
- •Калининград
- •Раздел 1. Санитарно-микробиологический анализ воды, воздуха, почвы.
- •Глава 1. Исследование микрофлоры воды.
- •Краткие теоретические сведения. Микрофлора воды.
- •Санитарно-показательные организмы
- •1.1. Отбор и транспортировка проб воды в лабораторию.
- •1.2. Санитарно-бактериологические показатели качества воды.
- •Порядок выполнения работы. Определение микробного числа воды.
- •1.3. Определение кишечной палочки в воде. Характеристика кишечной палочки.
- •Определение титра кишечной палочки в воде.
- •1.3.1. Метод мембранных ультрафильтров.
- •1.3.2. Двухэтапный бродильный метод определения коли-титра воды.
- •Нестандартные методы санитарно-микробиологических исследований воды.
- •1.3.3. Трехэтапный бродильный метод
- •1.3.4. Бродильный метод по Звенигородской
- •1.3.5. Метод прямого посева (метод Марманна)
- •1.3.6.Ускоренный метод анализа воды (метод Рублевской водонапорной станции)
- •1.3.7. «Сигнальный» анализ хлорированной воды
- •1.4. Принципы обнаружения в воде патогенных микроорганизмов.
- •1.4.1. Ускоренные методы исследования воды
- •1.5. Необходимые материалы:
- •Способность бактерии расщеплять мочевину.
- •1.6. Контрольные вопросы:
- •Глава 2. Санитарно-бактериологический анализ воздуха
- •2.1. Краткие теоретические сведения. Микрофлора воздуха
- •2.2. Отбор проб воздуха
- •2.3. Исследование воздуха на санитарно-показательную микрофлору
- •2.4. Порядок выполнения работы
- •2.4.1. Определение микробного числа методом Коха.
- •2.4.2. Исследование микрофлоры воздуха с помощью прибора Кротова
- •2.4.3. Необходимые материалы
- •2.4.4. Контрольные вопросы
- •Глава 3. Санитарная микробиология почвы
- •3.1. Краткие теоретические сведения. Микрофлора почвы и ее самоочищение
- •3.2. Санитарно-микробиологическое исследование почвы
- •3.2.1. Порядок выполнения работы
- •Подготовка образца почвы для анализа
- •3.2.2. Определение микробного числа почвы
- •3.2.3. Определение титра кишечной палочки почвы
- •3.3. Ускоренный метод исследования кишечной палочки в почве
- •3.3.1. Бродильный метод с использованием ттх
- •3.3.2. Метод мембранных фильтров
- •3.4. Полный санитарно - микробиологический анализ почвы
- •3.4.1. Определение титра Cl. Perfringens
- •3.4.2. Обнаружение в почве протеев
- •3.4.3. Определение e. Coli методом прямого посева.
- •3.4.4. Определение термофильных бактерий
- •3.4.5. Исследование почвы на наличие Cl. Tetani (возбудитель столбняка)
- •3.4.6. Исследование почвы на наличие Cl. Botulinum
- •3.5. Оценка санитарно-микробиологического состояния почвы
- •3.6. Необходимые материалы
- •3.7. Вопросы для самоконтроля
- •Раздел 2 дезинфекция и производственная санитария
- •2.1. Краткие теоретические сведения. Дезинфекция и производственная санитария
- •2.2. Факторы, влияющие на эффективность мойки и дезинфекции
- •2.2.1. Степень загрязненности
- •2.2.2. Концентрация дезинфицирующего раствора и режим дезинфекции
- •2.2.3. Режим ополаскивания
- •2.2.4. Режим течения моющих растворов
- •2.2.5. Концентрация и температура моющего раствора
- •2.3. Свойства моющих препаратов
- •2.3.1. Моющие препараты
- •2.3.1.1. Щелочные моющие препараты
- •2.3.1.2.Синтетические моющие препараты
- •2.4. Дезинфицирующие вещества
- •2.4.1. Хлорсодержащие дезинфектанты
- •2.4.2. Универсальные препараты
- •2.5. Определение эффективности действия дезинфицирующих препаратов.
- •2.5.1. Порядок выполнения работы
- •2.5.2. Определение бактерицидных свойств растворов дезинфицирующих препаратов
- •2.5.3. Определение фенольного коэффициента
- •2.6. Необходимые материалы:
- •2.7. Вопросы для самопроверки:
- •Раздел 3. Санитарно-гигиенический контроль на пищевом предприятии Глава 3.1. Санитарно-микробиологические анализы на пищевом предприятии
- •3.1.1. Смыв с рук
- •Определение общей обсемененности ладони
- •3.1.2. Определение кишечной палочки
- •3.1.3. Определение золотистого стафилококка
- •3.2. Исследование микрофлоры санитарной одежды.
- •3.3. Исследование микрофлоры технологического оборудования
- •3.3.1. Отбор и анализ смывов с тары для мелкой упаковки
- •3.3.2. Смывы с поверхности упаковочного материала
- •3.3.3. При производстве рыбы холодного и горячего копчения тару исследуют
- •3.4. Необходимые материалы
- •3.5. Вопросы для самопроверки.
- •Раздел 4. Микробиология водного сырья
- •4.1. Краткие теоретические сведения. Микрофлора рыбы-сырца
- •4.2. Микрофлора нерыбных объектов морского промысла
- •4.2.1. Микрофлора свежевыловленных беспозвоночных
- •4.3. Микробиологический анализ рыбы-сырца.
- •4.3.1. Определение общей численности бактерий (мафам)
- •4.3.1.1. Определение общей обсемененности рыбы-сырца бактериями чашечным методом (метод предельных разведений, метод Коха)
- •4.3.1.2. Определение общей обсемененности методом микропластинок (метод Фроста)
- •4.3.1.3. Арбитражный метод определения количества аэробных микроорганизмов.
- •4.3.1.4. Определение бактерий р. Salmonella в рыбе и рыбной продукции
- •4.3.1.5. Определение бактерий группы Proteus по методу Шукевича
- •4.3.1.6. Определение коагулазоположительного стафилококка.
- •4.3.1.7. Определение Vibrio parahaemolyticus (галофильный вибрион)
- •4.3.1.8. Выделение Bacillus cereus
- •4.3.1.9. Выделение Listeria monocytogenes
- •4.3.1.10. Выявление дрожжей и плесневых грибов (гост 10444.12-88)
- •4.4. Необходимые материалы
- •4.5. Микробиологические методы исследования беспозвоночных
- •4.5.1. Порядок выполнения работы
- •Порядок выполнения работы
- •4.5.1.1. Определение общей микробной обсемененности
- •4.5.1.2. Прямые методы.
- •4.5.1.2.1. Рост микробов на предметных стеклах с питательным агаром
- •4.5.1.2.2. Определение санитарно-показательных и патогенных организмов
- •4.5.1.2.3. Энтерококки.
- •4.5.1.2.4. Патогенный стафилококк.
- •4.6. Обработка полученных данных
- •4.6.1. Определение процентного соотношения бактериальных форм в посевах с водного сырья.
- •4.6.2. Выделение бактерий в чистую культуру и определение вида бактерии.
- •4.6.3. Идентификация микроорганизмов
- •4.6.4. Определение морфологических, культуральных и физиолого-биохимических признаков бактерий
- •4.6.4.1. Культуральные признаки.
- •А. Рост на плотных питательных средах.
- •Б. Рост на жидких питательных средах.
- •4.6.4.2. Морфологические признаки
- •Метод Фонтана
- •Метод серебрения жгутиков по Морозову
- •4.6.4.3. Определение физиолого-биохимических признаков Отношение к кислороду
- •Отношение к температуре
- •Тест на окисление-брожение, или тест Хью-Лейфсона
- •Отношение к углеводам и пятиатомным спиртам
- •Д. Выявление индола и применяемые реактивы. А) Методы выявления
- •Б) Применяемые реактивы.
- •Е. Определение ферментов бактерий. А) Определение липазы
- •Б) Определение каталазы.
- •Ж. Выявление способности бактерий восстанавливать нитраты в нитриты.
- •З. Определение интенсивности кислотообразования.
- •И. Выявление аммиака.
- •4.7. Вопросы для самопроверки
- •Раздел 5. Использование антибиотиков в рыбной промышленности
- •5.1. Краткие теоретические сведения
- •5.2. Определение концентрации антибиотика в продуктах
- •5.2.1. Определение концентрации антибиотика методом бумажных дисков.
- •5.2.2. Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом канавки
- •5.2.3. Определение хлортетрациклина в продуктах
- •Построение калибровочной кривой
- •5.3. Необходимое оборудование для одного студента
- •5.4. Вопросы для самопроверки
- •Рекомендуемая литература
- •Содержание:
- •Раздел 1. Санитарно-микробиологический анализ воды, воздуха, почвы.
- •Глава 1. Исследование микрофлоры воды.
- •Глава 2. Санитарно-бактериологический анализ воздуха
- •Глава 3. Санитарная микробиология почвы
- •Раздел 2. Дезинфекция и производственная санитария
- •Раздел 5. Использование антибиотиков в рыбной промышленности
4.2.1. Микрофлора свежевыловленных беспозвоночных
Нерыбные объекты морского промысла – ракообразные и моллюски, как и рыбы являются скоропортящимся сырьем. Однако мясо беспозвоночных содержит экстрактивные небелковые азотистые соединения в большем количестве, чем мясо рыбы, поэтому ферментативные и бактериальные процессы в нем протекают гораздо быстрее, чем в мясе рыбы. Микрофлора сырья значительно влияет на качество готового продукта.
Микробная обсемененность свежевыловленных тихоокеанских креветок составляет от 8,7·102 до 1,3·106 кл/г. Качественный состав микрофлоры креветок во многом зависит от района лова. На микрофлору креветок большое значение оказывает и сезон лова. В микрофлоре свежих креветок найдены бактерии р.р. Vibrio, Pseudomonas, Moraxella, Acinebacter.
Согласно требованиям СанПИН микробная обсемененность ракообразных следующая: МАФАМ 5·104 кл/г, БГКП 0,01 г, St. aureus.- 0,01 г, Salm. не допускается в 25 г, Listeria не допускается в 25г, V. parahaemolyticum не более 100 КОЕ/г.
Микрофлора креветок, выращенных в прудах, отличается от микрофлоры морских креветок и состоит из колиформ и небольшого количества бактерий р. Vibrio,что свидетельствует о том, что на микрофлору креветок, выращенных в прудах, влияет качественный и количественный состав микрофлоры пруда, плотность посадки креветок, состав микрофлоры корма, интенсивность питания.
Панцирные покровы, жабры и внутренности крабов содержат микроорганизмы, типичные для микрофлоры грунта, причем в микрофлоре преобладают споровые формы. Установлено, что в глинисто-илистых и илисто-песчаных грунтах доминируют Bac. subtilis, а в глинистых – Bac. megaterium. Крабы, обитающие на каменистых и песчаных участках, имеют незначительную обсемененность, но при повреждении панциря микроорганизмы инфицируют мясо в панцирных трубках. Мясо крабов, не задержанных в сетях, содержит единичные клетки бактерий, при задержке сетей с уловом в море в крабах увеличивается количество бактерий за счет аэробов. В жабрах крабов преобладают психрофильные и мезофильные формы бактерий с температурным оптимум роста 260С, с преобладанием р.р. Aeromonas, Moraxella, Pseudomonas, Corynebacterium, Vibrio. Интересно, что после обработки крабов в их мясе значительно возрастает количество бактерий из группы кишечной палочки; так, если в свежевыловленных крабах на долю бактерий этой группы приходится не более 2%, то после обработки, – 4,5%.
Моллюски. Моллюски (песчаные ракушки, мидии, устрицы и др.), за исключением нескольких морских видов, растут, размножаются и добываются в эстуариях, т.е. в районах, обычно загрязненных сточными водами. Замечено, что с увеличением температуры воды в фекалиях мидии увеличивается численность бактерий, следовательно, возрастает и общая обсемененность. Зимой она значительно снижается, что связано с замедлением жизнедеятельности моллюсков, а также уменьшением выноса сбросов речными стоками.
Микрофлора моллюсков аналогична микрофлоре воды, в которой они обитают, но численность их на моллюсках гораздо больше. Наибольшее количество бактерий обнаруживается в печени и содержимом желудка. На жабрах численность бактерий в 15 раз меньше, чем в желудке или печени.
На поверхности мантии и жабр моллюсков обнаружены извитые и нитевидные формы бактерий, не растущие на стандартных питательных средах.
Бактериальная обсемененность мидий промышленной заготовки колеблется в пределах от 5·102 до 2·106 кл/см2.
Микробная обсемененность мидий, выращенных на заводах, составляла от 6,1·104 до 5,4·106 кл/г, причем с увеличением длительности перевозки обсемененность мидий возрастала.
Устрицы. Обсемененность тихоокеанских устриц и устриц у побережья Луизианы составляла от 1,3·103 до 5,6·106 кл/г. Из устриц были выделены бактерии р.р. Achromobacter, Aeromonas, Alcaliqenes, Bacillus, Flavobacterium и сальмонеллоподобные организмы.
Микрофлора гребешка представлена р.р.Moraxella, Acinetobacter, Pseudomonas, грамположительными кокками, коринеформами, , р.р. Flavobacterium, Cytophaqa.