
- •П.Б. Разговоров методы анализа качества пищевого сырья и продукции
- •Оглавление
- •Введение
- •1. Классы и группы веществ, входящих в состав пищи
- •1.1. Применение основных групп физико-химических методов анализа продуктов питания
- •2. Спектроскопические и спектрофотометрические методы анализа
- •Взаимосвязь между видом возбуждения, длиной волны и энергией для некоторых спектроскопических методов
- •2.1. Закон Бугера–Бэра для количественного анализа продуктов питания
- •2.2. Применение закона Бугера–Бера для анализа растительных масел
- •Определение прозрачности масла
- •Определение степени прозрачности масла (гост 5472 - 50)
- •Визуальный метод определения цветности растительных масел (гост 5477 – 93)
- •Фотоколориметрическое определение цветности масел
- •Колориметрический метод определения массовой доли фосфоросодержащих веществ маслах и жирах (гост 7824 – 80)
- •2.3. Теоретические основы инфракрасной спектроскопии. Использование метода для анализа пищевых продуктов
- •Основные полосы поглощения говяжьего, свиного и костного жиров в ик спектрах
- •2.4. Анализ содержания жиров, степени их окисленности и количества транс-изомеров в жирах и жирных кислотах
- •2.5. Атомно-абсорбционная спектроскопия
- •2.5.1. Атомно-абсорбционный метод определения тяжелых металлов и токсичных элементов в пищевых продуктах и пищевом сырье
- •2.5.2. Способы минерализации органических проб
- •Сравнение результатов уз-обработки образца (1) и «сухой» (2) минерализации его в муфельной печи
- •2.6. Спектроскопия ядерного магнитного резонанса
- •Значения химических сдвигов для различных групп пищевых продуктов
- •2.6.1. Компонентный анализ жиров и влаги в пищевых продуктах методом ямр
- •3. Определение влажности пищевых продуктов
- •3.1. Спектральный метод анализа влаги в пищевых продуктах
- •Колебания молекулы воды в инфракрасном спектре
- •Определение влажности муки
- •Определение влажности эмульсии теста
- •Определение влажности кондитерского теста
- •Определение влажности кондитерского крема по ик спектрам
- •Определение влажности продуктов овощесушильной и консервной промышленности
- •Влажность некоторых продуктов воды в инфракрасном спектре
- •3.2. Гравиметрический метод определения содержания влаги
- •3.3. Метод определения влаги титрованием по Фишеру
- •3.4. Метод определения воды в жирах и маслах (метод Дина–Старка)
- •4. Хроматографические методы анализа
- •Классификация хроматографических методов по агрегатному состоянию фаз
- •4.1. Газо-жидкостная хроматография
- •4.1.1. Использование гжх для изучения состава жирных кислот природных масел, жиров и липидов
- •Время, мин
- •4.1.2. Использование гжх для анализа жирорастворимых витаминов в составе масел (жиров)
- •4.2. Тонкослойная хроматография
- •4.2.1. Использование метода тонкослойной хроматографии для разделения углеводов
- •4.2.2. Анализ пестицидов и ядохимикатов в растительном сырье
- •4.2.3. Анализ микотоксинов т-2, ф-2 и охратоксина а в фуражном зерне, продуктах его переработки и всех видах комбикормов
- •4.3. Ионообменная хроматография
- •4.3.1. Определение аминокислот в пищевых продуктах
- •Время, мин
- •4.4. Гель-хроматография
- •5. Масс-спектрометрический метод
- •5.1. Сочетание масс-спектрометрии и хроматографии для определения аминокислотного состава белка
- •1 2 3 4 5 6 Время, мин
- •6. Полярографический метод
- •6.1. Анализ токсичных элементов в пробе пищевого продукта
- •7. Реологические методы анализа
- •7.1. Типы приборов и оборудования для изучения реологических свойств пищевых продуктов
- •8. Сводная таблица методов контроля качества пищевых продуктов
- •Классификация методов контроля состава и свойств продуктов питания
- •Литература
4.2.3. Анализ микотоксинов т-2, ф-2 и охратоксина а в фуражном зерне, продуктах его переработки и всех видах комбикормов
Определение токсина Т-2
Токсин Т-2 является одним из наиболее опасных представителей группы микотоксинов, действие которых характеризуется поражением кровеносной и иммунной системы, анемией, поражением функций желудочно-кишечного тракта.
Т-2 в форме грибов-продуцентов способен поражать зерно и зернопродук-ты. В связи с этим ПДК на содержание токсина Т-2 в пищевых продуктах и сырье составляет 0,1 мг/кг.
Токсин Т-2 (формула С24Н34О9) – белое кристаллическое вещество с моле-кулярной массой 466; tПЛ =151–152 ºС; плохо растворяется в воде и гексане, но хорошо растворяется в бензоле, ацетоне, этилацетате, спиртах..
Для обнаружения токсина Т-2 методом ТСХ используется его свойство флуоресцировать при λ = 365 нм после обработки специальными реагентами Н2SO4 и нагревании до 100–105ºС.
Качественное определения токсина Т-2 требует проведения следующих операций:
– извлечение токсина ацетоном;
– очистка экстракта от липидов и растительных пигментов с последующей доочисткой на хроматографической колонке;
– двукратное хроматографирование на пластине в присутствии стандарт-ного раствора токсина.
Исследование проводят следующим образом.
1.
Пробу зерна (
100
г) размалывают на электромельнице до
дисперс-ности частиц не более 1 мм
(проводят разделение через сито с
отверстиями указанного диаметра).
2. 25 г анализируемого продукта выдерживают 18–20 ч при комнатной температуре в присутствии ацетона, добавляют гексан и воду и экстрагируют хлороформом.
3. Упаривают экстракт на кипящей водяной бане (до объема 2–3 см3) с целью удаления паров хлороформа.
4. Наносят небольшую порциями (по 0,01 см3) с помощью микрошприца анализируемую пробу и несколько проб стандартов с различными известными концентрациями токсина Т-2 на расстоянии через 15 мм друг от друга и от нижнего края пластины, как это показано на рис. 4.9.
Одновременно на пластину наносят определенное количество (0,002 см3) стандартного спиртового раствора токсина Т-2.
5. Пластину опускают в хроматографическую камеру таким образом, что-бы стартовая линия находилась на 0,5 см выше уровня подвижного раство-рителя (система этилацетат – гексан (1:1)).
Рис. 4.9. Нанесение нескольких проб стандартов с различной концентрацией токсина Т-2 на стартовую линию
Когда фронт растворителя пройдет заданное расстояние (l = 14,5 см), хро-матограмму вынимают и сушат в сушильном шкафу при температуре t = 100ºС.
6. Проводят повторное хроматографирование в системе растворителей CCl4 – этилацетат – CH3COOH (17:3:1); условия сдвига фронта (l = 14,5 см) и последующей сушки (t = 100ºС) аналогичны.
При рассмотрении высушенной пластины в УФ лучах с λ = 365 нм токсин Т-2 обнаруживают в виде пятна с голубой флуоресценцией.
После повторного хроматографирования Rf = 0,20–0,23.
Результат на наличие токсина Т-2 токсина в пробе считается положи-тельным, когда на пластине наблюдается голубая флуоресценция, соответ-ствующая по положению флуоресценции пятну для стандартного раствора ток-сина Т-2.
Чувствительность метода 600 мкг/кг продукта или комбикорма.
Определение микотоксина Ф-2
Методика определения включает операции:
– экстракция токсина Ф-2 из пищевого продукта смесью ацетонитрила и раствора KCl;
– очистка и хроматографирование на пластине;
– измерение интенсивности флуоресценции по сравнению с таковой для стандартного раствора Ф-2.
Специфика заключается в том, что растворы наносят по особой схеме, а в качестве проявителя используют системы растворителей бензол – ацетон (на-правление I) и толуол – этилацетат – муравьиная кислота (направление II).
По характерному сине-голубому свечению пятен раствора Ф-2 в УФ свете при λ = 253 нм определяют наличие таких же пятен и свечения в анализи-руемом экстракте.
Рис. 4.10. Проведение анализа токсина Ф-2 на пластине в двух направлениях
Содержание микотоксина Ф-2 в пробе зерновых культур или комбикормов (мг/кг продукта) рассчитывают:
,
(4.18)
где A – концентрация Ф – 2 в стандартном растворе, мкг/см3;
В – конечный объем экстракта, см3;
С и D – объемы экстракта и стандартного раствора Ф-2 с одинаковой интенсивностью свечения, см3;
12,5 – коэффициент учета массы пробы.
Определяют среднее значение из данных двух опытов до второго десятич-ного знака:
=
.
(4.19)
Чувствительность метода 50 мкг/кг продукта [3].