- •«Химия» нуклеиновых оснований и днк.
- •Общее строение и функция аминокислот и белков
- •Глюкоза — это:
- •4. Сравнительный анализ строения основных классов органических веществ клетки (нуклеионовых кислот, аминокислот, липидов и сахаров).
- •Глюкоза — это:
- •5. Сравнительный анализ функций основных классов органических веществ клетки (нуклеиновых кислот, аминокислот, липидов и сахаров).
- •7. Функции семи основных функциональных групп органических соединений.
- •9. Схема основных реакций, приводящих к синтезу функционального белка ("от гена к белку").
- •10. Первичная, вторичная, третичная и четвертичная структура белка.
- •11. Транскрипция
- •12. Общая схема реакций трансляции белков и ее регуляция.
- •13. Транскрипция: передача информации о нуклеотидной последовательности днк на уровень рнк
- •15. Транскрипция днк в рнк
- •16. Генетический код, строение гена.
- •Генетический код и его свойства
- •19. Малые рнк (микро-рнк и др.), явление рнк-интерференции и его функциональная роль.
- •20. Принципы и методы выделения рнк и днк.
- •21. Нозерн-блот и гибридизация с днк-зондами.
- •22. Требования к выделению нуклеиновых кислот.
- •23. Разница в методических подходах для выделения различных типов полинуклеотидов.
- •24. Задачи и методы очистки нуклеиновых кислот.
- •25. Методика гель-электрофореза: принцип, анализ результатов и практическое применение.
- •26. Принцип и применение полимеразной цепной реакции (пцр).
- •27. Компоненты полимеразной цепной реакции (пцр). Компоненты реакции
- •28. Дизайн праймеров для пцр.
- •29. Выбор температуры ренатурации (отжига) для пцр. Отжиг
- •30. Предотвращение загрязнения и выбор числа циклов в пцр. Денатурация
- •31. Значение концентрации магния и выбор полимеразы.
- •Клонирование генов
- •33. Пцр при помощи обратной транскриптазы (rt-pcr).
- •Применение
- •34. Оптимизирование пцр (горячий старт, гнездовой, ступенчатый пцр и др.)
- •35. Количественный анализ нуклеиновых кислот при помощи пцр.
- •Спектрофотометрический анализ
- •Кюветы для анализа
- •Кюветы малого объема
- •36. Типы хозяев (хостов) для экспрессии и клонирования генов.
- •37. Генетические вектора: организация, типы и функции.
- •46. Основные методы генетической трансформации.
- •47. Принципы конструирования генов для их экспрессии в других видах.
- •48. Химеры.
- •49. Генетические кассеты.
- •50. Использование селективных маркеров, их типы.
- •51. Особенности трансформации клеток растений.
- •52. Химическая трансформация бактерий (не уверена, что это то, что надо)
- •53. Использование Ti-плазмид.
- •54. Принципы анализа протеома, протеомика.
- •55. Основные биоинфорационные "порталы" и принципы биоинформационного анализа.
- •56. Двухмерный электрофорез и масс-спектрофотометрия при анализе белков.
- •57. Принцип и применение maldi и esi для анализа белков.
- •58. Структурный анализ белков, принципы кристаллографии и наномагнитного резонанса.
- •59. Рекомбинантные белки и белковая инженерия растений.
- •60. Основы биоинформационного анализа. Алгоритм blast. Моделирование трехмерной структуры белков.
- •61. Гибридизация нуклеиновых кислот. Детекционные методы в молекулярной биологии.
- •Традиционное окрашивание геля:
- •Радиоактивная маркировкаи детекция
- •3. Флуоресценция на основе маркировки и детекции
- •62. Визуализация нуклеиновых кислот.
- •63. Перспективы прикладного использования генно-модифицированных растений.
- •65. Секвенирование днк.
- •66. Устройство геномов растений.
61. Гибридизация нуклеиновых кислот. Детекционные методы в молекулярной биологии.
Гибридизация – это способность одиночных цепей нуклеиновых кислот (ДНК, РНК) комплементарно спариваться между собой с восстановлением двухцепочечной структуры. При этом могут образовываться как комплексы ДНК-ДНК, так и комплексы ДНК-РНК.
Рис. 1. Гибридизация нуклеиновых кислот.
А - гибридизация ДНК-ДНК; Б - гибридизация ДНК-РНК.
Метод гибридизации нуклеиновых кислот может быть использован:
для нахождения числа определенных нуклеотидных последовательностей (генов) в ДНК, с высокой степенью точности позволяющей выявить один-единственный ген в клетке;
для выявления локализации определенных видов матричной РНК в клетках, что позволяет судить о дифференциальной активности генов в эмбриогенезе и процессе дифференцировки в клетках эмбриона (популярной биологической моделью в таких исследованиях являются эмбрионы плодовой мушки дрозофилы);
для выявления транскрибируемых и нетранскрибируемых последовательностей в ДНК (подобный анализ результатов гибридизации ДНК:РНК позволил У. Гилберту выявить мозаичное строение генов у эукариот, что стало одним из крупнейших открытий в молекулярной биологии).
Эксперимент проводят следующим образом:
Двухцепочечную ДНК разогревают в соответствующем буфере. Из-за изменения внешних условий, водородные связи между комплементарными азотистыми основаниями становятся термодинамически невыгодными и цепочки расходятся.
Препарат денатурированных ДНК смешивают с другой денатурированной ДНК.
Препараты медленно охлаждают, при этом одноцепочечные ДНК отжигаются друг на друга (образуются водородные связи между комплементарными основаниями), при этом образуется «гибридная» молекула ДНК.
Детекционные методы в молекулярной биологии.
Традиционное окрашивание геля
Радиоактивная маркировка и детекция
Флуоресценция на основе маркировки и детекции
Традиционное окрашивание геля:
Окрашивание серебром и Окрашивание бромистым этидием
Окрашивание серебром
Фиксация (ТХУ) → Промывание → Пропитывание раствором AgNO3 → Промывание→ Восстановление Ag+ дo Ag формамидом в присутствии Na2CO3 и Na-тиосульфата→ Фиксация уксусной кислотой
Окрашивание бромистым этидием
Бромистый этидий — интеркалирующий агент, широко применяемый для выявления нуклеиновых кислот в молекулярной биологии, в частности, в случае ДНК электрофореза в агарозном геле.
Новое поколение краситилей в детекционном методе молекулярной биологии
SYBR Green I - краситель для прокраски гелей (ДНК)
Имеет:
Большую чувствительность. Предел обнаружения двухцепочечной ДНК на геле для SYBR Green I составляет 1-2 нанограмма на полосу для коротких синтетических олигонуклеотидов, до 20 пикограмм высокомолекулярной природной ДНК.
Большую специфичность в отношении двухцепочечной ДНК.
Совместимость с ферментами. SYBR Green I, будучи связанным с двухцепочечной ДНК, позволяет многим обычным рестриктазам (в том числе, Hind III и EcoR I) проявлять нормальную активность. Поэтому SYBR Green I не нужно отмывать от геля при последующей рестрикции или легировании ДНК в геле.
Большую безопасность. SYBR Green не показывает высокого уровня мутагенного действия.
SYBR Green II (РНК)
SYBR Green II окрашенных РНК флуоресцирует зеленым (максимум излучения на 521 нм)
Окрашивание с SYBR Green II не влияет на передачу РНК мембраны или последующую гибридизацию.
SYBR Green II не является избирательным для окрашивания РНК, но обладают более высоким квантовым выходом при связывании с РНК (~ 0,54), чем к двухцепочечной ДНК (~ 0,36).
SYBR золото
более широкий динамический диапазон.
Быстрое проникновение геля
Пятна и ДНК, и РНК в обычных нейтральной полиакриламидном и агарозном гелях и в денатурирующих гелях с использованием мочевины, глиоксаль или формальдегида.
может быть возбуждение в стандартном просвечивание на 300 нм.
не ингибирует большинство ферментативных реакций, кроме ПЦР. ПЦР является чувствительным к высокой концентрации красителя. Решения этой проблемы путем корректировки Mg 2+ концентрации или удаление с помощью осаждения этанолом.
очень дорогие
работает наиболее эффективно при рН 7-8,5
раствор стабильный 6 месяцев до 1 года при <= 20 ° C
