
- •От редактора перевода
- •Предисловие
- •Благодарности
- •Введение
- •Хромосомы
- •Клеточный цикл
- •Мейоз и образование гамет
- •Строение хромосом
- •Наследование одиночных признаков
- •Независимая сегрегация и независимое комбинирование
- •Связь между генами и хромосомами
- •Рекомбинация
- •Связь между генами и белками
- •Гены и ДНК
- •Перенос генетической информации в клетке
- •Структура и сохранение геномной ДНК
- •Экспрессия и регуляция генов
- •Глава 1. Молекулы генетического аппарата
- •1.1. Структура и поведение ДНК
- •в. Альтернативные формы двойной спирали ДНК
- •г. Размер молекул ДНК
- •д. Разнообразие форм ДНК
- •е. Денатурация и ренатурация ДНК
- •ж. Упаковка ДНК в хромосомах
- •1.2. Структура и поведение РНК
- •в. Структура РНК
- •г. Денатурация и ренатурация РНК
- •д. Гибридные спирали ДНК-РНК
- •1.3. Структура белков
- •б. Размер и форма белков
- •в. Чем определяется конформация белка
- •2.1. Репликация ДНК
- •в. Репликация ДНК полуконсервативна
- •д. Ключевые ферменты, участвующие в синтезе ДНК
- •е. Для репликации необходимо раскручивание спирали
- •ж. Инициация образования новых цепей ДНК и их рост в репликативных вилках
- •2.3. Репарация ДНК
- •а. Репарация путем прямого восстановления исходной структуры
- •б. Репарация путем замены модифицированных остатков
- •2.4. Рекомбинация ДНК
- •а. Типы рекомбинации
- •б. Общая рекомбинация между гомологичными молекулами ДНК
- •2.5. Репликация
- •3.1. Основные положения процесса экспрессии генов
- •а. Транскрипция ДНК в РНК
- •г. Правильная инициация трансляции
- •а. Синтез РНК на ДНК-матрице
- •а. Группы генов, кодирующих рРНК и тРНК
- •в. Образование зрелых тРНК из более крупных транскриптов
- •3.4. Генетический код
- •а. Аминокислотная последовательность белков соответствует нуклеотидной последовательности кодирующих их генов
- •б. Соответствие между аминокислотами и их кодонами
- •в. Расшифровка генетического кода
- •г. Избыточность генетического кода
- •3.5. Аппарат трансляции
- •а. Условия инициации
- •б. Элонгация полипептидной цепи
- •б. Трансляция бактериальных мРНК может осуществляться параллельно транскрипции
- •а. Особые модификации мРНК эукариот
- •в. Элонгация и терминация полипептидной цепи
- •3.9. Ингибиторы транскрипции и трансляции
- •а. Ингибирование РНК-полимеразы
- •б. Ингибирование трансляции
- •3.10. Судьба синтезированных белков
- •а. Посттрансляционная модификация полипептидных цепей
- •3.11. Регуляция генной экспрессии
- •в. Регуляция экспрессии лактозного оперона
- •г. Регуляция экспрессии триптофанового оперона
- •Литература
- •Введение
- •Общие работы для всех глав части I
- •Литература к указанным разделам глав
- •Введение
- •Конъюгация
- •Трансдукция
- •Принципы клонирования
- •Концепция рекомбинантной ДНК
- •Важные открытия
- •Бактериальные плазмиды
- •Рестриктирующие эндонуклеазы
- •Глава 4. Инструментарий: ферменты
- •4.1. Нуклеазы
- •в. Нуклеаза Bal 31
- •4.2. Эндонуклеазы рестрикции
- •а. Три типа эндонуклеаз рестрикции
- •б. Типичная рестриктирующая эндонуклеаза типа II
- •в. Различные группы рестриктирующих эндонуклеаз типа II
- •4.3. Фосфомоноэстеразы
- •4.4. Полинуклеотидкиназа
- •4.5. ДНК-лигаза
- •б. Ник-трансляция
- •в. Заполнение брешей
- •а. Полимеризация без матрицы
- •б. Синтез липких концов
- •а. Разносторонность хозяина
- •в. Доступность хозяина
- •г. Некоторые примеры
- •а. Модульная структура плазмид
- •б. Конструирование векторов для отбора
- •в. Плазмидный вектор pBR322
- •е. Векторы, сконструированные на основе фага М13
- •а. Космиды
- •б. Фазмиды
- •5.5. Другие прокариотические системы хозяин-вектор
- •а. Грамотрицательные организмы
- •б. Грамположительные организмы
- •в. Челночные векторы
- •5.6. Эукариотические системы хозяин-вектор: дрожжи
- •а. Универсальность и удобство
- •в. Стабильная трансформация при рекомбинации с дрожжевым геномом
- •5.7. Эукариотические системы хозяин-вектор: животные
- •а. Трансформация клеток животных
- •б. Векторы на основе SV40
- •в. Векторы на основе вируса папилломы крупного рогатого скота
- •г. Векторы на основе ретровирусов
- •а. Общие положения
- •б. Плазмида pTi-A, индуцирующая образование опухолей
- •Глава 6. Средства: конструирование, клонирование и отбор рекомбинантных молекул ДНК
- •6.1. Вставки
- •б. Вставки геномной ДНК
- •в. Синтетические вставки
- •а. Соединение концов
- •б. Клонирование
- •а. Обнаружение нужного клона
- •б. Отжиг с комплементарным полинуклеотидом
- •6.5. Библиотеки
- •а. Геномные библиотеки
- •б. Библиотеки кДНК
- •6.6. Некоторые стратегии клонирования генов и кДНК
- •7.1. Макроструктура клонированной вставки
- •а. Размер вставки
- •б. Картирование сайтов для рестриктирующих эндонуклеаз
- •в. Субклонирование
- •г. Определение положения интересующего нас сегмента во вставке
- •а. Общие принципы
- •б. Химическое секвенирование
- •в. Ферментативное секвенирование
- •б. Структурный анализ
- •а. Молекулярная локализация
- •б. Хромосомная локализация
- •в. Нестабильность при клонировании
- •7.5. Определение числа копий данной последовательности в геноме
- •б. Оценка числа копий по кинетике реассоциации ДНК
- •в. Оценка числа копий с помощью гибридизации в условиях насыщения
- •7.6. Изменение клонированных сегментов: получение мутантов
- •б. Делеционные мутанты
- •в. Инсерционные мутанты
- •г. Точечные мутации
- •7.7. Изучение функций клонированных сегментов ДНК
- •а. Характеристика внутриклеточных транскриптов, соответствующих клонированным сегментам ДНК
- •б. Функциональное тестирование клонированной ДНК
- •а. Выбор системы экспрессии
- •б. Экспрессирующие векторы, используемые в E.coli
- •в. Экспрессирующие векторы, используемые в клетках дрожжей
- •г. Экспрессирующие векторы, используемые в клетках животных
- •Литература
- •Введение
- •Общие работы для всех глав части II
- •Литература к указанным разделам глав
- •Оглавление

44 |
ЧАСТЬ I. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ОСНОВЫ НАСЛЕДСТВЕННОСТИ: ОБЗОР |
Большой
желобок
|
Большой |
Малый |
желобок |
|
|
желобок |
Малый |
|
|
|
желобок |
Желобок
РИС. 1.8. |
В-ДНК |
|
А-ДНК |
|
|
Z-ДНК |
|||
|
|
|
|
|
|
|
|
||
Пространственные модели В-, А- и Z-ДНК (каждая из |
му остова Z-ДНК. А-ДНК короче и толще, а Z-ДНК чуть |
||||||||
моделей содержит 20 пар оснований). Атомы фосфора |
длиннее и тоньше, чем В-ДНК. В А-ДНК большой |
||||||||
и |
связанные с |
ними атомы |
кислорода |
изображены |
желобок более глубокий, но зато малый уплощен и |
||||
в |
виде темных |
шариков, атомы азота–в |
виде |
слегка |
напоминает обвитую по поверхности ленту. У Z-ДНК |
||||
затененных шариков. Сплошная линия, соединяющая |
желобок только один, он чуть глубже, чем большой |
||||||||
фосфатные группы, показывает ход полинуклеотидной |
желобок у В-ДНК, но не такой глубокий, как у А-ДНК. |
||||||||
спирали. Обратите внимание на зигзагообразную фор- |
(С любезного разрешения A. Rich.) |
||||||||
и пиримидиновых нуклеотидов, принимают форму |
длиной молекулы ДНК и массой одной небольшой |
||||||||
левой спирали. При этом расстояние между сосед- |
хромосомы (табл. |
1.3). Так, молекулы ДНК единст- |
|||||||
ними парами оснований увеличивается до 0,77 нм, |
венных хромосом, из которых состоят геномы бак- |
||||||||
а число пар на один виток–до 12. Остов молекулы |
териофагов λ и Т4, а также адено- и герпесвирусов, |
||||||||
ДНК имеет зигзагообразный вид, поэтому подоб- |
имеют длину, соответствующую числу пар осно- |
||||||||
ная форма получила название Z-ДНК. Вопрос о |
ваний в одной хромосоме, составляющей геном |
||||||||
том, существует ли Z-ДНК в естественных условиях |
каждого |
из |
этих |
вирусов. Полный геном E.coli |
|||||
и |
образуется |
ли она в определенных участках |
(~ 4•106 |
п.н.) |
также представлен единственной |
||||
В-спирали под действием специфических белков, |
молекулой ДНК и имеет длину 1,4 мм. Есть все |
||||||||
способных переводить В-форму в Z-форму, сейчас |
основания считать, что каждая из хромосом дрож- |
||||||||
интенсивно исследуется (гл. 8, разд. 8.7). |
|
жей, Drosophila и даже человека состоит из одной |
|||||||
|
|
|
|
|
|
молекулы ДНК размером от нескольких десятков |
|||
|
г. Размер молекул ДНК |
|
тысяч до многих миллионов пар нуклеотидов. |
||||||
|
|
|
|
|
|
||||
|
Обычно размер молекулы ДНК выражается в |
д. Разнообразие форм ДНК |
|||||||
|
|
|
|
|
|||||
числе пар нуклеотидов, при этом за единицу берется |
Существовавшее до недавнего времени мнение |
||||||||
тысяча пар нуклеотидов (т.п.н.). Мол. масса одной |
о том, что В-ДНК–это совершенная двойная спи- |
||||||||
т.п.н. В-ДНК равна в среднем 6,6•105, а ее длина |
раль, геометрия которой одинакова независимо от |
||||||||
составляет 340 нм. Если принять все необходимые |
нуклеотидной последовательности, в действитель- |
||||||||
меры, чтобы не разрушить |
ДНК при |
выделении, |
ности не совсем корректно. Детальный рентгено- |
||||||
и использовать мягкие методы измерения длины, то |
структурный анализ, построение моделей и термо- |
||||||||
обнаружится |
удивительное |
соответствие |
между |
динамические расчеты показали, что плоскости со- |
|
|
|
1. МОЛЕКУЛЫ ГЕНЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА |
|
|
45 |
|
||||||||
Таблица 1.3. Молекулярная масса, длина и тип структуры ДНК различного происхождения |
|||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Источник |
|
|
Мол. масса |
|
Длина |
|
|
Число пар |
|
|
Тип структуры |
|
|
||
|
|
|
|
|
оснований |
|
|
|
|
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||
Бактериофаг |
φХ174 |
|
1,6•106 |
|
|
1,6 мкм |
|
5•1031) |
|
|
Кольцевая одноцепочечная |
||||
SV40 |
|
|
3,5•106 |
|
|
1,1 мкм |
|
5,2•103 |
|
|
Кольцевая двухцепочечная |
||||
Бактериофаг Т2 |
|
1,2•108 |
|
|
50 мкм |
|
2•105 |
|
|
Линейная двухцепочечная |
|||||
Хромосома |
Hemophilus |
influenzas |
7,9•108 |
|
|
300 мкм |
|
1,2•106 |
|
|
Неизвестен |
|
|
||
Хромосома Escherichia |
coli |
2,6•109 |
|
|
1 мм |
|
|
4•106 |
|
|
Кольцевая двухцепочечная |
||||
Saccharomyces cerevisiae |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Хромосома 1 |
|
1,4•108 |
|
|
50 мкм |
|
2,1•105 |
|
|
Линейная двухцепочечная |
|||||
Хромосома 12 |
|
1,5•109 |
|
|
500 мкм |
|
2,2•106 |
|
|
То же |
|
|
|||
Drosophila melanogaster |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Хромосома 2 |
|
4•1010 |
|
|
15 мм |
|
|
6,0•107 |
|
|
» |
» |
|
|
|
Хромосома 3 |
|
4,2•1010 |
|
16 мм |
|
|
6,3•107 |
|
|
» |
» |
|
|
||
Хромосома 4 |
|
4•109 |
|
|
1,5 мм |
|
6•106 |
|
|
» |
» |
|
|
||
1) В данном случае указано число оснований, а не пар оснований. |
|
|
|
|
|
|
|
||||||||
|
|
|
|||||||||||||
седних пар оснований не строго параллельны. Каж- |
структура, то как кольцо с разрывами. По-види- |
||||||||||||||
дая комплементарная пара оснований является как |
мому, никакого верхнего предела для размера |
||||||||||||||
бы клином, отклоняющим ось спирали в одном или |
кольцевой двухцепочечной молекулы ДНК не су- |
||||||||||||||
в другом направлении. Наибольший «крен» наблю- |
ществует. |
|
|
|
|
|
|
|
|||||||
дается тогда, когда два соседних аденина в одной |
ДНК |
в клетке |
обычно |
находится в |
комплексе |
||||||||||
цепи спарены с двумя тиминами другой. В этом |
с белками (см. разд. 1.1.ж). Связанный белок слегка |
||||||||||||||
месте происходит локальное искривление спирали. |
раскручивает спираль ДНК, соответственно и число |
||||||||||||||
Если такие пары встречаются с периодичностью |
витков спирали на единицу длины становится |
||||||||||||||
примерно один раз на 10 пар (т.е. один раз на |
меньше, чем у свободной В-ДНК. При удалении |
||||||||||||||
каждый виток спирали), то молекула ДНК приоб- |
белка восстанавливается обычное число правоза- |
||||||||||||||
ретает заметно искривленную форму. Искривлен- |
крученных (положительных) витков спирали. В |
||||||||||||||
ная, или изогнутая, структура была, например, |
линейной молекуле ДНК это происходит доста- |
||||||||||||||
обнаружена в линейных фрагментах ДНК кине- |
точно легко, поскольку обе цепи свободно вра- |
||||||||||||||
топластов |
трипаносомы Leishmania |
tarentolae |
по |
щаются одна вокруг другой. В замкнутой же коль- |
|||||||||||
аномально малой подвижности этих фрагментов при |
цевой молекуле общее число витков спирали тополо- |
||||||||||||||
электрофорезе в полиакриламидном геле. Изгибы |
гически фиксировано, и число оборотов одной цепи |
||||||||||||||
в молекуле ДНК наблюдаются в тех участках |
вокруг другой не может быть изменено без ком- |
||||||||||||||
последовательности, где с необычно высокой час- |
пенсаторного образования витков противополож- |
||||||||||||||
тотой встречаются |
повторы |
(А•Т)5–6 |
, разделен- |
ного знака где-нибудь в другом месте молекулы. |
|||||||||||
ные GC-богатыми участками из четырех-шести |
Итак, когда естественные кольцевые дуплексы осво- |
||||||||||||||
нуклеотидов. Биологическая роль искривления ДНК |
бождаются от белков, с которыми они часто бы- |
||||||||||||||
окончательно не установлена. Предрасположен- |
вают связаны in |
vivo, |
|
происходит |
следующее: |
||||||||||
ность к такому изгибанию, зависящая от последо- |
1) число правозакрученных (положительных) вит- |
||||||||||||||
вательности оснований, может иметь значение при |
ков спрали возрастает до величины, характерной |
||||||||||||||
наматывании молекулы ДНК на гистоновые окта- |
для В-ДНК; 2) в самом дуплексе образуется |
||||||||||||||
меры в хроматине (разд. 1.1.ж). Возможно, изги- |
столько же витков противоположного знака, чтобы |
||||||||||||||
бание ДНК существенно и при специфическом свя- |
компенсировать увеличение скрученности спирали. |
||||||||||||||
зывании ДНК с белками в процессе регуляции |
О таких молекулах говорят, что они обладают |
||||||||||||||
экспрессии генов. |
|
|
|
|
|
отрицательной сверхспиральностью (рис. |
1.10). При |
ДНК может находиться в линейной или коль- |
внесении одного разрыва в сверхспиральную коль- |
цевой форме (рис. 1.9). Бактериальные плазмиды, |
цевую ДНК сверхспиральность снимается и коль- |
хромосомы некоторых бактерий, большинство ми- |
цевая структура переходит в релаксированное со- |
тохондриальных и хлоропластных ДНК, геномы |
стояние, при котором топологические ограничения |
вирусов млекопитающих представлены единствен- |
отсутствуют. Любые химические или физические |
ной ковалентно замкнутой кольцевой дуплексной |
изменения, приводящие к уменьшению числа витков |
молекулой ДНК. Хромосома бактериофага λ на |
спирали на молекулу, уменьшают или вообще сни- |
разных стадиях жизненного цикла существует то как |
мают отрицательную сверхспиральность в замкну- |
линейная молекула, то как замкнутая кольцевая |
той кольцевой ДНК. |

46 |
ЧАСТЬ I. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ОСНОВЫ НАСЛЕДСТВЕННОСТИ: ОБЗОР |
А |
Б |
РИС. 1.9.
Схематическое представление и электронные микрофотографии линейной (А) и кольцевой (Б) двухцепочечной ДНК фага λ. (Электронные микрофотографии любезно предоставлены L. Chow.) ДНК изображена в виде двойной спирали; такое же изображение для двухцепочечной ДНК будет использоваться повсюду в этой книге.
Не все ДНК in vivo являются двухцепочечными. Геномы некоторых мелких вирусов бактерий, растений и животных представляют собой ковалентно замкнутые кольца, состоящие только из одной цепи (рис. 1.11). Все известные одноцепочечные кольцевые ДНК относительно малы: ДНК бактериофагов φХ174 и М13 содержат примерно 5300 и 6000 нук-
леотидов соответственно и имеют длину 1,5–2 мкм; длина молекул ДНК парвовирусов животных и некоторых вирусов растений составляет 2/3 и 1/2 указанных величин соответственно. Однако для репликации любой из этих вирусных ДНК совершенно необходимо превращение одноцепочечного кольца в соответствующее двухцепочечное, из ко-
Кольцо |
Частично |
|
с разрывом |
||
денатури- |
||
в одной цепи |
||
рованное |
||
|
||
|
кольцо |
Сверхспиральное
кольцо
А
РИС. 1.10.
А. Схематическое изображение сверхспиральной кольцевой ДНК и релаксированных кольцевых форм, полученных либо в результате разрыва одной из двух цепей, либо в результате локального расхождения двух цепей.
Б
Б. Двухцепочечная кольцевая ДНК фага М13 с разной степенью сверхспиральности. Цифрами обозначено число сверхвитков в каждой молекуле. (С любезного разрешения L. Chow.)

1. МОЛЕКУЛЫ ГЕНЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА |
|
|
47 |
|||
Одноцепочечная |
|
|
|
|
|
|
|
|
Нагревание |
Нагревание |
Нагревание |
||
Двухцепочечная |
|
Охлаждение |
Охлаждение |
Охлаждение |
||
Одноцепочечная |
|
|
|
|
|
|
|
Нативная |
Частично |
|
Почти полностью |
||
|
ДНК |
|
денатурированная |
денатурирования |
||
Двухцепочечная |
А |
|
ДНК |
|
|
ДНК |
|
|
|
|
|
||
|
|
|
|
|
|
РИС. 1.11.
Электронные микрофотографии одно- и двухцепочечных кольцевых ДНК фага М13. Двухцепочечная ДНК выглядит более гладкой и вытянутой и ее легче визуализировать, чем одноцепочечную. (С любезного разрешения L. Chow.)
торого затем образуются одноцепочечные кольцевые ДНК вирусного потомства (гл. 2). Более того, экспрессия генетической информации в таких геномах всегда осуществляется в фазе двухцепочечной ДНК, поскольку именно она является субстратом для транскрипции последовательности ДНК в РНК.
Степень денатурации ДНК
е. Денатурация и ренатурация ДНК
Водородные связи и межплоскостные взаимодействия, стабилизирующие двойную спираль, достаточно слабы, и при относительно небольших воздействиях происходит разделение цепей–про- цесс, именуемый денатурацией, или плавлением
(рис. 1.12, А). Двухцепочечная спиральная ДНК в растворе легко разрушается при нагревании до температур, близких к 100°С. Денатурация происходит также при увеличении рН раствора до уровня, при котором разрушаются водородные связи между основаниями. Многие факторы (например, одно- и двухвалентные катионы, полиамины и белки)
РИС. 1.12.
А. Денатурация (диссоциация) двухцепочечной ДНК при повышении температуры раствора и ренатурация (реассоциация) двух комплементарных цепей при охлаждении. Б. Кривые денатурации типичной двухцепочечной ДНК, получаемые при повышении температуры и рН. Тт и рНm - это значения температуры и рН соответственно, при которых ДНК денатурирована (или ренатурирована) наполовину.
Температура
Степень денатурации ДНК
Б |
pН |

48 |
ЧАСТЬ I. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ОСНОВЫ НАСЛЕДСТВЕННОСТИ: ОБЗОР |
Низкая |
Высокая |
концентрация |
концентрация |
соли |
соли |
Гуанин + Цитозин, %
Tm,°C
РИС. 1.13.
Зависимость Tm от молярного содержания гуанина и цитозина в ДНК при низкой и высокой концентрации соли. Точки отвечают индивидуальным ДНК бактерий, бактериофагов, дрожжей, растений и животных. [J. Marmur, P. Doty, J. Mol. Biol., 5 (1962), p. 109.]
влияют на денатурацию, нейтрализуя частично или полностью отрицательно заряженные фосфатные группы остова молекулы. Интервал значений тем-
Плавное изменение
РИС. 1.14.
Ренатурация комплементарных цепей ДНК при плавном (слева) и резком (справа) понижении температуры или рН раствора.
пературы или рН, при которых происходит разделение цепей, очень невелик (см. рис. 1.12, Б, где Тт и рНm – средняя точка перехода). Поскольку для разрушения двух водородных связей АТ-пар требуется меньше энергии, чем для разрыва трех водородных связей GС-пар, значения температуры и рН, при которых происходит денатурация, зависят от нуклеотидного состава ДНК. Чем выше содержание GС-пар, тем выше Тт или рНm (рис. 1.13).
Денатурация–процесс обратимый, последующее восстановление двухцепочечной структуры ДНК может происходить даже при полном расхождении цепей. Процесс воссоединения, называемый ренатурацией, реассоциацией или отжигом, происходит при понижении температуры или рН (рис. 1.12). Если температура или рН понижаются постепенно, то цепи соединяются правильно, с восстановлением всех исходных пар оснований. При резком понижении температуры или рН правильное воссоединение комплементарных цепей затрудняется из-за спаривания оснований локально комплементарных участков в пределах одной или разных цепей (рис. 1.14). Диссоциация (денатурация) и реассоциация (ренатурация) ДНК в растворе являются по сути искусственным воссозданием процессов, играющих ключевую роль в реализации разнообразных биологических функций in vivo. Очень важным для дальнейшего изложения представляется то, что способность двух отдельных комплементарных цепей нуклеиновой кислоты воссоединяться с образованием исходной структуры является ключевым моментом для проведения соответствующих опы-
Резкое изменение