
- •Передмова
- •Правила роботи в біохімічній лабораторії
- •Правила техніки безпеки при роботі в біохімічній лабораторії
- •Хід роботи
- •1. Екстракція цукрів водою
- •2. Визначення відновлюючих цукрів
- •3. Визначення суми відновлюючих і невідновлюючих цукрів (сахарози)
- •4. Спектрофотометрія
- •Лабораторна робота № 2 Фотоколориметричне визначення тріоз у рослинному матеріалі (за г.Н. Чупахіною, м.В. Куркиною)
- •Хід роботи
- •Обчислення результатів
- •Приклад обчислення
- •Лабораторна робота № 3 Порівняльна оцінка фізико-хімічних властивостей рослинних олій на підставі визначення кислотного і йодного чисел і числа омилення
- •Хід роботи
- •1. Визначення кислотного числа
- •2. Визначення числа омилення
- •3. Визначення йодного числа
- •Лабораторна робота № 4 Визначення вмісту білка в насінні і у вегетативній масі різних культур
- •Хід роботи
- •1. Виділення сумарних білків з насіння зернових і зернобобових рослин
- •2. Спектрофотометричний метод визначення сумарних білків
- •3. Виділення білків з вегетативних органів рослин
- •4. Визначення білків за методом Лоурі
- •Лабораторна робота № 4 Клейковина, її склад і властивості. Визначення кількості та якості сирої клейковини зерна пшениці
- •1. Визначення кількості сирої клейковини
- •Лабораторна робота № 6 Спектрофотометричне визначення нуклеїнових кислот
- •Хід роботи
- •Приклад розрахунку
- •Лабораторна робота № 7 Ферменти, як біологічні каталізатори. Якісні реакції на ферменти
- •1. Відкриття амілази в слині
- •2. Відкриття пероксидази (донор: н2о2 – оксидоредуктаза; кф 1.11.1.7) в картоплі
- •3. Відкриття тирозинази (о-дифенол: о2–оксидоредуктаза; кф 1.10.3.1) у картоплі
- •4. Вплив температури на активність амілази слини
- •5. Вплив рН середовища на активність ферментів
- •Лабораторна робота № 8 Визначення вмісту вільних органічних кислот і кислих солей в плодах методом титрування
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 9 Колориметричне визначення нітратів (за д. Катальдо та ін.)
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 10 Колориметричне визначення аскорбінової кислоти в рослинних продуктах
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 11 Визначення вітамінів в1 і в2 в рослинах
- •Хід роботи
- •1. Екстракція вітамінів
- •2. Одержання тіохрому
- •3. Флуоресцентна спектроскопія розчинів тіохрому і рибофлавіну
- •4. Кількісне визначення вітамінів в1 і в2
- •Лабораторна робота № 12 Виділення l-ментолу з перцевої м'яти
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 13 Виділення теоброміну і кофеїну з плодів какао та листя чаю. Якісні реакції на алкалоїди
- •1. Виділення теоброміну з какао
- •Хід роботи
- •2. Виділення кофеїну з листя чаю
- •Хід роботи
- •Методична література
- •Розділ II програма курсу «біохімія рослин»
- •Основна література
- •Рекомендована література
- •Реферати і есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
2. Одержання тіохрому
У ділильні воронки об'ємом 50 мл налити 2,5 мл отриманого екстракту. В одну з воронок (контрольну) прилити 1,5 мл 15% розчину NaOH, перемішати і додати 6 мл ізобутилового спирту. В дослідні воронки додати по 1,5 мл 0,04% розчину червоної кров'яної солі в 15% розчині NaOH, весь вміст перемішати і долити 6 мл ізобутилового спирту. Ділильні воронки закрити пробками і ретельно струшувати протягом 1 хв. Дати суміші відстоятися, потім нижній шар слід злити. Для освітлення спиртового шару прилити 1 мл етилового спирту, ретельно перемішати, дати відстоятися і отриманий прозорий розчин злити в пробірку для подальшого спектрофотометричного аналізу.
3. Флуоресцентна спектроскопія розчинів тіохрому і рибофлавіну
Отримані дослідні розчини тіохрому перелити в кювети і провести вимірювання інтенсивності флуоресценції (довжина хвилі збудження λ = 250 нм). Максимум флуоресценції для тіохрому становить λ = 495 – 500 нм.
Аналогічно провести процедуру вимірювання інтенсивності флуоресценції для розчинів рибофлавіну (довжина хвилі збудження дорівнює λ = 225 нм). Реєструвати максимум флуоресценції рибофлавіну в області λ = 525 – 530 нм.
Враховуючи, що спектральні властивості окислених і відновлених форм тіаміну і рибофлавіну змінюються, провести їх порівняльний флуоресцентний аналіз. Рибофлавін окиснюється 4% розчином перманганату калію, який додається в екстракт по краплях до зникнення червонуватого забарвлення, або концентрованої HCl у присутності металевого цинку. Відновлення окислених форм тіаміну і рибофлавіну здійснити або гідросульфітом натрію (Na2S2O4×H2O) або боргідридом натрію (NaBH4), додаючи ці відновники в кількості 0,1 – 0,2 г на 1 – 2 мл розчину вітамінів.
Результати оформити у вигляді таблиці:
-
Вітамін
Збудження флюоресценції, нм
Інтенсивність флюоресценції, відносні одиниці
окислена форма
відновлена форма
окислена форма
відновлена форма
В1
В2
4. Кількісне визначення вітамінів в1 і в2
Для кількісної оцінки вмісту вітамінів у рослинних зразках слід отримати калібрувальні графіки залежності інтенсивності флюоресценції від концентрації. З цією метою необхідно:
• приготувати стандартні розчини вітамінів тіаміну і рибофлавіну (10 мг тіаміну броміду (тіаміну хлориду) розчинити в 100 мл 0,01 н розчину HCl, 10 мг рибофлавіну розчинити в 100 мл 0,01 н розчину NaOH);
• провести окислення стандартного розчину тіаміну. Для цього в ділильну лійку налити 1 мл робочого розчину і додати 4 мл води. (Примітка. Робочий розчин приготувати безпосередньо перед окисленням. Для цього взяти 1 мл стандартного розчину і довести його до 100 мл дистильованою водою – 1 мл цього робочого розчину міститиме 1 мкг тіаміну броміду). Потім у воронку прилити лужний розчин червоної кров'яної солі і провести процедуру розділення та освітлення розчинів, як це описано вище. Окислений і освітлений розчини перелити в пробірки для флуориметрії;
• приготувати робочий розчин рибофлавіну. Для цього слід взяти 1 мл стандартного розчину рибофлавіну і довести його до 100 мл дистильованою водою (1 мл цього розчину міститиме 1 мкг рибофлавіну);
• побудувати калібрувальні криві для розчинів тіохрому і рибофлавіну, взявши наступні концентрації для тіаміну – 0,05; 0,1; 0,15; 0,2 мкг, а для рибофлавіну – 0,005; 0,010; 0,020; 0,05 мкг. За калібрувальними кривими розрахувати вміст тіаміну і рибофлавіну (мкг/мл) в рослинних зразках. Кількість вітамінів в досліджуваному матеріалі (мкг/г сирої маси) обчислити за формулою:
де с – вміст вітамінів в 1 мл витяжки, знайдений по каліброваною кривою; V – об'єм екстракту в мл; m – маса досліджуваного матеріалу в грамах.
Зробити висновки.