- •1 Кинетика процессов утилизации субстрата, образования продуктов метаболизма и биомассы в культурах клеток
- •1.1 Идеальные реакторы для изучения кинетики клеточного роста
- •1.2 Идеальный реактор периодического действия
- •1.3 Идеальный проточный реактор с полным перемешиванием (прпп)
- •1.2 Кинетика сбалансированного роста
- •Рост филаментозных организмов
- •Структурированные модели кинетики клеточного роста
- •Компартментальные модели
- •Неструктурированные модели
- •Химически структурированные модели кинетики образования продуктов жизнедеятельности клеток
- •Кинетика образования продуктов жизнедеятельности филаментозными организмами
- •Кинетика тепловой гибели клеток и спор
- •Заключение
- •Вопросы для самоконтроля.
- •2 Проектирование и расчет биологических реакторов
- •1. Идеальные биореакторы
- •1.1. Реакторы периодического действия с добавлением субстрата
- •1.2. Реакции в прпп, катализируемые ферментами
- •1.3. Проточные реакторы с полным перемешиванием для культур клеток и пристеночный рост клеток
- •9.1.4. Идеальный трубчатый реактор полного вытеснения (трпв)
- •3. Реакторы с неидеальным перемешиванием
- •3.1. Время выравнивания концентраций в реакторах с перемешиванием
- •3.4. Взаимосвязь между перемешиванием и биологическими превращениями
- •4. Стерилизаторы
- •4.1. Периодическая стерилизация
- •4.2. Непрерывная стерилизация
- •5. Иммобилизованные биокатализаторы
- •5.1. Типы биокатализаторов на основе иммобилизованных клеток и их свойства
- •5.2. Применение биокатализаторов на основе иммобилизованных клеток
- •7. Технология микробиологических процессов
- •7.1. Подбор состава среды
- •7.2. Проектирование типичного асептического аэробного микробиологического процесса и его ведение
- •7.3. Биореакторы других типов
- •8. Особенности технологии процессов с участием растительных и животных клеток и соответствующих реакторов
- •8.1. Культивирование животных клеток; требования к среде
- •8.2. Промышленные реакторы для крупномасштабных процессов с участием животных клеток
- •8.3. Культивирование растительных клеток
- •1. Детекторы для определения физических и химических параметров среды и газов
- •1.1. Детекторы для определения физических свойств среды и газов
- •1.2. Детекторы для определения химического состава среды
- •1.3. Газовый анализ
- •2. Детекторы для непрерывного контроля характеристик популяции клеток
- •3. Автономные методы анализа
- •3.1. Определение свойств среды
- •3.2. Анализ состава популяции клеток
- •4. Эвм и интерфейсы
- •4.1. Основные элементы цифровых эвм
- •4.2. Интерфейсы и периферийные устройства эвм
- •4.3. Системы программного обеспечения
- •5. Анализ данных
- •5.1. Сглаживание и интерполяция данных
- •6. Управление процессами биохимической технологии
- •6.1. Непосредственное управление процессами
- •6.2. Каскадное управление метаболизмом
1.2. Реакции в прпп, катализируемые ферментами
В зависимости от способа обеспечения ферментативной активности при осуществлении катализируемых ферментами реакций используются ПРПП различных конструкций (рис. 3). В проточном реакторе простейшей конструкции ферменты постоянно вводятся в реактор и выводятся из него по соответствующим линиям (рис. 3, а). Очевидно, такая конструкция оправдана только в том случае, если ферменты настолько дешевы, что их расходом можно пренебречь.
РИС. 3. Схематическое изображение ПРПП различного типа, применяемых для проведения катализируемых ферментами реакций.
а — реактор с непрерывной подачей раствора ферментов; б — реактор с удерживанием ферментов в растворе с помощью полупроницаемой мембраны; в — реактор с удерживанием гранул иммобилизованного фермента с помощью сетчатого фильтра; г — реактор с удерживанием гранул иммобилизованного фермента в контейнерах, размещенных на валу мешалки; д—реактор с рециркуляцией реакционной массы через короткую колонну, наполненную иммобилизованным ферментом.
Более дорогостоящие ферменты необходимо удерживать в реакторе или возвращать в него путем рециркуляции. Ознакомившись в гл. 4 с методами иммобилизации ферментов, мы уже знаем, что эту цель можно достигнуть несколькими путями.
Во-первых, (рис. 3, б) на пути вытекающего из реактора потока можно установить ультрафильтрационную мембрану с порами, диаметр которых позволяет удерживать относительно большие молекулы ферментов в растворе. Если фермент иммобилизован на частицах нерастворимого носителя, суспендированного в реакционной смеси, то для предотвращения потери фермента с вытекающим из реактора потоком достаточно установки простого сетчатого фильтра (рис. 3,6). Принцип другого подхода к удерживанию иммобилизованных ферментов в реакторе схематично изображен на рис 3, г; здесь фермент удерживается в сетчатых контейнерах, укрепленных на валу мешалки. Реакторы такой конструкции, широко применявшиеся также для изучения реакций в газовой фазе на металлических катализаторах на носителях, позволяют свести к минимуму сопротивление массопередаче между жидкой фазой и гранулами иммобилизованного фермента. Та же цель может быть достигнута и более удобным путем — посредством циркуляции реакционной смеси в системе реактор с полным перемешиванием — короткая колонна с насадкой иммобилизованного фермента (рис. 3, d). Если скорость рециркуляции достаточно высока и в каждом цикле при однократном прохождении реакционной смеси через колонну превращению подвергается небольшая часть субстрата (менее 1%), то вся система становится эквивалентной проточному реактору с полным перемешиванием. Отсюда следует, что эта конструкция реактора особенно удобна для изучения кинетики реакций в лабораторных исследованиях.
Рециркуляция фермента возможна только при условии, что фермент легко выделить из вытекающего из реактора потока продуктов реакции. Есть два перспективных подхода к решению этой задачи, один из которых связан с включением фермента в мембрану из жидкого поверхностно-активного вещества или фосфолипида, а второй — с иммобилизацией ферментов на магнитных носителях.
Независимо от типа и конструкции реактора основная задача всегда сводится к поддержанию заданной концентрации фермента в ПРПП. Если эта задача решена, то мы можем сконцентрировать наше внимание на расчете концентраций субстрата и продукта реакции в вытекающем из реактора потоке. Здесь применимы рассмотренные выше общие принципы и уравнения материального баланса, используемые для описания роста популяции микроорганизмов, а также дополнительные ограничения, налагаемые относительно простой стехиометрией изучаемых реакций.
Например,
для простой реакции
из
каждого моля прореагировавшего вещества
S образуется один моль вещества Р, и,
следовательно, концентрации этих веществ
на входе в реактор (s0,
p0)
и на выходе из реактора (s,
р)
связаны соотношением
(5)
Если условие уравнения (9.5) выполнено, то скорость реакций v(s, p), которая является функцией как s, так и р, можно выразить только через s, что упрощает соответствующие выражения. В этом случае уравнение материального баланса по субстрату принимает форму
(6)
В табл. 1 даны решения этого уравнения для различных типов кинетики реакций. Приведенные в таблице уравнения проще использовать непрямым путем; для этого нужно в правую часть уравнения перенести необходимые параметры превращения субстрата и рассчитать искомое время пребывания и (или) концентрацию фермента. Аналогичными способами можно получить уравнения для более сложных реакций и типов кинетики превращений.
Таблица 1. Зависимости между степенью превращения субстрата δ=(s0-s)/s0, средним временем пребывания и концентрацией катализатора в случае катализируемых ферментами реакций в ПРППа
