Основные принципы метода электронной микроскопии

Разрешающая способность светового микроскопа ограничена длиной световых волн. Максимально возможное разрешение равно полови­не длины волны используемого света. Таким образом получить изображение объекта размером меньше, чем эта величина невозможно. Средняя величина волны видимого света составляет примерно 550 нм, поэтому в конце ХIХ века могли получить разрешение примерно 200 нм (разрешение - это расстояние, на котором две течки видны раз­дельно). Незначительное увеличение разрешающей способности было достигнуто благодаря изобретению ультрафиолетового микроскопа длина волны УФ-света составляет 250 нм), обеспечивающего разре­шение в 100 нм.

Однако многие клеточные структуры имеют меньшие размеры. Эта проблема была решена в тридцатые годы, когда созда­ние электронного микроскопа произвело революцию в биологической науке. Вместо светового излучения в электронном микроскопе ис­пользуют пучок электронов, у которых длина волны значительно меньше, следовательно, и разрешающая способность значительно больше. Длина волны зависит и от напряжения, подаваемого для генерации электронного пучка, но практически можно, получить разре­шение в 0.5 нм, т.е. примерно в 500 раз больше, чем в световом микроскопе. Создаваемое увеличение достаточно, чтобы различить крупные молекулы. Лимитирующим фактором в достижении большего увеличения стало и остается до сих пор не усиление разрешающей способности микроскопа, а методы подготовки образца для исследо­вания.

В сущности, принцип действия электронного микроскопа таком же, как и светового, в котором пучок световых лучей направляется линзой конденсора через образец, а полученное изображение затем увеличивается с помощью линз.

При работе на электронном микроскопе оператор сидит лицом к колонне, по которой проходит лучок электронов. Источник электронов находится в верхней части колонны, а сам образец - внизу. На вольфрамовую нить накала подается высокое напряжение (около 50000 В), и нить накала излучает поток электронов. Чтобы сфокусировать эти электроны, необходимы уже не стеклянные линзы, а электромаг­ниты. Внутри колонны создается глубокий вакуум, чтобы сократить до минимума рассеивание электронов из-за столкновения с частицами воздуха и происходящее за этот счет нагревание.

В трансмиссионном (просвечивающем) микроскопе электроны проходят через образец, поэтому для изучения можно использовать только очень тонкие об­разцы. Части образца с относительно высокой молекулярной массой в наибольшей степени вызывают рассеяние электронов, поэтому для увеличения контрастности образцы пропитывают (окрашивают) тяжелы­ми металлами (свинец или уран). Электроны невидимы для человечес­кого глаза, поэтому они направляются на опалесцирующий экран, ко­торый воспроизводит видимое изображение, или же непосредственно на фотопленку, чтобы получить постоянный фотоснимок (электронную микрофотографию).

Различные приемы подготовки к исследованию

1. Окрашивание ультратонких срезов тяжелыми металлами. Срезы готовятся на ультратоме и окрашиваются соединениями тяжелых метал­лов, как нитрат свинца, уранилацетат или осмиевая кислота. Окрашенные участки становятся непроницаемы для электронов, и. на мик­рофотографиях они выглядят темными.

2. Негативное контрастирование. При негативном контрастировании окрашивается фон, тогда как сам образец остается неокрашенным. Этот метод особенно удобен при изучении деталей строения поверх­ности мелких частиц, таких как рибосомы, вирусы, фрагменты изоли­рованных органелл и мембран, так как краситель проникает между деталями поверхностного строения.

3. Напыление. Образец бомбардируется атомами тяжелых металлов, например, золотом или платиной, в определенном направлении. Поверхность образца покрывается слоем металла, непроницаемого для электронов. Закрытые площади ("тени") не покрываются металлом и остаются прозрачными для электронов. Таким образом, образец оказывается на фотографии черным, а закрытые площади белыми. Так как человеческий глаз лучше воспринимает и интерпретирует темные от­печатки, используют обычно негативы фотографий. Напыление используют также для выявления поверхности мелких частиц (вирусов и пр.)

4. Замораживание-скалывание и замораживание – травление. Фрагмент ткани быстро замораживается при очень низкой температуре и затем разламывается с помощью очень тонкого лезвия. Ткань трескается вдоль слабо соединенных плоскостей, которыми часто являются мемб­раны. Затем, лед возгоняется, оставляя сколотую поверхность.

Реплика этой поверхности создается откладывающимся на ней слоем углерода. На эту реплику из углерода напыляется тяжелый ме­талл, а ткани под репликой быстро разрушаются синильной кислотой. Этот метод очень удобен для изучения структуры мембраны. Его преимущество состоит в том, что ткани быстро умерщвляются, не подвергаясь химической обработке, которая может повлиять на структуру. Вполне вероятно, что клетки сохраняют свою прижизненную форму.

Сканирующий электронный микроскоп

Сравнительно недавно был введен в употребление новый тип микроскопа сканирующий. В нем очень точно сфокусированимй пучок электронов двигается взад и вперед по поверхности образца, а от­раженные от его поверхности электроны формируют изображение. Создается эффект трехмерности. Разрешающая способность такого микроскопа ниже, чем у трансмиссионного.

Электронный микроскоп высокого напряжения

Электронные микроскопы высокого напряжения (500000 – 1000000 В) стали использоваться в биологии недавно. Большее ускорение электронов позволяет им проходить через сравнительно толстые срезы, при этом получают трехмерное изображение структур при высоком разрешении. Сейчас внедряют методы, позволяющие быстро исследовать живые образцы, что в будущем должно дать весьма важную информацию.

Лабораторная работа №2

Знакомство с методом электронной микроскопии биологических объектов. Ультраструктура эукариотной и прокариотной клеток.

Для выполнения данной работы необходимо иметь предварительные знания об особенностях ультраструктуры эукариотных и прокариотных клеток (см. Грин, т.1,стр.210-217, 224-242), а также об особенностях хранения и передачи наследственной информации у бактерий (см. Грин, т.1,стр.15-24).