
- •Глава 1. Обзор литературы
- •Полиморфизм гена рецептора дофамина drd2
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2.1. Материалы исследования
- •2.2. Методы исследования Определение уровня интеллектуального развития (iq) с помощью теста Кеттелля
- •Выделение днк методом фенольно-хлороформной экстракции
- •Методика проведения пцр-реакции полиморфного локуса TaqIа в гене d2-рецептора дофамина (drd2)
- •Пдрф-анализ продуктов амплификации
- •Применение электрофореза для анализа полиморфизма днк
- •Глава 3. Результаты исследования
- •3.1. Анализ ассоциаций полиморфного локуса TaqIа в гене drd2 с уровнем интеллектуального развития (iq)
- •Список литературы
Глава 2. Материалы и методы исследования
2.1. Материалы исследования
В работе использованы образцы ДНК индивидов возрасте 18-35 лет, проживающих в Республике Башкортостан. Образцы ДНК получены после медицинского осмотра с письменного согласия испытуемых при содействии Башкирского государственного педагогического университета им.М.Акмуллы.
2.2. Методы исследования Определение уровня интеллектуального развития (iq) с помощью теста Кеттелля
В исследовании для определения IQ использовался тест, предложенный Р. Кеттеллом в 1958 году, который измеряет способность быстрого решения несложных задач, не требующих предварительной подготовки (Денисов, Доровеев, 1994). Этот тест имеет определение «культурно-свободный», так как предназначен для определения уровня интеллектуального развития лиц, не знакомых даже с азбукой, независимо от влияния таких факторов, как культурный уровень, образование и т.п. Этот тест в целом ориентирован на конвергентный тип мышления, направленный на поиск единственного решения. Тест состоит из двух больших частей, построенных аналогичным образом.
По Кеттеллу считается, что средняя норма IQ находится в пределах от 90 до 110 баллов (Денисов, Доровеев, 1994). Показатели выше этого уровня могут свидетельствовать о высоких способностях испытуемого, ниже него – об отставании в умственном развитии.
Выделение днк методом фенольно-хлороформной экстракции
Выделяли ДНК из периферической крови человека методом фенольно-хлороформной реакции (Mathew, 1984). Для этого разрушали плазматическую и ядерную мембраны лейкоцитов и освобождали ДНК от клеточных белков.
Необходимые растворы:
0.2 МgСl2 - 1,9г МgС12 доводили Н2О до 100 мл. Удельный вес должен быть 1,015.
Трис НС1 2М рН 7,6 (для лизирующего буфера) - Трис 60,55г+150 мл
Н2O мешали на магнитной мешалке. Постепенно добавляли примерно 30 мл НС1, доводя рН до 7,6. доводили обьем с помощью дист. Н2О до 250 мл.
Лизирующий буфер: сахароза-109,44г; Трис НС1 (2М, рН 7,6) - 5мл; МgС12-25мл (0,2М); Трилон + 100-10 мл. Доводили обьем дист. Водой до 1 л, перемешивали.
NаС1 5М: NаС1 - 29,22г 80мл Н2О, растворяли на магнитной мешалке.
Доводили обьем дист. Водой до 1000 мл.
ЭДТА 0,5М рН 8,0 : 186,1 г двузамещенной соли ЭДТА . 2Н2О+800мл Н2О,
интенсивно перемешивали на магнитной мешалке. Доводили рН до 8,0 (~20г NаОН), объем диет. водой до 1л.
ЭДТА (saline): ЭДТА 0,5М, рН 8,0-25 мл ; NаС1 5М - 7,12 мл. доводили объем дист. водой до 500 мл.
10% SDS (додецилсулъфат Nа): 25г чистого SDS+ 200 мл Н2О перемешивали на магнитной мешалке при 68°С. Доводили рН до 7,2; объем диет. Водой до250 мл.
Протеиназа К - растворяли лиофилизированную протеиназу К в стерильной дист. воде в концентрации 10 мг\мл , хранили при -20°С.
Насыщенный буфером фенол - в большинстве случаев фенол высокой
степени чистоты можно использовать без дополнительной перегонки.
Расплавляли фенол при 65°С в присутствии равного объема 0,5М трис-HС1, рН 8,0, содержащего 0,2 % 8-гидроксихинолин и 0,2% 2- меркаптоэтанол (2-МЭ). Когда фенол полностью расплавлялся, тщательно перемешивали смесь, отбирали водную фазу и дважды экстрагировали фенол 0,1М трис НС1, рН 8,0, содержащим 0,2% 2-МЭ. После последней экстракции водную фазу не удаляли, а оставляли ее в сосуде с фенолом. В таком виде насыщенный фенол хранили при 4°С до 1 месяца.
Первый этап:
1. К 10 мл. крови (если есть сгустки, то их тщательно разбивали) добавляли 50 мл. лизирующего буфера и перемешивали. Переносили кровь в центрефужную полипропиленовую пробирку.
2.Уравновешивали пробирки лизирующим буфером.
3.Осаждали лейкоциты центрифугированием при 4000 об\мин 20 минут при 4°С (на центрифуге К-23Д).
4.Сливали недостаточную жидкость, на дне немного с боку оставалось небольшое розоватое пятно кольцо.
5. Осадок с помощью стеклянной палочки соскребали со стенок, добавили 8мл ЭДТА saline, суспендировали и переливали в стеклянный стакан.
6.Добавляли 50 мл протеиназы К(10 мг\мл) плавно перемешивали.
8.Закрывали крышкой и инкубировали при 42°С 16 часов.
Второй этап:
1. К инкубированной смеси добавляли 0,5 мл 5М перхлората натрия (NаС1Oз) и 8мл фенола, насыщенного 1М трис-НСl до рН 7,8, перемешивали.
2.Центрифугировали при 4000 об\мин в течении 10 минут (на центрифуге К-23Д).
3.Тщательно отбирали верхнюю (водную) фазу с помощью пипетки в чистую пробирку.
4. Добавляли к верхней фазе 4 мл доведенного фенола и 4 мл хлороформа. Перемешивали очень аккуратно.
5.Разделяли водную и органическую фазы центрифугированием при 4000 об\мин в течении 10 минут (на центрифуге К-23Д).
6.Тщательно отбирали, стараясь не перемешать, верхнюю вязкую водную фазу, содержащую ДНК.
7.Добавляли к фазе, содержащей ДНК, 8 мл хлороформа.
8.Центрифугировали при 4000 об\мин в течении 10 минут.
9.Очень осторожно отбирали верхнюю фазу, содержащую очищенную от белков ДНК, в коническую колбу.
10. Добавлял и к отобранной верхней фазе три объема холодного этанола.
11 .Тщательно и осторожно перемешивали в одном направлении до образования супернатанта (осадка ДНК).
12.Этанол сливали, отбирали супернатант и промывали ДНК два раза
небольшим количеством 70 % этанола.
13.Чистый осадок ДНК с небольшим количеством этанола переливали в эпендорф и ставили в холодильник для хранения.
Перед началом исследования ДНК растворяли в деионизированной воде.