- •1 Кинетика процессов утилизации субстрата, образования продуктов метаболизма и биомассы в культурах клеток
- •1.1 Идеальные реакторы для изучения кинетики клеточного роста
- •1.2 Идеальный реактор периодического действия
- •1.3 Идеальный проточный реактор с полным перемешиванием (прпп)
- •1.2 Кинетика сбалансированного роста
- •Рост филаментозных организмов
- •Структурированные модели кинетики клеточного роста
- •Компартментальные модели
- •Неструктурированные модели
- •Химически структурированные модели кинетики образования продуктов жизнедеятельности клеток
- •Кинетика образования продуктов жизнедеятельности филаментозными организмами
- •Кинетика тепловой гибели клеток и спор
- •Заключение
- •Вопросы для самоконтроля.
- •2 Проектирование и расчет биологических реакторов
- •1. Идеальные биореакторы
- •1.1. Реакторы периодического действия с добавлением субстрата
- •1.2. Реакции в прпп, катализируемые ферментами
- •1.3. Проточные реакторы с полным перемешиванием для культур клеток и пристеночный рост клеток
- •9.1.4. Идеальный трубчатый реактор полного вытеснения (трпв)
- •3. Реакторы с неидеальным перемешиванием
- •3.1. Время выравнивания концентраций в реакторах с перемешиванием
- •3.4. Взаимосвязь между перемешиванием и биологическими превращениями
- •4. Стерилизаторы
- •4.1. Периодическая стерилизация
- •4.2. Непрерывная стерилизация
- •5. Иммобилизованные биокатализаторы
- •5.1. Типы биокатализаторов на основе иммобилизованных клеток и их свойства
- •5.2. Применение биокатализаторов на основе иммобилизованных клеток
- •7. Технология микробиологических процессов
- •7.1. Подбор состава среды
- •7.2. Проектирование типичного асептического аэробного микробиологического процесса и его ведение
- •7.3. Биореакторы других типов
- •8. Особенности технологии процессов с участием растительных и животных клеток и соответствующих реакторов
- •8.1. Культивирование животных клеток; требования к среде
- •8.2. Промышленные реакторы для крупномасштабных процессов с участием животных клеток
- •8.3. Культивирование растительных клеток
- •1. Детекторы для определения физических и химических параметров среды и газов
- •1.1. Детекторы для определения физических свойств среды и газов
- •1.2. Детекторы для определения химического состава среды
- •1.3. Газовый анализ
- •2. Детекторы для непрерывного контроля характеристик популяции клеток
- •3. Автономные методы анализа
- •3.1. Определение свойств среды
- •3.2. Анализ состава популяции клеток
- •4. Эвм и интерфейсы
- •4.1. Основные элементы цифровых эвм
- •4.2. Интерфейсы и периферийные устройства эвм
- •4.3. Системы программного обеспечения
- •5. Анализ данных
- •5.1. Сглаживание и интерполяция данных
- •6. Управление процессами биохимической технологии
- •6.1. Непосредственное управление процессами
- •6.2. Каскадное управление метаболизмом
3. Автономные методы анализа
В этом разделе мы рассмотрим принципы работы некоторых аналитических методов определения свойств культуральных жидкостей, биокатализаторов и биосорбентов. Вообще говоря, для этой цели можно использовать любые методы аналитической химии, спектроскопии и биохимии; очевидно, что в настоящем пособии не представляется возможным дать сколько-нибудь полное описание этой темы. Поэтому мы сосредоточим внимание на некоторых новых методах определения тех свойств клеток, которые наиболее важны для контроля микробиологических процессов и управления ими, а также рассмотрим другие наиболее часто применяемые методы анализа.
3.1. Определение свойств среды
Первая стадия обработки пробы, отобранной из биореактора или аппарата, где происходит разделение продуктов, обычно заключается в отделении твердой фазы (клеток или любых других нерастворимых компонентов) от жидкой путем фильтрования или центрифугирования. Применение затем той или иной конкретной аналитической методики зависит от природы изучаемого материала и цели анализа. Действительно, методы анализа, пригодные для изучения синтетической среды, могут оказаться неточными или вообще неприменимыми в случае сложной среды неопределенного состава, которая может содержать мешающие ходу анализа вещества.
Из параметров находящейся в биореакторе системы обычно наибольший интерес представляют концентрации субстратов и других компонентов, влияющих на скорости реакций, а также концентрации продуктов реакции и ингибиторов. В микробиологических процессах часто желательно также определять содержание источников углерода и азота, а иногда и ряда ионов, например ионов магния или фосфатного иона. По свойствам и степени сложности химической структуры продукты жизнедеятельности клеток могут варьировать в очень широких пределах, например, от этанола до гораздо более сложных соединений типа пенициллина и биологических макромолекулярных веществ типа ферментов и других белков. Соответственно и методы анализа продуктов микробиологических процессов очень разнообразны.
Для количественного определения компонентов жидкой фазы обычно применяют методы, основанные на измерении показателя преломления с помощью рефрактометрических детекторов, поглощения света при определенной длине волны с помощью спектрофотометра или флуоресценции (после возбуждения при одной длине волны и последующей эмиссии при больших длинах волн) с помощью спектрофлуорометра. Сахара, например, практически не поглощают свет и не флуоресцируют, но влияют на показатель преломления раствора. С другой стороны, белки и нуклеиновые кислоты удобно определять спектрофотометрическим и спектрофлуорометрическим методами. Последний метод обычно более чувствителен и позволяет определять более низкие концентрации веществ, однако спектрофлуорометры намного дороже спектрофотометров, поэтому спектрофотометрия остается одним из самых распространенных и популярных методов. Чтобы устранить помехи со стороны других растворенных веществ, часто приходится прибегать к операциям концентрирования или отделения определяемого соединения от других растворенных веществ. Иногда отделение удается осуществить путем химической обработки, в результате которой мешающие вещества разрушаются или осаждаются. Так, например, РНК экстрагируют из лизатов клеток перхлорной кислотой HClO4 при 37 °C и определяют с помощью орсина (специфического реагента на рибозу). Мешающие определению сахара отделяются в процессе экстракции.
В ходе изучения химического состава среды обычно применяют и более тонкие методы разделения близких по химической природе веществ, например хроматографические. Хроматографические методы разделения основаны на селективном удерживании некоторых соединений неподвижной фазой, находящейся в колонке. Селективность удерживания обеспечивается предпочтительным сродством по отношению к неподвижной фазе одних веществ по сравнению с другими. Так, при анализе смесей сахаров (например, мальтозы и глюкозы) применяют метод высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), в котором разделение достигается за счет различного сродства этих двух углеводов к первичным аминогруппам на поверхности носителя (неподвижной фазы), содержащегося в обычной выпускаемой серийно колонке. Различные сахара вымываются с колонки в разное время; их можно обнаружить и определить количественно с помощью рефрактометрического детектора. Метод ВЭЖХ применяется и для определения многих других компонентов среды. Помимо ВЭЖХ для разделения смесей близких веществ используют ионообменную и эксклюзионную хроматографию (в отличие от ВЭЖХ в этих хроматографических методах разделение осуществляется при атмосферном или слегка повышенном давлении) с последующим количественным определением индивидуальных компонентов среды.
Как мы уже отмечали, полезным методическим приемом органического анализа является селективное превращение определяемых соединений в производные, легко поддающиеся непосредственному определению. На этом принципе основан один из стандартных лабораторных методов определения глюкозы, в котором ферменты глюкозооксидаза и пероксидаза селективно превращают глюкозу в окрашенное соединение, концентрацию которого определяют спектрофотометрически.
В последние годы для определения ряда биологически важных ионов широко применяют ионоселективные электроды. Так, азотсодержащие клеточные вещества можно определять с помощью NH3-электрода непосредственно (NH3, а после соответствующего изменения рН также NH4+) после восстановления (NO2-, NO3-) или после обработки ферментами (аминокислоты, мочевина). Разработаны ионоселективные электроды для определения многих других ионов, влияющих на биохимические структуры и их функции, в том числе K+, Na+, Са2+.
Иногда концентрацию того или иного вещества в растворе определяют путем измерения его биологической активности. Именно таким способом обычно определяют, например, концентрацию пенициллина в культуральной жидкости при производстве этого антибиотика. Здесь мерой активности пенициллина в растворе является размер зоны погибших бактерий, окружающей пористый диск, пропитанный изучаемым раствором. Содержание ферментов в подавляющем большинстве случаев определяют путем измерения их активности. Для этой цели раствор пробы обрабатывают стандартным субстратом в стандартных условиях с последующим измерением скорости исчезновения субстрата или образования продукта реакции; соответствующие измерения часто осуществляют спектрофотометрическим или спектрофлуорометрическим методами.
Другой подход к анализу биологически важных веществ основан на их переведении в газовую фазу и последующем определении. Глюкозу, например, превращают в триметилсилильное (ТМС) производное, которое затем переводят в газовую фазу в системе ввода газового хроматографа, а потом определяют с помощью пламенно-ионизационного детектора. Понятно, что таким же путем без модификации изучаемых веществ можно определять содержание в культуральной жидкости относительно летучих компонентов, например этанола, ацетона и бутанола.
В аналитических лабораториях при пилотных и крупномасштабных промышленных ферментерах часто имеется один или несколько автоанализаторов для проведения мокрого химического анализа, где автоматически осуществляются операции экстракции, разведения и определения нескольких веществ. Время выполнения анализов составляет 10—30 мин, что во многих случаях вполне достаточно для успешного контроля за ходом процессов в биореакторе.
