
- •Лабораторные работы по биохимии Учебно-методическое пособие
- •Введение
- •Особенности работы в биохимической лаборатории и инструктаж по технике безопасности
- •Тема 1 белки
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Тема 2 количественные методы в биохимии
- •Ход работы
- •Тонкослойной ионообменной хроматографии
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Тема 3 ферменты
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Тема 4 витамины
- •Ход работы
- •Кислоты из дрожжей
- •Ход работы
- •Витаминов методом тонкослойной хроматографии
- •Ход работы
- •Ход работы
- •С методом йодометрического титрования
- •Ход работы
- •Тема 5 нуклеиновые кислоты
- •Ткани селезенки, печени, мышц
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Рибонуклеопротеинов дрожжей
- •Ход работы
- •Тема 6 фотосинтез
- •В зеленых листьях растений
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Тема 7 углеводы. Липиды
- •В вытяжке из моркови
- •Ход работы
- •В растительном масле
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Тема 8 химия молока
- •Ход работы
- •Способы выражения содержания растворенного вещества в растворе
- •Правило смешения
- •Приготовление некоторых реактивов
- •0.01 Н раствор hCl
- •20 % Раствор сульфосалициловой кислоты
- •1 62600 Г. Череповец, пр. Луначарского, 5.
Тема 1 белки
(4 ч)
Работа 1 Цветные реакции на белки и аминокислоты
Цветные реакции дают возможность обнаружить присутствие белка в биологических жидкостях и получить представление о его аминокислотном составе.
Биуретовая реакция открывает пептидную связь в белке. Её способны дать вещества, которые содержат не менее двух пептидных связей.
Нингидриновая реакция характерна для α-аминогрупп. Нингидриновая реакция используется для количественного определения α-аминокислот в аминокислотных анализаторах.
Ксантопротеиновая реакция открывает наличие в белках циклических аминокислот – триптофана, фенилаланина, тирозина, содержащих бензольное ядро.
Реакция Миллона открывает в белке циклическую аминокислоту тирозин. Белки, не содержащие тирозин, этой реакции не дают.
Реакция Фоля указывает на присутствие в белке аминокислот цистина и цистеина, содержащих слабосвязанную серу. Метионин, хотя и является содержащей серу аминокислотой, этой реакции не дает, поскольку сера в нем связана прочно.
Исследуемый материал: раствор яичного белка (способ приготовления дан в приложении).
Оборудование: градуированная пипетка объемом 1 мл, пипетки, мерный цилиндр – 10 мл, цилиндрические маленькие пробирки 10 шт., стеклянные палочки, пробиркодержатель, штатив, спиртовка.
Реактивы: 1) 10 % раствор NaOH; 2) 1 % раствор CuSO4; 3) 0,5 % раствор нингидрина; 4) HNO3 (конц.); 5) реактив Миллона; 6) реактив Фоля; 7) дистиллированная вода.
Ход работы
Провести цветные реакции на исследуемом растворе яичного белка. Полученные результаты оформить в виде следующей таблицы:
Таблица 1
Реагент |
Количество реагента, капель |
|
Опыт |
Контроль |
|
1 |
2 |
3 |
Биуретовая реакция |
||
Раствор белка |
5 |
- |
Вода |
- |
5 |
NaOH, 10 % |
5 |
5 |
CuSO4, 1 % |
2 |
2 |
Наблюдение окрашивания |
|
|
Продолжение
1 |
2 |
3 |
Нингидриновая реакция |
||
Раствор белка |
5 |
- |
Вода |
- |
5 |
Раствор нингидрина |
5 |
5 |
Кипятить 1-2 мин |
||
Наблюдение окрашивания |
|
|
Ксантопротеиновая реакция |
||
Раствор белка |
5 |
- |
Вода |
- |
5 |
HNO3, конц. |
5 |
5 |
Кипятить до появления окраски раствора белка |
||
Наблюдение окрашивания |
|
|
Реакция Миллона |
||
Раствор белка |
5 |
- |
Вода |
- |
5 |
Реактив Миллона |
3 |
3 |
Нагреть до окрашивания осадка белка |
||
Наблюдение окрашивания |
|
|
Реакция Фоля |
||
Раствор белка |
5 |
- |
Вода |
- |
5 |
NaOH, 30 % |
5 |
5 |
(CH3COO)2Pb, 5 % |
1 |
1 |
Кипятить до появления окрашивания |
||
Наблюдение окрашивания |
|
|
Работа 2 Реакции осаждения белков
Реакции осаждения белков могут быть обратимыми и необратимыми. В первом случае белки не подвергаются глубоким изменениям, поэтому получаемые осадки могут быть вновь растворены в первоначальном растворителе с сохранением своих нативных свойств. При необратимых реакциях осажденные белки подвергаются глубоким изменениям – денатурации.
Реакции осаждения дают возможность:
1) изучить свойства белков;
2) освободить жидкость от присутствия белка;
3) установить наличие белка в биологических жидкостях, например в моче;
4) высаливанием с помощью различных концентраций нейтральных солей или спиртом выделить отдельные белковые фракции.
Реакция высаливания (осаждения белков с помощью высоких концентраций нейтральных солей) обусловлена дегидратацией макромолекул белка с одновременной нейтрализацией электрического заряда. Для высаливания различных белков требуется неодинаковая концентрация одних и тех же солей. Глобулины, имеющие большую молекулярную массу, легче высаливаются, чем альбумины. Глобулины осаждаются в полунасыщенном, а альбумины – в насыщенном растворе сернокислого аммония.
Осаждение белков солями тяжелых металлов (в отличие от высаливания) происходит при небольших концентрациях солей. Белки при взаимодействии с солями тяжелых металлов (свинца, меди, серебра, ртути и др.) адсорбируют их, образуя с ними солеобразные и комплексные соединения, растворимые в избытке этих солей (за исключением солей AgNO3, HgCl2), но не растворимые в воде. Соли тяжелых металлов вызывают необратимое осаждение белков, т.е. денатурацию.
Концентрированные минеральные кислоты вызывают денатурацию белка. Выпадение белка в виде осадка связано с денатурацией белковых частиц и образованием комплексных солей белка с кислотами. Ортофосфорная кислота (H3PO4) осадка не дает. В избытке всех минеральных кислот, за исключением азотной (HNO3), выпавший в осадок белок растворяется.
Органические кислоты вызывают необратимое осаждение белков, чаще используют растворы трихлоруксусной и сульфосалициловой кислот. Кроме белков она осаждает также продукты их распада — высокомолекулярные пептоны и полипептиды. Трихлоруксусная кислота способна осаждать только белки и не осаждает продукты распада белков.
В органических растворителях (этанол, ацетон и др.) белки не растворяются и выпадают в осадок. В зависимости от природы белка для его осаждения требуются различные концентрации спирта. Этанол связывает воду, вызывая дегидратацию мицелл белка и неустойчивость их в растворе. При осаждении этанолом раствор белка должен быть нейтральным или слабокислым, но не щелочным. Реакция облегчается присутствием электролита хлористого натрия вследствие снятия заряда с частиц белка. Реакция осаждения белка этанолом или кратковременным действием этанола обратима при охлаждении. Если осадок быстро отделить от этанола, то белок может сохранить нативное состояние.
Осаждение белков алкалоидными реактивами также относится к необратимым реакциям. К группе алкалоидных реактивов принадлежат танин, пикриновая кислота и др. Механизм осаждения белков алкалоидными реактивами связан с образованием нерастворимых солеобразных соединений с основными азотсодержащими группами белка. Белки – протамины и гистоны, несущие положительный заряд, хорошо осаждаются алкалоидными реактивами в нейтральной среде без подкисления.
Исследуемый материал: раствор яичного белка (способ приготовления дан в приложении).
Оборудование: градуированная пипетка объемом 1 и 5 мл, пипетки, мерный цилиндр – 10 мл, цилиндрические маленькие пробирки 15 шт., стеклянные палочки, спиртовка, воронка, фильтровальная бумага, штатив для пробирок, пробиркодержатель.
Реактивы: 1) 1 % раствор СН3СООН; 2) 10 % раствор NaOH; 3) NaCl (порошок); 4) насыщенный раствор NaCl; 5) (NH4)2SO4 (порошок); 6) насыщенный раствор (NH4)2SO4; 7) 10% раствор CuSO4; 8) 5 % раствор (CH3COO)2Pb; 9) HNO3 (конц.), H2SO4 (конц.); 10) 10 % раствор трихлоруксусной кислоты; 11) 20 % раствор сульфосалициловой кислоты; 12) насыщенный раствор пикриновой кислоты, дистиллированная вода.