руководством В. Л. Яровенко во ВНИИ пищевой биотехнологии (ВНИИПБТ). Он основан на определении скорости ферментативной реакции гидролиза крахмала, которую устанавливают по глубине превращения крахмала под действием фермента с применением колориметрической реакции крахмала с йодом. Глубину превращения крахмала по полученным данным определяют отношением подвергшихся гидролизу α-амилазой гликозидных связей к первоначальному числу этих связей в субстрате до гидролиза.
За единицу активности а-амилазы принимают такое количество фермента, которое катализирует расщепление за 1 мин при рН 4,7 и температуре 30° С 1 мкмоль гликозидных связей в растворимом крахмале при начальной его концентрации в инкубационной среде 1%.
Реактивы:
- 1 н ацетатный буфер с рН 4,7;
- 0,1 н раствор соляной кислоты;
- рабочий раствор йода.
Подготовка к анализу:
В качестве субстрата используют 2 %-ный раствор крахмала. 2 г растворимого крахмала с учетом влажности помещают в мерную колбу вместимостью 100 см3, добавляют 50 см3 дистиллированной воды, помещают колбу с содержимым в кипящую водяную баню и выдерживают при непрерывном перемешивании до полного растворения крахмала. После этого содержимое колбы охлаждают, добавляют 20 см3 1 н ацетатного буфера и доводят объем до метки дистиллированной водой при 20° С. Раствор крахмала готовят в день проведения анализа.
Проведение анализа:
Берут две пробирки, наливают в каждую по 5 см3 субстрата и ставят в ультратермостат с температурой 30±0,2 0С. Пробирки с содержимым выдерживают при этой температуре 10 мин. Одновременно прогревают при данной температуре ферментный раствор и дистиллированную воду. Затем в одну пробирку вносят 5 см3 дистиллированной воды (контрольная проба), в другую - 5 см3 ферментного раствора (опытная проба). Смеси быстро перемешивают и удерживают в ультратермостате при температуре 30+0,2° С в течение 10 и 20 мин. Через 10 и затем через 20 мин из реакционных смесей отбирают по 0,5 см3 раствора и переносят в колбы, куда предварительно наливают по 50 см3 рабочего раствора йода. Реакционные смеси выдерживают 20 мин при комнатной температуре, после чего измеряют оптическую плотность окрашенных растворов (опытного и контрольного) на электроколориметре в кювете с толщиной слоя 10 мм, используя красный светофильтр (длина волны = 650 нм).
Получают ряд значений оптической плотности At опытных растворов определяемых через 10 и 20 мин (A10 и A20), а также контрольных растворов при этих температурах (Ak).
Обработка результатов
α-Амилазную активность рассчитывают по формуле:
АС
=
, (4.1)
где At и Ак - оптическая плотность ислледуемого и контрольного растворов;
а - содержание ферментного препарата в реакционной среде, г/см3;
t – время инкубации, мин;
4,11 - постоянный коэффициент.
Пример. На анализ взят спиртоосажденный препарат культу A.awamori. Готовят его раствор - 0,1 г на 100 см3 дистиллированн воды. Затем разбавляют в 10 раз. Отбирают 5 см3 для проведения ферментативной реакции с 5 см3 субстрата. В 1 см3 реакционной среды держится препарата а = 5·10-5 г (0,1·1·5/100·10·10).
После проведения реакции с йодом были получены следующие значения оптических плотностей: А10 = 0,700, А20 = 0,520, Ак = 0,9 Подставляя полученные значения в формулу, можно рассчитать амилолитическую активность исследуемого препарата:
АС1 = = 1200,9 ед/г;
АС2 = = 1147,5 ед/г.
АС1 и АС2 - значения декстриногенной активности, вычисленые по данным, полученным за 10 и 20 мин инкубации, близки по величине (1200,9 и 1147,5). Среднее значение их составляет 1174 ед/г. Расхождение от средних значений ±2,69%, что говорит о том, что анализ проведен правильно. Для оценки исследуемого препарата используются средние данные.
Задание 3 Сделать выводы по проделанной работе, ответить на контрольные вопросы
Вопросы для контроля:
Расскажите методику определения амилолитической активности модифицированным фотоэлектроколориметрическим методом.
