
- •Передмова
- •Правила роботи в біохімічній лабораторії
- •Правила техніки безпеки при роботі в біохімічній лабораторії
- •Хід роботи
- •1. Екстракція цукрів водою
- •2. Визначення відновлюючих цукрів
- •3. Визначення суми відновлюючих і невідновлюючих цукрів (сахарози)
- •4. Спектрофотометрія
- •Лабораторна робота № 2 Фотоколориметричне визначення тріоз у рослинному матеріалі (за г.Н. Чупахіною, м.В. Куркиною)
- •Хід роботи
- •Обчислення результатів
- •Приклад обчислення
- •Лабораторна робота № 3 Порівняльна оцінка фізико-хімічних властивостей рослинних олій на підставі визначення кислотного і йодного чисел і числа омилення
- •Хід роботи
- •1. Визначення кислотного числа
- •2. Визначення числа омилення
- •3. Визначення йодного числа
- •Лабораторна робота № 4 Визначення вмісту білка в насінні і у вегетативній масі різних культур
- •Хід роботи
- •1. Виділення сумарних білків з насіння зернових і зернобобових рослин
- •2. Спектрофотометричний метод визначення сумарних білків
- •3. Виділення білків з вегетативних органів рослин
- •4. Визначення білків за методом Лоурі
- •Лабораторна робота № 4 Клейковина, її склад і властивості. Визначення кількості та якості сирої клейковини зерна пшениці
- •1. Визначення кількості сирої клейковини
- •Лабораторна робота № 6 Спектрофотометричне визначення нуклеїнових кислот
- •Хід роботи
- •Приклад розрахунку
- •Лабораторна робота № 7 Ферменти, як біологічні каталізатори. Якісні реакції на ферменти
- •1. Відкриття амілази в слині
- •2. Відкриття пероксидази (донор: н2о2 – оксидоредуктаза; кф 1.11.1.7) в картоплі
- •3. Відкриття тирозинази (о-дифенол: о2–оксидоредуктаза; кф 1.10.3.1) у картоплі
- •4. Вплив температури на активність амілази слини
- •5. Вплив рН середовища на активність ферментів
- •Лабораторна робота № 8 Визначення вмісту вільних органічних кислот і кислих солей в плодах методом титрування
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 9 Колориметричне визначення нітратів (за д. Катальдо та ін.)
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 10 Колориметричне визначення аскорбінової кислоти в рослинних продуктах
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 11 Визначення вітамінів в1 і в2 в рослинах
- •Хід роботи
- •1. Екстракція вітамінів
- •2. Одержання тіохрому
- •3. Флуоресцентна спектроскопія розчинів тіохрому і рибофлавіну
- •4. Кількісне визначення вітамінів в1 і в2
- •Лабораторна робота № 12 Виділення l-ментолу з перцевої м'яти
- •Хід роботи
- •Лабораторна робота № 13 Виділення теоброміну і кофеїну з плодів какао та листя чаю. Якісні реакції на алкалоїди
- •1. Виділення теоброміну з какао
- •Хід роботи
- •2. Виділення кофеїну з листя чаю
- •Хід роботи
- •Методична література
- •Розділ II програма курсу «біохімія рослин»
- •Основна література
- •Рекомендована література
- •Реферати і есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
- •Реферати та есе
- •Запитання для підготовки
- •Тестові завдання
- •Рекомендована література
Хід роботи
Визначення нітратів в рослинних тканинах здійснюють шляхом титрування саліциловою кислотою. Його можна здійснювати, як на висушеному так і сирому матеріалі. У першому випадку матеріал фіксується гарячою парою протягом 5 хвилин і досушується до постійної маси при t = 70 С. Висушений зразок подрібнюється, береться наважка масою 50 або 100 мг, заливається деіонізованою водою – 5 або 10 мл відповідно.
При визначенні нітратів в сирому матеріалі береться наважка 1 г і 6 мл води або фосфатного буфера. Гомогенат фільтрується, і фільтрат центрифугується при 3000 об./хв. 15 хвилин. Супернатант зливається і використовується для аналізу.
В аналізі використовується деіонізованої вода – вода, звільнена від іонів та катіонів. Дистилят можна брати в тому випадку, якщо він вільний від нітратів. В іншому випадку його потрібно пропустити через катіоніт, щоб звільнитися від нітратів і нітритів.
Суспензія інкубується при 45 °С 1 годину при постійному перемішуванні, далі центрифугується (5000g, 15 хв). Супернатант декантується і використовується для аналізу. У колбу Ерленмеера на 50 мл заливається 0,2 мл центрифугату і 0,8 мл 5%-ного розчину саліцилової кислоти, приготовленої на концентрованій сульфатній кислоті (використовувати сульфатну кислоту марки хч, в темній склянці розчин може зберігатися протягом 1 тижня).
Через 20 хвилин при кімнатній температурі в колбу повільно тонким струменем підливають з бюретки 19 мл 2 н NaOH. Вміст колби при цьому потрібно постійно перемішувати. За наявності у зразку нітратів з'являється стійке жовте забарвлення, стабільне протягом 48 годин. Розчин охолоджують і фотометрують при довжині хвилі 410 нм.
Як контроль використовується зразок, приготовлений так само, як дослідний, тільки замість фільтрату в нього вноситься 0,2 мл води.
Калібрувальний графік для визначення концентрації нітратів будується за KNO3.
KNO3 гідроскопічний, тому перед взяттям наважки його потрібно висушити в термостаті до постійної маси. При приготуванні серії розчинів з різною концентрацією KNO3 (5 мкг/мл – 55 мкг/мл) для побудови калібрувального графіка потрібно брати їх в обсязі не більш 0,2 мл, якщо ж обсяг менше 0,2 мл, то його потрібно доводити водою до 0,2 мл.
Визначення нітратів можна вести в присутності іонів хлору (до 2%), амонію і нітритів.
Результати представити у вигляді таблиці:
Дослідження |
Маса наважки, г |
Оптична щільність розчину, D410 |
Кількість нітратів в екстракті, мкг/мл |
|
|
|
|
Зробити аналіз отриманих результатів.
Лабораторна робота № 10 Колориметричне визначення аскорбінової кислоти в рослинних продуктах
Основним джерелом аскорбінової кислоти (вітамін С) для людини є рослинні продукти.
Кількісний аналіз вмісту аскорбінової кислоти являє собою певну складність, і навіть сьогодні немає універсального методу, який би не мав недоліків. Будь-який метод аналізу повинен давати можливість одночасно визначати як саму аскорбінову кислоту, так і продукти її окислення і знаходити чіткі відмінності між цими сполуками.
Найбільш поширеними методами, заснованими на використанні відновлювальних властивостей аскорбінової кислоти, є титриметричні і колориметричні методи аналізу.
В основі найбільш популярного титриметричного методу аналізу аскорбінової кислоти лежить реакція її взаємодії з 2,6-дихлорфенол-індофенолом. Ця сполука при нейтральних значеннях рН утворює синє забарвлення, при кислих – рожеве, а при взаємодії з аскорбіновою кислотою утворює безбарвний продукт. На жаль, даний метод чутливий до присутності інших відновників – іони металів, редукуючі цукри, таніни та ін. Крім того, при титруванні рослинних витяжок є деякі труднощі з визначенням його завершення.
Нижче представлена методика, заснована на фотометричному визначенні надлишку 2,6-дихлорфеноліндофенолу після відновлення певної його частини аскорбіновою кислотою. Оптична щільність зафарбованого розчину визначається суворо через 35 секунд після додавання в рослинну витяжку барвника, що дає можливість повністю виключити помилки, можливі при титриметричному аналізі аскорбату.
Мета цієї роботи – визначити кількість аскорбінової кислоти в різних рослинних продуктах (овочі, фрукти, ягоди).
Реактиви та матеріали: дистильована вода, 2% метафосфорна або 1% щавлева кислота, аскорбінова кислота, 2,6-дихлорфеноліндофенол, NaOH чи KOH, порцелянова ступка і товкач, воронка, паперові фільтри, мірна колба об'ємом 100 мл, мірний циліндр, пробірки, секундомір, спектрофотометр.