
- •Хирургия
- •1. Гнойно-некротические поражения дистального отдела конечностей. Гнойно-некротические язвы в области венчика
- •Поражение копытец при ящуре
- •2. Проводниковая анастезия.
- •Паравертебральная анестезия
- •3. Тендовагиниты у животных, причины, классификации.
- •4. Грыжи, их классификации.
- •5. Переломы костей. Классификация, этиология, клинические признаки.
- •6. Переливание крови у животных. Группы крови, стабилизаторы.
- •1'Ис. 6. Взятие крови от донора:
- •7. Закрытые повреждения мягких тканей (ушиб, гематома, лимфоэкстровазат)
- •8. Премидикация и транквилизация животных.
- •9. Баланопастит, фимоз, парафимоз
- •10. Послекастрационные осложнения у самцов, их лечение и профилактика.
- •Образование раны в виде песочных часок.
- •ПеритонитPeritonitis
- •Абсцесс мошонки
- •Стафиломикоз семенного канатика
- •11. Пододерматиты у коней. Причины, классификация, лечение и профилактика.
- •12. Ревматическое воспаление копыт, причины возникновения, лечение и профилактика.
- •13. Эпидуральная анестезия, показания, техника выполнения.
- •14. Кастрация жеребцов.
- •15. Инфекционный и инвазионный кератоконъюнктивит у животных, клинические признаки, лечение и профилактика.
- •16. Клинические проявления хирургической инфекции, лечение и профилактика.
- •17. Травматизм животных. Классификация, лечение и профилактика.
- •18. Основные заболевания мышц. Классификация, лечение и профилактика.
- •19. Хирургический сепсис у животных.
- •20. Осложнения ран грудной полости.
- •Ситуаційні завдання з хірургії.
- •3. На ділянці стегна у 10-місячного бика встановлено тверде, обмежене, болюче припухання тканин.
- •4. При обстеженні бика 4-річного віку встановлено порушення прийому корму. В ротовій порожнині – збільшення язика.
- •5. Лікар, діагностувавши актиномікоз підшкіряної клітковини на ділянці голови і т.П.
- •6. У коня на ділянці правого ліктьового бугра при обстеженні виявлено припухання, 8 см в діаметрі і т.Д.
- •7. У німецької вівчарки за допомогою клінічного і рентгенологічного дослідження виявлено перелом стегнової кістки.
- •8. У молочному комплексі в серпні з’явилося массове ураження очей у корів, що утримувалися в літніх таборах. І т.Д.
- •9. Клінічними дослідженнями у корови встановлено ознаки атонії передшлунків. Не з’ясувавши причин захворювання лікар ввів внутрішньовенно 2 мл настоянки кореневища білої чемериці. І т.Д.
- •10. У бика плідника спостерігається загальне пригнічення, він стоїть дещо згорблений і т.Д.
- •11. При обстеженні корови лікар виявив ундулюючу припухлість на ділянці гомілки. І т.Д.
- •12. При обстеженні коня виявлена рана на ділянці заплесневого суглобу розміром 20*12 см і т.Д.
- •13. У корови, яка хворіла раніше на післяпологове залежування, з латерального боку заплесневого суглобу виявлено припухання – обмежене, неболюче, флюктуююче, холодне і т.Д.
- •15. У багатьох корів ферми виявлена своєрідна кульгавість тазових кінцівок: у стані спокою тварини дещо відводять кінцівки назад і вбік, опираючись, таким чином, зацепом переважно внутрішнього пальця.
- •Акушерство и гинекология
- •1. Причини неповноцінних статевих циклів у корів і заходи до їх нормалізації.
- •3 Характеристика нормальних родів і взаємовідносин плода і родових і шляхів. Заходи до організації пологових відділень.
- •4. Переваги і недоліки оперативних : консервативних методів терапії . Затримки посліду у корів.
- •5 Заходи щодо нормалізації відтворної функції у корів. Стимулирование полового аппарата.
- •6. Влияние качественной неполноценности рациона на воспроизводительную функцию самок.
- •7 Парувальна і запліднювальна імпотенція плідників.
- •8. Заходи з терапії та профілактики після пологових субінволюції матки і ендометриту корів.
- •9. Штучна неплідність та її різновиди. Заходи щодо її профілактики. Искусственно приобретенное бесплодие.
- •10. Причини непродуктивних осіменінь самок
- •1 1. Затримка посліду у корів та заходи з її профілактики.
- •12. Застосування методів патогенетичної терапії у корів, хворих на мастит та ендометрит.
- •13. Діагностика, терапія і профілактика субклічних маститів у корів. Субклинические маститы у коров.Диагностика, лечение.
- •1 4. Характеристика, основних етапи Харківської технології асептичного отримання і кріоконсервації
- •15. Асфіксія новонароджених. Невідкладна допомога при народженні плодів у стані гіпоксії і асфіксії. (Asphyxia neonatorum)
- •16. Застосування трансплантації ембріонів у великої рогатої худоби у племінному господарстві, характеристика основних етапів цього методу.
- •17. Кесарів розтин. Основні його етапи. Обгрунтуйте доцільність його використання.
- •18. Передчаснї перейми та їх причини. Методи лікування і профілактики. Преждевременные потуги
- •19.Ссновні правила допомоги тваринам при нормальних та патологічних пологах.
- •Помощь при патологических родах. Родоразрешающие операции
- •Расширение шейки матки (Incisio cervicis)
- •Кесарское сечение (Sectio caesarea)
- •Экстирпация беременной матки (Hysterectomia)
- •Искусственный аборт (Abortus artificialis)
- •20.Патологія яєчників у корів. Методи дифєренцІйної діагностики. Методи лікування і профілактики.
- •Ситуаційні завдання з акушерства та гінекології
- •Перевод вертикального положения плода в нижнюю позицию путем бинтования конечностей и с применением клюки Кюна
- •6. Серед корів дійної череди господарства часто спостерігають незаразні симптоматичні аборти. Які можливі причини? Розробіть заходи з профілактики.
- •7. В господарстві 20-30% корів щорічно після пологів хворіють на мастит. Можливі причини? Ваші дії.
- •8. При диспансеризації дійної череди встановлено, що 20% корів хворіють на субклінічній мастит. Причини? Розробіть заходи з профілактики.
- •9. В зимово-стойловий період утримання у корів після пологів тривалий час відсутня стадія статевого збудження. Які можливі причини анафродізії? Ваші дії щодо нормалізації відтворної функції корів.
- •10. В господарстві у корів спостерігаються запальні процеси зовнішніх статевих органів, піхви і шийки матки. Які можливі причини? Ваші дії.
- •Внутренние незаразные болезни
- •1. Болезни молодняка
- •2. Ацидоз рубца.
- •3. Бронхопневмания.
- •4. Болезни эндокарда.
- •5. Болезни миокарда. Миокардит.
- •6. Электролечение.
- •7. Диетотерапия.
- •8. Патогенетическая терапия.
- •9. Дифференциабьный диагноз при болезнях печени.
- •10. Болезни путей мочевыделения.
- •11. Болезни, вызываемые недостаточностью витаминов гиповитаминозы.
- •12. Микроэлементозы.
- •13. Кетоз.
- •14. Темпания рубца.
- •15. Поражения почек.
- •16. Дифференциальная диагностика колик у лошадей.
- •17. Гастриты и гастроэнтериты.
- •18. Диспансеризация крс
- •19. Болезни нервной системы. Гиперемия и анемия головного мозга.
- •20. Стресс.
- •21. Болезни поджелудочной железы.
- •22. Клеточные и гуморальные факторы иммунной защиты.
- •23. Аллергические болезни.
- •24. Анемии.
- •25. Гемморагические диатезы.
- •26. Нарушение углеводного, белкового и липидного обмена. (см. Кетоз)
- •27. Макроэлементозы.
- •28. Болезни эндокринной системы.
- •29. Переполнение зоба, гастроэнтерит птицы.
- •30. Болезни пушных зверей.
- •Ситуаційні завдання з внутрішніх незаразних хвороб
- •Токсикология
- •1. Отравления натрия хлоридом
- •2. Хлорорганические соединения.
- •3. Пестициды: обозначение, классификация…
- •4. Отравление нитратами и нитритами.
- •5. Отравления синильной кислотой.
- •6. Фосфорорганические соединения
- •7. Токсикология ртутьорганических соединений
- •8. Производных мочевины и фенилмочевины.
- •9. Производные карбаминовой, тио-и дитиокарбаминовой кислот (карбаматы)
- •10. Клинико токсикологическая классификация ядовитых растений.
- •11. Отравления животных металлсодержащими соединениями и металлоидами отравления ртутьсодержащими соединениями
- •12. Микотоксикозы.
- •13. Синтетические пиретроиды
- •14. Отравления животных солями меди, мышьяка и фтора. Медьсодержащие соединения
- •15. Методы ветеринарно-санитарной токсикологической оценки продуктов животноводства.
- •Ситуаційні завдання з токсикології.
- •4. Після згодовування коровам запарених кормових буряків з відваром розвинулися явища іктоксикації: збудження, а внедовзі пригнічення,
- •6.У свиноматок, яким на протязі тижня згодовували цвілий зернофураж, розвинулися симптоми: почервоніння і збільшення вульви, а у деяких
- •9. Після згодовування свиням скошеної напередодні зелененої маси люцерни
6. Переливание крови у животных. Группы крови, стабилизаторы.
При потере большого количества крови введение изотонических жидкостей недостаточно; в таких случаях кровяное давление после кратковременного повышения вновь катастрофически падает. В подобных условиях эффективным является переливание крови.
До начала XX века попытки воспользоваться кровью донора с целью возмещения кровопотерь предпринимались многократно и результаты их в условиях эксперимента на собаках были многообещающими; у человека же в результате переливания крови наступали тяжелые осложнения, часто заканчивавшиеся смертью. Такие же явления наблюдали при гемотрансфузии у лошадей. Было также выяснено, что дефибринирование крови не устраняет эти осложнения.
Причины неудач переливания крови стали ясными при использовании на практике учения об агглютинации. Подобно тому, как сыворотка иммунных животных склеивает в комки соответствующие бактерии, кровь животного одного вида склеивает эритроциты животного другого вида. Это явление, именуемое гетерогемо-агглютинацией, в последующем было установлено и в пределах одного вида (изогемоагглютинация). После склеивания в комки эритроциты растворяются в сыворотке (гемолиз).
Ландштейнер (1901) различал три группы крови. Позже (1907 г.) Янский выделил четвертую, характеризующуюся тем, что ее сыворотка не агглютинирует эритроциты остальных групп, ее же эритроциты агглютинируются сыворотками всех групп. Наличие четырех групп крови было самостоятельно установлено также Моссом (1910). Дунгерн и Гиршфельд (1911) пришли к выводу, что для объяснения факта существования четырех групп крови допускать наличие двух агглютининов (а,Р) в сыворотке мух агглютининогенов (А, В) в эритроцитах. У лошади и крупного рогатого скота, согласно имеющимся И1.Ш, практически применимо такое же деление групп крови
Л. Герман, В. Н. Чередков и др.). Агглютинация эритроцитов разных групп крови сыворотками
(ставлена в следующей таблице.
1) кровь первой группы можно переливать животным всех остальных групп, так как ее эритроциты не агглютинируются и*с сыворотками;
2) сыворотка крови четвертой группы лишена способности агглютинировать эритроциты: животным с кровью этой группы можно переливать кровь всех остальных групп;
3) кровь второй группы можно переливать животным с кровью второй и четвертой групп;
4) кровь третьей группы можно переливать животным с кровью третьей и четвертой групп.
Допустимость переливания крови разных групп наглядно представлена на схеме рисунка 2.
Необходимо учитывать возможность агглютинации эритроцитов переливаемой крови сывороткой реципиента. Меньшее значение имеет обратное явление — агглютинация эритроцитов реципиента сывороткой донора, так как разведение сыворотки донора в крови реципиента ослабляет ее агглютинационную способность. Сыворотка крови лошади и крупного рогатого скота в сравнении с сывороткой крови человека обладает слабо выраженными агглютинационными свойствами.
У собак, групповые различия крови отсутствуют. Поэтому у них допустимо однократное переливание крови без ограничений, обусловленных изогемоагглютинанацией. Повторные гемотрансфузии от одного и того же донора у животных всех видов сопровождаются сравнительно часто тяжелыми, иногда со смертельным исходом, анафилактоидными реакциями. Несовместимость крови, возникающая после первой гемогрансфузии, объясняется появлением в плазме реципиента изоиммунных антител. Они образуются в качестве ответной реакции организма на введение крови как специфического изоантигена. Посттрансфузионные осложнения наблюдаются также при переливании крови другого донора. Определение совместимости крови.
Совместимость крови донора и реципиента можно установить путем перекрестной агглютинации. Из вены до-пора и реципиента берут tf разные пробирки по 10 мл крови и дают ей отстояться до полного свертывания. Отделившуюся сыворотку сливают в другие пробирки, а из сгустков крови после прибавления некоторого количества физиологического раствора взбалтыванием готовят взвеси эритроцитов. Полученные сыворотки и взвеси аритроцитов проверяют на взаимную агглютинацию. Для этого на предметное стекло помещают отдельно по две капли сыворотки, прибавляют к ним перекрестно по маленькой капле взвеси эритроцитов, смешивают стеклянной палочкой или покачиванием, легким встряхиванием и в течение 5 минут наблюдают за ходом реакции.
Агглютинация отсутствует в обеих пробах, когда донор и реципиент принадлежат к одной группе. Наличие агглютинации в сыворотке реципиента при отсутствии ее в сыворотке донора служит противопоказанием к переливанию. При отрицательной реакции в сыворотке реципиента и положительной реакции в сыворотке донора переливание допустимо в ограниченных количествах.
В практике переливания крови у животных возможна также прямая проба. При этом описанным выше способом смешивают две капли сыворотки реципиента с каплей крови, взятой из уха намечаемого донора. Положительная реакция указывает на необходимость подобрать в качестве донора другое животное.
Определение групп крови с помощью стандартных сывороток имеет значительные преимущества, позволяя своевременно выделять животных-доноров, удовлетворяющих всем требованиям практики. В СССР такие сыворотки для лошадей впервые приготовил В. А. Герман (1935).
Для определения групповой принадлежности крови достаточно иметь стандартные сыворотки второй (А) и третьей (В) групп. На предметном стекле, белой тарелке или блюдце на некотором отдалении одна от другой ставят пометки — II, III. У этих пометок наносят по две капли соответствующих сывороток. Затем к последним прибавляют по маленькой (с булавочную головку) капле исследуемой крови. При покачивании стекла кровь смешивает и с сывороткой, придавая ей равномерно красный огтенок. Через 20— 'О, секунд появляются признаки итлютинации в одной из сывороток или в обеих, или же агглютинация отсутствует (окучивания эритроцитов не наблюдается). Отсутствие агглю-iинации в обеих сыворотках указы-иает на принадлежность крови к пер-пой (0 оф) группе, агглютинация в обеих сыворотках — на кровь четвер-юй (АВО) группы, агглютинация юлько в сыворотке третьей группы — на кровь второй (А(3) группы, агглю-!инация только в сыворотке второй i руппы — на кровь третьей (Ва) ™ i руппы (рис. 3). Реакцию ставят при измпературе воздуха в пределах 15—20°. За ходом реакции наблюдают не меньше Г) минут. Возможные ошибки при пользовании двумя (ыворотками надежно устраняются дополнительной контрольной реакцией с сывороткой первой группы: когда в последней агглютинация отсутствует, ее не должно быть и в обеих других.
Псевдоагглютинация напоминает истинную заметным просветлением сыворотки, возникающим в обычный срок. Она сравнительно часто наблюдается у животных, характеризуется скучивлнием эритроцитов в монетные столбики и особенно резко выражена у лошадей, что объясняют (И. П. Власовский и др.) малым содержанием в их крови лецитина. Распознавать псевдоагглютинацию нетрудно: при сотрясении капли или прибавлении к ней физиологического раствора сыворотка вновь становится равномерно красной. Применение разведенных эритроцитов обычно предупреждает псевдоагглютинацию.
П а и а г г л ю т и н а ц и я возникает большей частью, если реакцию ставят при низкой температуре. В этом случае сыворотка агглютинирует эритроциты крови всех групп, в том числе и своей; реакция протекает до 30 минут. Иногда трудно отличить ее от истинной агглютинации.
В практике удобно пользоваться универсальными •донорами, то есть животными с кровью первой (Ооф) группы. При гемотрансфузии средних доз от таких доноров редко на-блкГдаются осложнения (при необходимости переливания больших количеств крови донор и реципиент должны быть одной группы).
В выборе доноров строго соблюдают условия, исключающие перенос с кровью инфекционных заболеваний.
Способы переливания крови
Переливание крови осуществляется или непосредственно от донора реципиенту (прямой метод), или обычным способом внутривенных вливаний стабилизированной крови (непрямой метод).
Прямой метод гемотрансфузии путем сообщения вен донора и реципиента через специальные аппараты (рис. 4) прост. Система трубок аппарата промывается жидким вазелиновым маслом и 4%-ным раствором лимоннокислого натрия, чем в известной мере предотвращается травмирование кровр и образование сгустков.
У крупных домашних животных удобоприменим способ соединения вен донора и реципиента резиновой трубкой с оливой (рис. 5), снабженной иглами на концах. Донора помещают на возвышенную площадку. В его яремной врне пелотом, наложенным у основания шеи, создается повышенное давление крови (рис. 6). Пункцию вены делают одновременно у обоих животных. В этот момент система трубок должна быть разобщена у иглы реципиента, а свободный конец трубки опущен вниз. Когда кровь начинает вытекать равномерной струей, этот конец трубки присоединяют к игле, и кровь поступает в вену реципиента. Чтобы знать дозировку переливаемой крови, необходимо предварительно определить пропускную способность собранной системы. При условии, что в течение 1 минуты
через систему протекает 100 мл крови, для переливания 2 л потребуется 20 минут.
Трубку стерилизуют кипячением в собранном виде, затем внутренние стенки ее смачивают стерильным вазелиновым или камфорным маслом. Смывающийся со стенки канала иглы, трубки и оливы остаток масла уносится током первых порций крови, вытекающей до момента соединения трубки с иглой реципиента. За током крови можно следить на стенке косо поставленной оливы.
Место пункции вен при продолжительных вливаниях обезболивают (инфильтрационная анестезия).
При непрямом методе кровь поступает из вены донора в сосуд, где смешивается для предотвращения свертывания со стабилизатором — лимоннокислым натрием: 4%-ный раствор его, приготовленный на дважды дистиллированной воде, наливают в сосуд из расчета 100 мл на 1 л крови, получаемой от донора. В этом сосуде, помещенном в теплую (37—40°) воду и равномерно покачиваемом, кровь смешивают со стабилизатором. Реципиенту ее вводят внутривенно. Цитрированная кровь, сохраняемая при температуре 4°, не свертывается в течение 7—10 дней. В таком виде ее можно транспортировать на значительные расстояния, что представляет большое преимущество непрямого метода гемотрансфузии.
Рис. 4. Прибор для прямого переливания крови. Рис. 5. Трубочная системадля прямого переливания крови у животных по И. Е. Поваженко: а — игла для пункции вены донора, *б — игла для пункции вены реципиента, виг — резиновые трубки, д — стеклянная олива.
В ветеринарной практике в качестве кратковременного стабилизатора используют хлористый кальций (150 мл 10%-ного раствора на 1 л крови лошади). Он у крупного рогатого скота как и 10%-ный раствор салициловокислого натрия, менее пригоден для гемотрансфузии; требуется сравнительно высокая концентрация (2 : 10, 3 : 10) препарата в крови.
Перед переливанием крови обязательна биологическая проба. Она заключается в инфузии небольшого количества (200—300 мл для лошади) крови с последующим наблюдением за реципиентом в течение 10 минут. При несовместимости крови у него возникают симптомы гемолитического шока; нормальное состояние его в течение этого
срока окончательно подтверждает совместимость крови. Намеченное количество ее вводят медленно, не больше 100 мл в 1 минуту.
Механизм действия перелитой крови
Положительное влияние перелитой крови сказывается незамедлительно. Вместе с ней в организм реципиента вводятся ферменты, гормоны, белки, органические соли. При значительной кровопотере одни эритроциты в физиологическом растворе, как и другие изотонические жидкости, не способны поддерживать жизнь,тогда как сыворотка совместимой крови без эритроцитов оказывает такое же благотворное влияние, как и цельная кровь.