
- •1. Методи одержання крові
- •2. Антикоагулянти та правила збереження крові
- •3. Визначення швидкості осідання еритроцітів (шое)
- •3.1. Метод Панченкова.
- •3.2. Метод Неводова.
- •4. Визначення у крові вмісту гемоглобіну
- •4.1. Визначення гемоглобіну колориметричним методом в гемометрі Салі
- •4.2. Визначення вмісту гемоглобіну гемоглобінціанідним методом
- •5. Підрахунок кількості еритроцитів
- •Підрахунок еритроцитів пробірковим методом п’ятницкого (Николаєва).
- •6. Визначення індексів червоної крові
- •6.2. Серединній вміст гемоглобіну в одному еритроциті (вге)
- •7. Визначення величини гематокриту
- •8. Підрахунок кількості лейкоцитів
- •Підрахунок лейкоцитів пробірковим методом м.П. П’ятницкого (Николаєва).
- •9. Підрахунок кількості тромбоцитів
- •9.1. Прямий метод підрахунку у лічильної камери Горєвої.
- •9.2. Метод Фоніо у забарвлених мазках крові
- •10. Підрахунок кількості клітин крові у птиці
- •11. Приготування, фіксація і фарбування мазків крові
- •12. Виведення лейкограми (лейкоцитарної формули)
- •13. Визначення і діагностичне значення лейкоцитарного профілю
- •13.1. Видові лейкопенії
- •13.2. Патологічні зміни клітин крові
- •Список рекомендованої літератури
МІНІСТЕРСТВО АГРАРНОЇ ПОЛІТИКИ УКРАЇНИ
ПОЛТАВСЬКА ДЕРЖАВНА АГРАРНА АКАДЕМІЯ
ФАКУЛЬТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЇ МЕДИЦИНИ
КАФЕДРА ТЕРАПІЇ
МОРФОЛОГІЧНЕ ДОСЛІДЖЕННЯ КРОВІ ТВАРИН
Методичні вказівки до лабораторних занять з клінічної діагностики для студентів факультету ветеринарної медицини
ПОЛТАВА 2007
ЗМІСТ
ВСТУП |
3 |
|
1. |
Методи одержання крові |
4 |
2. |
Антикоагулянти та правила збереження крові |
6 |
3. |
Визначення швидкості осідання еритроцитів (ШОЕ) |
7 |
3.1. |
Метод Панченкова |
7 |
3.2. |
Метод Неводова |
7 |
4. |
Визначення у крові вмісту гемоглобіну |
8 |
4.1. |
Визначення гемоглобіну колориметричним методом в гемометрі Салі |
8 |
4.2. |
Визначення вмісту гемоглобіну гемоглобінціанідним методом |
8 |
5. |
Підрахунок кількості еритроцитів |
9 |
6. |
Визначення індексів червоної крові |
10 |
6.1. |
Кольоровий показник |
10 |
6.2. |
Середній вміст гемоглобіну в одному еритроциті (ВГЕ) |
10 |
7. |
Визначення величини гематокриту |
11 |
8. |
Підрахунок кількості лейкоцитів |
12 |
9. |
Підрахунок кількості тромбоцитів |
13 |
9.1. |
Прямий метод підрахунку у лічильної камери Горяєвої |
13 |
9.2. |
Метод Фоніо у забарвлених мазках крові |
13 |
10. |
Підрахунок кількості клітин крові у птиці |
15 |
11. |
Приготування, фіксація і фарбування мазків крові |
15 |
12. |
Виведення лейкограмі (лейкоцитарної формули) |
16 |
13. |
Визначення і діагностичне значення лейкоцитарного профілю |
17 |
13.1. |
Видові лейкопенії |
18 |
13.2. |
Патологічні зміни клітин крові |
19 |
Список рекомендованої літератури |
20 |
ВСТУП
У клінічній практиці ветеринарної медицини особливо велике значення має вивчення морфологічного і біохімічного складу периферичної крові у тварин, а також серологічні і бактеріологічні методи дослідження. За допомогою морфологічної картини крові можна мати уявлення про кількісний і якісний склад основних формених елементів крові, їх будову і співвідношення. Біохімічні методи дають змогу вивчити склад плазми або сироватки крови: вміст продуктів білкового, ліпідного, вуглеводного, мінерального обміну, ферментів, вітамінів, гормонів та інших речовин, а також вивчати фізико – хімічні властивості крові (в’язкість, резистентність форменних елементів, ШОЕ та ін.). Бактеріологічні дослідження дають змогу виявити в крові збудників інфекційних захворювань, серологічні методи допомагають виявити захворювання і дають можливість судити про антигенний склад крові певної тварини.
Усі перечисленні методи мають велике діагностичне значення для розпізнання різних захворювань внутрішніх органів і систем. Численні фактори зовнішнього середовища: температура навколишнього повітря, підвищення і зниження атмосферного тиску, різні токсини, хімічні агенти, променева енергія, інфекція та інші – можуть спричинити ряд фізіологічних і патологічних змін у системі крові. Вивчення складу периферичної крові і кісткового мозку дає змогу виявити не тільки зміні в органах кровотворення, а й захворювання інших органів, систем і тканин, що допомагає лікуванню тварин.
Морфологічні і біохімічні методи дослідження крові дуже численні і різноманітні. Деякі з них широко застосовуються і об’єднані в так званий клінічний аналіз крові.
У поняття клінічного аналізу крові входять: визначення кількості гемоглобіну, підрахунки форменних елементів крові – еритроцитів, лейкоцитів, тромбоцитів, обчислення кольорового показника, визначення ШОЕ (реакція осідання еритроцитів), виведення лейкоформули, обчислення лейкоцитарного профілю.
Беручи кров на аналіз, треба додержувати деяких загальноприйнятих правил, а саме: кров завжди слід брати в однакових умовах, бажано ранком, натщесерце, бо відомо, що приймання корму і пов’язані з цим процеси травлення, м’язові рухи, емоційне напруження, температурні реакції, відчуття голоду та ін. можуть зумовити протягом доби різкі морфологічні і біохімічні зміни в складі крові.
1. Методи одержання крові
На даний момент розроблено і відпрацьовано велику кількість методик по відбору крові у різних сільськогосподарських, лабораторних та домашніх тварин. Застосування конкретної методики залежить від мети подальшого використання отриманої проби крові.
У випадку проведення комплексних біохімічних досліджень у декількох повторах виникає необхідність отримання відносно великих об’ємів проб крові.
У жуйних (ВРХ, вівці, кози, верблюди, північні олені), а також у коней, застосовують методику відбору периферійної крові з яремної вени.
У свиней кров відбирають шляхом надрізання кінчика хвоста, проколом очного синусу (Петті), або ж з вушної вени
У домашніх та лабораторних тварин існує декілька оперативних підходів до взяття великої кількості крові:
із малої підшкірної вени гомілки, або з підшкірної вени передпліччя (у собак);
із зовнішньої яремної або з v.saphena стегнової вен (собаки, щурі, жаби, кішки та кролики. причому у останніх двох – тільки під наркозом);
у кроля існує метод відбору значних порцій крові шляхом розтину загальної сонної артерії. Серцевий відрізок артерії через канюлю направляють до збірника проби, в який і відтікає кров, а мозковий відрізок фіксують лігатурою. Таким шляхом з дорослого кроля можна отримати 50-70 мл крові;
у морських свинок значні кількості крові відбираються за методом Г.В.Федорова. На лапі тваринки в області кисті бритвою роблять глибокий розріз. Цю кінцівку просовують через гумову манжетку в товстостінну пробірку, з якої вакуумним насосом відкачують повітря;
у дорослих щурів кров одержують шляхом пункції хвостової вени. Хвіст миють теплою водою, дезінфікують, вену здавлюють при основі і вводять в неї судинну голку, через яку шприцом відбирають кров;
у птахів кров беруть з м’якуша ступні (качки, гуси). Максимальну кількість крові у курей одержують з гребінця, борідки або з підкрилової вени, на внутрішній поверхні крила;
досить складним в застосуванні, але й ефективним є метод відбору крові при безпосередній пункції серця (собаки, кішки, кролі, морські свинки щурі та миші). Для проведення маніпуляції рекомендовано застосування загального наркозу. Місце проколу вистригається і дезінфікується. Вказівним пальцем, який оброблений спиртовим розчином йоду, визначити місце локалізації найбільш відчутного серцевого поштовху. Там проводять прокол грудної клітини, з відступом 2 – 3 мм від лівого краю грудної клітки. Зазвичай прокол проводять у третьому міжребер’ї. Голку з шприцом вводять на глибину 2 – 3 см. При потраплянні голки в порожнину шлуночку, кров під тиском сама заповнює об’єм шприца.
При необхідності отримання невеликих об’ємів периферичної крові застосовують інші методи відбору.
Одним з найбільш універсальних методів є надріз чи прокол крайової вени вуха. Проколи треба робити на дрібних гілках вушної вени, починаючи з верхівки вуха. Ділянку, де буде відбиратися кров з зовнішньої сторони покривають тонким шаром рідкого парафіну, а з внутрішньої – натирають ксилолом, що призводить до різкого і стійкого розширення судин. Таки чином можливо отримати кров у собак, кішок, кролів, морської свинки, щурів, великої рогатої худоби, коней, свиней, овець, кіз.
Менш поширеним є метод отримання малих порцій периферичної крові із м’якої частини стопи після уколу голкою або надрізу скальпелем. Цей метод придатний для собак, кішок, морських свинок, мишей.
У найбільш популярних лабораторних тварин – щурів та мишей, невеликі проби крові отримують шляхом відсікання кінчика хвоста.