- •Введение
- •Общая микробиология
- •Глава 1. Микробиологическая лаборатория
- •Задача бактериологической лаборатории.
- •Методы микробиологического исследования
- •Полимеразная цепная реакция
- •Глава 2. Микроскоп и микроскопические методы исследования
- •Настройка освещения и фокусировка микроскопа.
- •Уход за микроскопом.
- •Фазово-контрастная микроскопия
- •Темнопольная микроскопия
- •Люминесцентная (флюоресцентная) микроскопия
- •Электронная микроскопия
- •Глава 3. Основы классификации и морфология микроорганизмов
- •Бактерии
- •Ультраструктура бактериальной клетки
- •Микоплазмы и уреаплазмы.
- •Спирохеты
- •Риккетсии
- •Глава 4. Физиология и биохимия микроорганизмов
- •Питание бактерий
- •Факторы роста.
- •Ферменты
- •Дыхание бактерий
- •Пигменты микроорганизмов
- •Рост и размножение бактерий
- •Глава 5. Влияние факторов окружающей среды на микроорганизмы
- •Физические факторы
- •Высушивание.
- •Химические факторы
- •Биологические факторы
- •Методы, средства и режимы стерилизации
- •Ориентировочные нормы стерилизаторов
- •Режим работы автоклава
- •Стерилизация ультрафиолетовым облучением
- •Дезинфекция
- •1. Общие сведения
- •Приготовление рабочих растворов.
- •Приготовление рабочих растворов средств «Хлормисепт –р» из таблеток.
- •Приготовление рабочих растворов средства «Хлормисепт-р» из гранул
- •Глава 6. Распространение микроорганизмов в природе
- •Микрофлора почвы
- •Микрофлора воды
- •Микрофлора воздуха
- •Микрофлора организма человека
- •Глава 7. Питательные среды и микробиологическое исследование
- •Классификация сред
- •Рецепты приготовления простых (основных) сред и изотонического раствора натрия хлорида
- •Сухие среды
- •Изучение выделенных культур
- •Культуральные свойства
- •Ферментативная активность
- •Сохранение культур
- •Глава 8. Фаги
- •Свойства фагов
- •Глава 9. Антибиотики. Химиопрофилактика и химиотерапия
- •Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам
- •Глава 10. Генетика микроорганизмов
- •Генотипическая (наследуемая) изменчивость
- •Плазмиды
- •Практическое значение изменчивости
- •Патогенность и вирулентность микроорганизмов
- •Роль макроорганизма в инфекционном процессе
- •Инфекционного процесса
- •Формы инфекционного процесса
- •Динамика развития инфекционного заболевания
- •Биологические методы исследования
- •Содержание лабораторных животных
- •Экспериментальное заражение животных
- •Техника взятия крови у животных.
- •Обработка и выделение составных частей крови
- •Глава 12. Учение об иммунитете. Реакции иммунитета. Иммунопрофилактика и иммунотерапия инфекционных болезней.
- •Виды иммунитета
- •Наследственный (видовой) иммунитет
- •Приобретенный иммунитет
- •Клеточные факторы неспецифической защиты Фагоцитоз
- •Гуморальные факторы неспецифической защиты
- •Специфические факторы защиты организма (иммунитет)
- •Клеточные механизмы иммунного ответа
- •Серологические реакции
- •Реакция гемагглютинации
- •Реакция преципитации
- •Реакция иммунофлюоресценции
- •Опсонофагоцитарная реакция
- •Реакции иммунитета in vivo (кожные пробы)
- •Иммунопрофилактика и иммунотерапия инфекционных болезней
- •Глава 1 3. Аллергия
- •Контактный дерматит
- •Глава 1.
- •Глава 2
- •Глава 3
- •Глава 4.
- •Глава 5.
- •Глава 6
- •Глава 7
- •Глава 8.
- •Глава 9.
- •Глава 10
- •Глава 11.
- •Глава 12
- •Глава 13
Техника взятия крови у животных.
У кролика небольшое количество крови берут обычно из краевой вены уха, у крыс и мышей – из вены хвоста, у морских свинок ввиду плохо развитых поверхностных вен – непосредственно из сердца. Кровь из сердца можно брать и у других лабораторных животных.
В случае, когда донорами являются крупные животные (лошади, бараны), кровь берут из яремной вены.
Для взятия небольшого количества крови у кролика выщипывают шерсть с наружной поверхности уха, дезинфицируют кожу и вызывают гиперемию, пощелкивая по вене пальцами или протирая ухо ватой, смоченной теплой водой (применять ксилол не следует, так как он может вызвать лизис — растворение эритроцитов).
Кроме того, можно прижать вену у корня уха, что также способствует гиперемии. Затем экспериментатор большим и указательным пальцами захватывает кончик уха (фиксируя его) и вводит иглу без шприца по ходу вены. Капающую из иглы кровь собирают в стерильную пробирку, после чего иглу извлекают, место укола дезинфицируют спиртом иди спиртовым раствором йода.
При взятии крови из вены хвоста у мышей и крыс ампутируют кончик хвоста. Вытекающую из культи кровь собирают в стерильную пробирку или насасывают пипеткой. Для остановки кровотечения культю прижигают перекисью водорода или в пламени горелки.
При взятии крови из сердца животное фиксируют в горизонтальном положении брюшком вверх, удаляют шерсть, дезинфицируют место укола, затем кончиками пальцев левой руки прощупывают сердечный толчок и в этом месте вводят иглу. Если игла попала в сердце, кровь сама поступает в шприц, подымая поршень. Количество взятой крови зависит от вида животного и его массы.
Таблица 10.
Максимальное количество крови, получаемой от лабораторных животных
-
Виды животного
Средняя масса донора, г
Количество крови, мл
При одновременном взятии
При тотальном кровопускании
Кролик
Морская свинка
Крыса
3000-4000
400-500
150-200
25-30
10-12
3-5
130-150
40-50
6-8
После одномоментного кровопускания животному следует ввести под кожу изотонический раствор натрия хлорида, подогретый до температуры тела, в объеме, равном объему взятой крови.
При необходимости получить максимальное количество крови производят тотальное кровопускание (полное обескровливание). При тотальном кровопускании кровь чаще всего берут из сонной артерии. Животное фиксируют в горизонтальном положении брюшком вверх, наркотизируют, поднося к носу смоченную эфиром вату, и после обработки операционного поля делают разрез кожи на шее. Обнажают сонную артерию, отсепаровывают ее, накладывают две шелковые лигатуры и перерезают между ними артерию. Периферический конец артерии быстро пережимают, а центральный захватывают пинцетом и опускают в стерильный сосуд. Когда струя крови иссякнет, можно дополнительно собрать кровь, массируя область сердца, печень и другие органы. Недостатком тотального кровопускания является гибель животного.
