- •Чебоксары, 2010
- •Оглавление
- •Рабочая учебная программа
- •2.2. Требования к уровню освоения дисциплины
- •Объем дисциплины и виды учебной работы
- •2.4. Содержание дисциплины
- •2.4.1. Разделы дисциплины и виды занятий
- •2.4.2. Содержание разделов дисциплины
- •Тема 1. Введение. Понятие об экологической токсикологии.
- •Тема 2. Источники появления потенциально токсичных веществ в окружающей среде.
- •Тема 3. Основные классы токсичных веществ.
- •Тема 4. Ксенобиотики.
- •Тема 5. Превращения токсичных веществ в окружающей среде.
- •Тема 6. Поступление токсичных веществ в организмы.
- •Тема 8. Адаптация к воздействию.
- •Тема 9. Токсикологическое нормирование.
- •Тема 10. Процедура нормирования в разных странах.
- •2.4.3. Лабораторный практикум
- •Лабораторная работа №1
- •Лабораторная работа №2
- •Лабораторная работа №3
- •Лабораторная работа №4
- •1. Внешние признаки
- •2. Растворимость в воде
- •3. Реакция со щелочью
- •4. Реакция с хлористым барием
- •5. Реакция с азотнокислым серебром
- •6. Проба на раскаленном угле
- •7. Реакция с кислотой
- •8. Реакция водной вытяжки
- •9. Определение магния в удобрениях
- •Лабораторная работа №5
- •Лабораторная работа №6
- •Лабораторная работа №7
- •Лабораторная работа №8
- •2.5. Учебно-методическое обеспечение дисциплины литература
- •2.6. Средства обеспечения освоения дисциплины:
- •2.7. Материально-техническое обеспечение дисциплины
- •2.8. Учебно-наглядные пособия
- •2.9. Содержание итогового и промежуточного контроля
- •2.9.1 Методика аттестации студентов по дисциплине
- •6. Экотоксикометрия
- •2.9.3. Примерные темы рефератов
- •2.9.4. Примерный перечень вопросов к зачету или экзамену
- •3. Тематика курсовых работ
- •4. Обеспеченность образовательного процесса учебной литературой
- •5. Учебная практика по дисциплине
- •6. Примерные тесты для определения уровня знаний Тест №1 Вариант 1
- •Вариант 2
- •Вариант 3
- •Тест №2
- •428027, Г. Чебоксары, ул. Хузангая 20
Лабораторная работа №1
Тема: Изменение цвета флавоноидных пигментов различных цветковых растений под влиянием рН среды, солей тяжелых металлов
Оборудование: пробирки в штативе (8-10 штук); стеклянные палочки; медицинские пипетки; ступки малые с пестиками; воронки малые; марля.
Реактивы: дистиллированная вода; 5-10%-ные растворы H2S04, НСl, NH4OH; 5%-ные растворы солей тяжелых металлов: PbNO3, FeCI3, ZnS04, CuS04, CoS04, средне- и слабоокрашенные лепестки цветков, содержащих антоцианы или их предшественники: пиона, мака, розы, герани (можно высушенные); цветущие комнатные растений со средне- или слабоокрашенными цветками, содержащими антоцианы или их предшественники; кусочки лука и капусты фиолетовых сортов.
Ход работы:
Комочек ваты размером с просяное зерно смачивают в одном из растворов кислот, аммиака, указанных солей, прикрепляют лейкопластырем к листу или лепестку цветущего растения, выдерживают 1-1,5 часа, затем снимают. Реакцию учитывают как во время текущего занятия, так и через одну-две недели.
Кусочки лепестков свежих цветков, срезанную чешую фиолетового лука или листья фиолетовой капусты помещают в малую чашку Петри, заливают полностью или частично (в виде накалывания) растворами кислот, аммиака или солей тяжелых металлов, следят за изменением окраски.
Лепестки сухих или свежих антоциансодержащих растений заливают горячей дистиллированной водой, чтобы они размякли, растирают пестиком до состояния жидкой кашицы. Выжимают через марлю и разливают по пробиркам, оставив образец раствора для контроля. Добавляют поочередно в каждую пробирку по несколько капель кислот (имитация кислых осадков), аммиака, растворов солей тяжелых металлов. Следят за последовательным изменением окраски.
Белые цветы слоновой кости или желтоватые цветки, содержащие антоцианы или их предшественники, окуривают парами аммиака, следят за изменением окраски.
Схема записи опытов
Название растений |
Ответная реакция по изменению цвета при действии реагентов |
||||||
Контроль |
H2S04 |
НСl |
NH4OH |
FeCI3 |
PbNO3 |
ZnS04 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Делают соответствующие выводы.
Лабораторная работа №2
Тема: Определение токсичности сернистого газа методом высечек листьев (по разрушению хлорофилла)
Оборудование: эксикаторы, фильтровальная бумага, чашка Петри, пробочное сверло, пинцеты, колбочки на 100 мл, воронки, пробирки в штативе (8-10 штук).
Реактивы: Na2SO3, H2SO4, вазелин, листья растений, находящихся в стадии вегетации.
Ход работы: На дно эксикатора насыпают Na2SO3 в объеме взятого тигелька, возле него устанавливают тигелек с 2-3 мл конц. H2SO4. На решетчатый круг эксикатора кладут одинаковые куски фильтровальной бумаги, смоченной отстоянной водой до полной влагоемкости, на бумагу укладывают диски (диаметром 2 см) межжилковой ткани листьев нижней стороной вверх, чтобы свободно шел процесс поступления газа через устьица, которые располагаются большей частью с нижней стороны листа. Диски высекают пробочным сверлом (10 дисков на каждый вариант). Крышку эксикатора плотно закрывают, края крышки предварительно промазывают вазелином.
Производят резкое движение эксикатором, чтобы внутри тигелек с кислотой опрокинулся на сульфит натрия, отмечают время начавшейся реакции. Реакции протекает по уравнению Na2SO3 + H2SO4 = SO2 + Na2SO4 + H2O. Через некоторое время наблюдается изменение цвета высечек листьев различных растений. Эта реакция может быть очень быстрой (у чувствительных видов растений) или более медленной. Выражается она в появлении хлоротичной каемки по краю высечки, отслаивании краешка от фильтровальной бумаги, а затем появлении некротической бурой ткани, которая постепенно распространяется на всю высечку. Учитывают время начала хлорозов и некрозов, число пораженных дисков (из 10), процент поражения, сравнивают с контролем (взятым за 100%). Контроль ставится с большими повторностями (не менее 30 дисков) в эксикаторе с чистым воздухом.
Строят кривые поражения листьев сернистым газом по сравнению с контролем; на оси абсцисс откладывают время экспозиции (час), а на оси ординат – процент пораженной ткани у высечек листа.
