
- •Приготовление красителей и других ингредиентов для окраски микроорганизмов Рецепты красителей
- •Фиксация мазка
- •Окраска препаратов
- •Простой метод окраски
- •Сложные методы окраски
- •Методы микробиологического исследования
- •Микроскоп и микроскопические методы исследования
- •Виды микроскопирования фазово-контрастная микроскопия
- •Темнопольная микроскопия
- •Электронная микроскопия
- •Техника приготовления мазка
- •Приготовление мазка из культуры, выращенной на жидкой питательной среде.
- •Классификация сред
- •Приготовление сред
- •Рецепты приготовления простых (основных) сред и изотонического раствора натрия хлорида
- •Методы посевов
- •Методы культивирования
- •Стерилизация
- •Стерилизация кипячением
- •Дезинфекция
- •Методы выделения чистых культур микроорганизмов
- •Изучение выделенных культур
- •Сохранение культур
- •Методы изучения вирулентных фагов
- •Качественные методы
- •Количественные методы
- •Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам
- •Методы определения
- •Реакция агглютинации
Методы изучения вирулентных фагов
Подготовка материала
Материалом, из которого выделяют фаг, обычно являются фильтраты, полученные с помощью бактериальных фильтров из объектов внешней среды, органов и выделений человека и животных, культур микроорганизмов и т. д.
Перед фильтрацией исследуемый материал подготавливают следующим образом:
Жидкости (кровь, мочу, воду, смывы с предметов и т. п.) освобождают от крупных частиц с помощью бумажного фильтра или центрифугированием, чтобы они не забили поры бактериального фильтра.
Вязкий материал (гной, кал) эмульгируют в изотоническом растворе натрия хлорида или бульоне, после чего освобождают от крупных частиц, как описано выше.
Плотный материал (кусочки органов, пищи и т. п.) предварительно измельчают — обычно растирают в ступке со стерильным кварцевым
песком. Вместо песка можно использовать стерильные кончики пастеровских пипеток или битые покровные стекла. Растертый материал тщательно эмульгируют в изотоническом растворе натрия хлорида или бульоне и освобождают от крупной взвеси.
Подготовленный материал пропускают через бактериальный фильтр, освобождая от посторонней микрофлоры.
Культуры микроорганизмов (известные или изучаемые). В работе с фагом применяют 20—24-часовые культуры, выращенные на агаре, или 2 — 6- часовые культуры в жидких средах. Чистоту культуры устанавливают в мазках, окрашенных фуксином Пфейффера или по Граму. Из культур, выращенных на скошенном агаре, готовят взвесь. В пробирку с культурой наливают 3 — 5 мл изотонического раствора натрия хлорида. Вращая пробирку между ладонями, осторожно смывают культуру с поверхности среды так, чтобы не намочить пробку. Взвесь переносят в стерильную пробирку и разводят изотоническим раствором натрия хлорида 1:10 (0,5 мл взвеси в 4,5 мл раствора).
При работе с фагом необходима стерильная посуда (градуированные и пастеровские пипетки, чашки Петри, пробирки, колбы, ступки), термостат, фильтровальное устройство, центрифуга, штативы, прибор для счета колоний.
Внимание! Вся работа с фагом требует соблюдения асептики.
Качественные методы
О наличии фага в том или ином субстрате узнают по лизису чувствительной к нему микробной культуры (тест- культура).
Обнаружение фага на плотных средах. Тест-культуру засевают «газоном» (см. главу 7) на поверхность агара в чашке Петри. Посев подсушивают в термостате 30— 40 мин при открытой крышке, после чего на него наносят каплю изучаемого материала. Через несколько минут, когда жидкость впитается, чашки помещают в термостат на 18 — 20 ч. Если в изучаемом материале есть фаг, произойдет лизис культуры и на месте, куда была нанесена капля, культура или совсем не вырастет (сплошной лизис) или образуются отдельные колонии фага.
Обнаружение фага в жидких средах. В две пробирки с одинаковым количеством бульона вносят по одной капле культуры микроба, в отношении которого изучают фаг. В одну из них добавляют исследуемый фаг или фильтрат материала, в котором его определяют. Вторая пробирка служит контролем роста культуры. Пробирки помещают в термостат на 12— 20 ч. Учет результатов производят только при наличии роста культуры в контроле (помутнение среды). Отсутствие видимого роста или последующее просветление среды в пробирке с исследуемым материалом свидетельствует о присутствии фага. Если содержимое этой пробирки мутное, исследование необходимо дополнить посевом на плотную среду: помутнение могло произойти от роста устойчивой к фагу культуры. Только в том случае, если в посеве на агар фаг не будет обнаружен, можно сделать вывод, что его нет в изучаемом материале.