- •V. Энергетический обмен клетки
- •§5.1. Метаболические реакции
- •Энергетически сопряженные реакции
- •§5.2. Модель молекулярного источника энергии
- •§5.3. Высокоэнергетические соединения – макроэрги. Атф
- •§5.4. Экзоэргические реакции. Гидролиз
- •§5.5. Окислительно-восстановительные реакции
- •5.5.1. Окислительные процессы в биологии
- •5.5.2. Ферментативное окисление
- •§5.6. Энергетическое сопряжение в реакциях фосфорилирования
- •§5.7. Законы биоэнергетики
- •§5.8. Клеточное дыхание
- •5.8.1. Общая схема
- •5.8.2. Две стадии клеточного дыхания
- •I. Первая стадия клеточного дыхания
- •II. Второй этап клеточного дыхания
- •§5.9. F1f0-атФсинтаза
- •5.9.1. Структура
- •5.9.2. Основные функции
- •5.9.3. Принцип действия
- •5.9.4. Синтез атф
- •5.9.5. Гидролиз атф
- •5.9.6. F1f0-atФсинтаза как биорегулятор клетки
- •§5.10. Межмолекулярный перенос энергии в биоструктурах
- •5.10.1. Химический и физический способы переноса энергии
- •5.10.2. Фотовозбуждение сложных молекул
- •5.10.3. Индуктивно-резонансный механизм миграции энергии
- •5.10.4. Модели индуктивно-резонансной миграции энергии
- •Механическая модель
- •Квантово-механическая модель
- •5.10.5. Обменно-резонансный механизм
- •5.10.6. Экситонный механизм
- •5.10.7. Некоторые замечания о механизмах переноса энергии фотовозбуждения
- •§5.11. Перенос электрона. Электронно-конформационное взаимодействие
- •5.11.1. Электронно-колебательное взаимодействие
- •5.11.2. Перенос электрона в окислительно-восстановительных реакциях
- •5.11.3. Проводимость белков
- •5.11.4. Полупроводниковая концепция транспорта
- •5.11.5. Химический механизм переноса заряда
- •5.11.6. Биологическое значение переноса заряда
- •§5.12. Фотосинтез
- •§5.13. Эволюция биоэнергетики
- •5.13.1. Ультрафиолетовый фотосинтез атф
- •5.13.2. О производстве энергии в экстремальных условиях
- •§5.14. Искусственные молекулярные устройства, моделирующие процессы переноса
§5.9. F1f0-атФсинтаза
5.9.1. Структура
Фермент F1F0-АТФсинтаза является основным производителем АТФ в живом организме (в хлоропластах растений, в митохондриях животных или бактериях).
F1F0-АТФсинтаза состоит из двух достаточно крупных белковых комплексов F1, F0 и слегка изогнутой γ-субъединицы, имеющей вид стержня длиной ~9 нм, образованного двумя протяженными полипептидными цепями. Субъединица γ проходит через оба комплекса (рис. 5–14).
Встроенный в мембрану комплекс, называемый фактором сопряжения F0, содержит протонопроводящий канал, обеспечивающий перенос протонов Н+ через мембрану. Фактор сопряжения F1 находится в водной среде матрикса митохондрий (внутренняя часть митохондрий).
F1F0-АТФсинтаза
содержит 8 основных субъединиц (см.
рис. 5–14):
.
Ее молекулярная масса составляет
~530кДа. Мембранную часть F0
образуют субъединицы
,
надмембранную часть F1
–
.
Субъединицы
(полипептидные цепи которых у крупного
рогатого скота содержат ~510 аминокислот)
и субъединицы
(~482 аминокислот) чередуются друг с
другом, образуя гексамер
,
представляющий собой слегка сплющенный
шар высотой 8 нм и шириной 10 нм.
В центральной области, соединяя комплексы F0 и F1, находятся субъединицы γ (~272 аминокислоты) и δ (~146 аминокислот). Вращение эксцентричной субъединицы γ внутри комплекса вызывает конформационные изменения в каталитических центрах . Субъединица ε (~50 аминокислот) выполняет функции регулятора активности фермента.
Рис. 5–14.
Строение F1F0-ATФсинтазы.
Комплекс F0
встроен в мембрану и отвечает за перенос
протонов через мембрану. Комплекс F1
выполняет каталитические функции по
синтезу/гидролизу АТФ
,
у растений
)
гидрофобных субъединиц С,
практически полностью погруженных в
мембрану. Субъединица а
также гидрофобна. Две субъединицы b
имеют короткие гидрофобные α-спиральные
участки, погруженные в мембрану. Бо́льшая
часть субъединиц b
находится в водной среде матрикса. Их
верхние концы закреплены на поверхности
гексомера
.
Три
каталитических
центра
расположены на границах прилегающих
друг к другу субъединиц
и
.
Три основных аминокислотных остатка в
каждом каталитическом центре принадлежат
субъединице
(β-Lys162,
β-Arg189
и β-Glu188)
и один –
(α-Arg373).
Они непосредственно окружают фосфатные
группы молекул АТФ в активных центрах.
Каждый центр может удерживать по одной
молекуле АТФ или АДФ. Положительно
заряженные группы β-Lys162,
β-Arg189
и α-Arg373
экранируют отрицательные заряды,
локализованные на атомах кислорода
фосфатных групп АТФ. Отрицательно
заряженная карбоксильная группа β-Glu188
участвует в активации молекулы воды в
реакции гидролиза (5.16).
За расшифровку пространственной структуры белкового комплекса F1 английскому исследователю Джеймсу Уокеру в 1997г. была присуждена Нобелевская премия.
5.9.2. Основные функции
F1F0-АТФсинтаза
может функционировать в двух режимах.
В одном режиме она осуществляет синтез
АТФ (ATP)
из АДФ (ADP)
и органического фосфата Фi
(Pi
↔
),:
(5.20 а)
в другом – гидролиз АТФ:
. (5.20 б)
Реакция синтеза/гидролиза (5.20 а/б) является обратимой с константой равновесия (см. с. 256) близкой к единице.
Прямая реакция (5.20 а), требующая затрат энергии, сопряжена с транспортом Н+ из межмембранного пространства в матрикс митохондрий (рис.5-12). Избыточная концентрация ионов Н+ (и избыточный положительный заряд) вызывают движение ионов Н+ против градиента химического потенциала на мембране (см. с. 549, рис.5–12, 5–13), следствием чего является возникновение момента внешней силы и направленное движение ротора биологического мотора. В результате становится возможным синтез АТФ.
При
переходе одного
протона
в матрикс выделяется энергия
,
где
– число Фарадея, е
– заряд электрона,
(5.17) – электрохимический потенциал,
выраженный в вольтах и приходящийся на
один ион водорода
.
При переходе n
протонов выделяется энергия (энергия1
в 5.20 а)
,
(5.21)
которая расходуется на синтез АТФ. Скорость синтеза ~100-300 молекул в секунду.
Обратная реакция (5.20 б) – реакция гидролиза АТФ, сопровождается выделением энергии
,
(5.22)
которая затрачивается на вращение ротора биологического мотора и на перенос протонов Н+ из матрикса в межмембранную среду по градиенту химического потенциала , то есть приводит к возрастанию . В этом режиме F1F0-АТФсинтаза работает как протонный насос, перекачивающий протоны Н+ из матрикса, в межмембранное пространство, где их концентрация выше. Таким способом АТФсинтаза поддерживает оптимальную величину градиента трансмембранного химического потенциала.
Таким
образом, в процессе работы синтез/гидролиз
АТФсинтазы осуществляется взаимное
превращение двух форм клеточной энергии
.
Например, в процессе синтеза энергия
протонного тока через фактор F0
конвертируется в энергию АТФ в факторе
сопряжения F1.
Энергия протонного тока за счет процессов
протонирования приводит к структурным
перестройкам F1,
что в свою очередь изменяет сродство
активного центра фермента к молекулам
АТP,
АDP
и Pi.
Режим
работы F1F0-АТФсинтазы
зависит от соотношения энергий
и
,
то есть от величин концентраций АТФ и
АДФ в матриксе и величины трансмембранного
потенциала, составляющего в норме
(160÷220) мВ.
