
- •Е.А.Кузнецова
- •302020, Г.Орёл, ул. Наугорское шоссе, 29
- •Содержание
- •История развития микробиологии
- •Часть I краткая характеристика микроорганизмов и основные методы микробиологических исследований
- •Глава 1
- •Бактерии
- •Мицелиальные грибы
- •Глава 2
- •Ведение лабораторных записей
- •Глава 3
- •Глава 4
- •Принципы составления сред для культивирования микроорганизмов
- •Условия культивирования микроорганизмов
- •Аэрация
- •Способы культивирования аэробных микроорганизмов
- •Способы культивирования анаэробных микроорганизмов
- •Температура
- •Глава 5
- •Выделение чистой культуры из одной клетки
- •Определение чистоты выделенной культуры
- •Часть 2 лабораторный практикум
- •Общие сведения
- •1.3.Практическая часть.
- •1.3.1.Знакомство с правилами работы с микроскопом.
- •1.3.2.Исследование живых клеток микроорганизмов .
- •1.3.2.1.Методика выполнения работы.
- •1.3.2.2. Оформление работы.
- •1.4. Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •2.3.Практическая часть.
- •2.3.1. Методика выполнения работы.
- •2.3.2. Оформление работы.
- •Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •3.3.Практическая часть.
- •3.3.1.Окраска микроорганизмов по Грамму.
- •3.3.1. 1.Методика выполнения работы
- •3.3.1.2. Оформление работы.
- •3.3.2. Выявление кислотоустойчивости у бактерий.
- •3.3.2. 1.Методика выполнения работы
- •3.3.2.2. Оформление работы.
- •3.3.3. Негативный способ окраски препаратов.
- •3.3.3. 1.Методика выполнения работы
- •3.3.3.2. Оформление работы.
- •Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •4.3.Практическая часть
- •4.3.1. Окраска включений клеток микроорганизмов.
- •4.3.1. 1.Методика выполнения работы
- •4.3.1.2. Оформление работы.
- •4.3.2.Окраска спор у бактерий.
- •4.3.2. 1.Методика выполнения работы
- •4.3.1.2. Оформление работы.
- •Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •5.3. Практическая часть
- •5.3.1.Методика выполнения работы
- •5.3.2. Оформление работы.
- •5.4.Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •6.3. Практическая часть
- •6.3.1.Методика выполнения работы
- •6.3.2. Оформление работы.
- •. Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •7.3. Практическая часть
- •7.3.1.Методика выполнения работы
- •7.3.2. Оформление работы.
- •Контрольные вопросы.
- •Общие сведения
- •8.3. Практическая часть
- •8.3.1.Методика выполнения работы
- •8.3.2. Оформление работы.
- •8.4.Контрольные вопросы
- •Общие сведения
- •9.3. Практическая часть
- •9.3.1.Методика выполнения работы
- •9.3.2. Оформление работы.
- •9.4.Контрольные вопросы
- •Общие сведения
- •Практическая часть
- •10.3.1.Методика выполнения работы
- •10.3.2. Оформление работы.
- •10.4.Контрольные вопросы
- •Практическая часть
- •11.3.1.Методика выполнения работы
- •Практическая часть
- •12.3.1.Методика выполнения работы
- •12.3.2. Оформление работы.
- •12.4.Контрольные вопросы
- •Практическая часть
- •13.3.1.Методика выполнения работы
- •13.3.2. Оформление работы.
- •13.4.Контрольные вопросы
- •Практическая часть
- •14.3.1.Методика выполнения работы
- •14.3.2. Оформление работы.
- •14.4.Контрольные вопросы
- •Общие сведения
- •Практическая часть
- •15.3.1.Методика выполнения работы
- •15.3.2. Оформление работы.
- •15.4.Контрольные вопросы
- •Общие сведения
- •Практическая часть
- •16.3.1.Методика выполнения работы
- •16.3.2. Оформление работы.
- •Контрольные вопросы
- •Рекомендуемая литература
- •Приложение Рецепты приготовления некоторых красителей и растворов.
- •Рекомендуемая литература
7.3. Практическая часть
Приборы, реактивы, посуда: колбы для приготовления сред, химические стаканы на 100 мл, стеклянные шпатель, термометр, набор минеральных солей, глюкоза, пробирки.
7.3.1.Методика выполнения работы
Приготовить среды для получения накопительных культур:
1.среда для анаэробов (среда Виноградского). Состав среды, г глюкоза - 0,2,K2HPO4 – 0,1, ,MgSO4 – 0,05, NaCl – 0,05, MnSO4 , FeSO4 - следы , CaCO3 – 2,0, вода – 100 мл. Среду налить в пробирки, закрыть ватными пробками, внести небольшое количество почвы и пастеризовать 10 минут при температуре 80°С. Затем поставить пробирки в термостат при температуре культивирования 30°С.
2. накопительная культура аэробных спорообразующих бактерий. Нарезать клубень картофеля на мелкие ломтики, поместить их в колбу, добавить на кончике шпателя мел, залить небольшим количеством воды, закрыть ватной пробкой и прогреть на кипящей водяной бане в течение 15 минут. Вегетативные клетки и споры большинства бактерий, находящихся на поверхности клубней картофеля погибнут. Жизнеспособными останутся только споры бактерий Bacillus. Температура культивирования 30°С.
7.3.2. Оформление работы.
Написать отчет о проделанной работе.
Контрольные вопросы.
Что такое накопительная культура?
В чем заключается сущность метода накопительных культур?
Какие особенности микроорганизмов учитывают при получении накопительных культур?
По каким признакам судят о получении накопительной культуры?
Рекомендуемая литература
[1] c.61-75, [2] c.106-114
ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА № 8.
ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ МИКРООРГАНИЗМОВ.
8.1. Цель работы: приобретение навыков обнаружения физиолого-биохимических свойств микроорганизмов.
Общие сведения
При изучении физиолого-биохимических признаков микроорганизмов исследуют: отношение их к источникам углерода и азота, продукты жизнедеятельности, накапливающиеся в среде (кислоты, спирты, газы), отношение к кислороду, щелочам и другим факторам внешней среды, способность продуцировать антибиотические вещества, в ряде случаев определяют чувствительность микроорганизмов к тем или иным антибиотикам.
Для обнаружения физиолого-биохимических свойств бактерий пользуются посевом их на дифференциально-диагностические среды (жидкие и плотные), содержащие вещества, в отношении которых микробы способны проявлять свою химическую (ферментативную) активность. Результат реакции определяется при помощи добавляемых в питательную среду различных индикаторов, дающих в большинстве случаев цветные реакции. Поэтому метод посева на дифференциально-диагностические среды получил название посева на «пестрый ряд».
8.3. Практическая часть
При использовании микроорганизмами источников углерода, в частности углеводов, продуктами их жизнедеятельности нередко бывают газы, кислоты и спирты. Для обнаружения газов применяют посев уколом в агаровую среду в пробирки. При появлении газов столбик агар-агара разрывается. Используют также жидкую среду с перевернутыми вверх дном поплавками. Поплавок представляет собой небольшую узкую пробирку (0,5×3-4 см). Его опускают вверх дном в обычную пробирку с жидкой средой, которая при стерилизации заполняет поплавок. При развитии микроорганизмов, образующих газы, последние вытесняют жидкость из поплавка.
Образование кислот при посеве на средах, содержащих углеводы, устанавливают при помощи индикатора бромтимолблау, а их количество – по титрованию 0,1 н. раствором щелочи. При наличии мела кислоты связываются в кальциевые соли, которые можно обнаружить добавлением к 5 мл среды 1 мл концентрированного раствора оксалата аммония. В присутствии кислот (например, уксусной) выпадает белый осадок.
Образование спирта определяют при отгоне части субстрата с последующей пробой на спирт (реакция на появление йодоформа).
Продуктами жизнедеятельности микроорганизмов на доступных источниках азота часто бывают : аммиак (проба с реактивом Несслера), сероводород и меркаптан (проба с фильтровальной бумагой, смоченной ацетатом свинца), индол (проба с азотистой кислотой), нитрит (проба с цинк-йод-крахмалом в кислой среде). Редуктазную способность культур выявляют обесцвечиванием метиленового синего.
Приборы, реактивы, посуда: колбы для приготовления сред, химические стаканы на 100 мл, стеклянные шпатель, термометр, набор минеральных солей, глюкоза, пробирки.