От авторов

Данный практикум по зоологии беспозвоночных предназначен для сту­дентов биологических факультетов университетов. Его создание продиктовано рядом обстоятельств: прежде всего отсутствием, нехваткой или физическим из­носом ранее изданных пособий. Так, классические лабораторные практикумы Е.Н. Павловского и СВ. Аверинцева изданы соответственно в 1938 и в 1947 годах и уже давно стали библиографической редкостью. Малый практикум по зооло­гии беспозвоночных А.А. Зеликмана, второе издание которого вышло в свет в 1969 году, в настоящее время в большинстве вузов имеется в ограниченном количестве. Практикум по зоологии беспозвоночных, подготовленный Е.Н. Фро­ловой с соавторами (1985) для студентов педагогических институтов, рассчитан на меньший объем курса, в нем недостаточно полно изложены некоторые те­мы, рассмотрение которых представляется важным или обязательным при под­готовке биологов с базовым университетским образованием. Кроме того, накоп­ленный за последнее время объем зоологических представлений по организации и систематике беспозвоночных животных требует внесения в учебные пособия определенных изменений и дополнений.

На кафедре зоологии Белорусского государственного университета на­коплен большой опыт по организации и проведению практикума по зоологии беспозвоночных. Основы его разработаны при непосредственном участии про­фессора Г. Г. Винберга еще в 1950-е годы и традиционно сохранялись и разви­вались его учениками. Наличие многолетнего опыта позволило нам взяться за столь ответственный проект, как написание нового лабораторного практикума по зоологии беспозвоночных для биологических факультетов университетов по специальности Н.04.01.00 — биология и Н.06.01.00 — экология. Объем дан­ного практикума рассчитан в соответствии с учебным планом на 74-78 часов.

В пособии с учетом современного состояния материального оснащения университетских кафедр сокращен объем работ с малодоступным или дорого­стоящим материалом. Вместо этих тем предлагаются альтернативные темы и объекты для изучения. По каждой группе модельных объектов даны рекомен­дации, позволяющие обеспечить занятия необходимым зоологическим матери­алом. В случаях, когда объем приводимого в пособии материала представляется чрезмерным, выделение сведений, обязательных для усвоения студентами, мо­жет быть скорректировано преподавателями.

В настоящем практикуме отсутствует изложение материала занятий, пред­усматривающих знакомство с таксономическим и эколого-морфологическим разнообразием некоторых групп животных (коралловые полипы, моллюски и др.). Такие занятия лучше всего вести на базе зоологического музея (если таковой имеется) или на основе зоологического коллекционного материала, которым располагает кафедра.

12

От авторов

В предлагаемом учебном пособии раздел по микроскопической технике и темы от простейших до червей всех групп включительно написаны доцен­том Е.С. Шалапенок, темы по моллюскам, членистоногим и иглокожим — доцентом СВ. Бугой.

В лабораторном практикуме использована современная классифика­ция беспозвоночных животных в соответствии со 2-м, переработанным из­данием «Жизни животных» под редакцией члена-корреспондента АН СССР Ю.И. Полянского (т. 1,1987 г.), кандидата биологических наук Р.К. Пастер­нак (т. И, 1988 г.) и академика АН СССР М.С. Гилярова (т. III, 1984 г.)

Учтены новые представления о системе по S. Westheide, R. Rieger.

Specielle Zoologie. l.Teil.

Gustav Fischer Verlag.

Stuttgart, Jena, New Jork. 1996.

Авторы весьма признательны Т. Л. Черкас за техническую помощь при подготовке рукописи и выражают благодарность коллегам за поддержку.

Технические средства изучения микроскопических объектов

Для изучения животных могут быть использованы различные ме­тоды. Наибольшую информацию о внешнем строении и функциони­ровании организмов мы получаем, изучая животное in vivo в обста­новке естественной или максимально к ней приближенной. Это легко удается осуществить во время летней учебной практики, но не всегда возможно в течение года в учебной лаборатории. Кроме того, если достаточно легко обеспечить изучение на лабораторном практикуме небольших водных беспозвоночных, то наземные виды могут быть ис­следованы лишь после их фиксации. Многие беспозвоночные живот­ные, прежде всего простейшие, так малы, что изучение их возможно только с помощью специальной микроскопической техники. С ее по­мощью также удается ознакомиться с деталями строения тканей и ор­ганов макрообъектов на препаратах срезов соответствующих структур.

Устройство оптических приборов и основные правила работы с ними должны быть хорошо усвоены каждым студентом.

Микроскопическая техника

Любой оптический прибор, позволяющий получить увеличенное изображение объекта, включает систему линз и устройства, облегчаю­щие пользование ими.

Самым простым оптическим прибором является ручная лупа (рис. 1). Основная ее часть — двояковыпуклая линза, вставленная в оправу с руч­кой. Увеличение, которое дает ручная лупа, обычно обозначено на ручке соответствующими символами 2^х, 5^х, 10^х.

Микроскоп

В составе микроскопа можно выделить три основных блока: меха­нический, осветительный и оптический (рис. 2).

Механический блок состоит из подковообразного или прямоуголь­ного основания (или ножки), колонки, рукоятки, предметного сто­лика и тубуса.

14 Технические средства изучения микроскопических объектов

Микроскоп

15

Рис. 1. Ручнаялупа: 7—двояковыпуклая линза; 2— оправа; 3— ручка

Рис. 2. Схема устройства микроскопа: / — основание; 2 — колонка; 3 — микровинт; 4 — макровинт; 5— окуляр; 6 — тубус; 7— ре­вольвер; 8— объективы большого и малого увеличения; 9 — зажи­мы; 10 — предметный столик; 11 — диафрагма; 12 — конденсор Аббе; 13 — зеркало; 14 — винт конденсора

Основание микроскопа придает ему устойчивость. Наколонке закреплены предметный столик, устройства, обеспечивающие регулирова­ние работы оптического и осветительного блоков, и тубус. Рукоятка по­зволяет удобно переносить микроскоп и перемещать его на рабочем месте.

Предметный столик в микроскопах разных систем либо непо­движно фиксирован на колонке, либо подвижен и положение его мо­жет регулироваться с помощью двух крайних винтов на задней стороне столика, обращенной к исследователю. Средний винт закрепляет верх­нюю часть предметного столика, в центре которой расположено отвер­стие, обеспечивающее прохождение потока световых лучей к изучаемому объекту.

На тубусе снизу привинчивается револьвер — подвижная кон­струкция с ячейками для сменных объективов, сверху — окуляр.

Осветительный блок включает зеркало, расположенное у основа­ния микроскопа, и конденсор.

Зеркало имеет плоскую и вогнутую поверхности и укреплено таким образом, что может вращаться в двух взаимно перпендикуляр­ных плоскостях. Это позволяет ориентировать зеркало на источник света, находящийся в любом месте. Поток световых лучей, отражаясь от зеркала, проходит через отверстие (прорезь) в предметном столике и направляется на объект и в оптическую систему.

Для лучшей освещенности объекта, концентрации лучей, идущих от зеркала, между ним и предметным столиком расположен конден­сор Аббе, представляющий собой дополнительную систему линз и снабженный ирисовойдиафрагмойи сменными светофильтра-ми (матовым и синим). Все эти устройства позволяют регулировать освещение поля зрения микроскопа в зависимости от характера изу­чаемого объекта, его окраски и плотности. Перемещение конденсора вверх и вниз вдоль колонки осуществляется с помощью нижнего (или переднего, расположенного ближе к зеркалу) винта.

Оптический блок состоит из окуляра и объектива, укрепленных на концах тубуса.

Окуляр вставляется в верхнюю часть тубуса. Он представляет со­бой короткую трубку с вмонтированными в нее линзами. Увеличение окуляра в рабочем учебном микроскопе чаще всего 10- или 15-крат­ное (10^х, 15^х).

Объективы закрепляются в гнездах револьвера и легко сменяются при микроскопировании поворотом револьвера. Установка нужного

16 Технические средства изучения микроскопических объектов

Микроскоп

17

объектива над объектом и фиксация его положения контролируется характерным щелчком. Чаще всего используются два объектива: объек­тив малого увеличения (8")и объектив большого увеличе­ния (40^х). Первый — тонкий, более короткий, второй — массивный. Для получения больших увеличений применяют 90-кратный (90^х) объектив.

Кратность увеличения объектов микроскопом при использова­нии разных объективов и окуляров приведена в табл. 1.

Таблица 1

Объективы

Окуляры

7^х 10^х 15^х

8^х 40^х 90^х (иммерсия)

56	280	630
80	400	900
120	600	1350

Фокусировка (наведение на резкость) регулируется двумя винтами, укрепленными на колонке. Изменением расстояние между изучаемым объектом и объективом достигается наилучшая резкость изображе­ния. Для быстрого изменения этого расстояния используется боль­шой винт (макровинт), для более тонкой регулировки — малый, или микровинт. Макровинт обеспечивает движение колонки с ту­бусом и оптикой вдоль зубчатки (кремальеры). Движением винта от себя (по часовой стрелке) мы опускаем всю систему, движением на себя (против часовой стрелки) поднимаем ее.

Правила работы с микроскопом

1. Установка микроскопа на рабочем месте является важным условием успешной работы. Микроскоп следует поставить, ориен­тируя его для наблюдения левым глазом, на расстоянии около 3 см от края стола.

2. Перед работой необходимо протереть все внешние части микро­скопа, не вынимая окуляр.

3. Для обеспечения максимального движения предметного столика (и препарата) перед началом работы с микроскопом следует центрировать предметный столик, т.е. движением винтов привести его в положение,

при котором линза конденсора располагается точно посередине отвер­стия предметного столика. Центрировать предметный столик нужно и в процессе работы, и после ее окончания.

4. Освещение поля зрения проводится следующим образом. При изучении зоологических подвижных объектов лучше использовать вогнутое зеркало, предварительно подняв конденсор вверх до упора. Наилучшее освещение дает рассеянный дневной свет, но можно ис­пользовать и другие источники света. Следует помнить, что нежела­тельно слишком яркое и с бликами освещение поля зрения, беспокоящее живые объекты и опасное для зрения исследователя. Поле зрения долж­но быть освещено равномерно. При обнаружении в нем темных зон следует проверить положение револьвера и частей конденсора. При изучении прозрачных или бесцветных объектов поле зрения следует притенить, прикрыв диафрагму или опустив конденсор. При рассмо­трении темных, интенсивно окрашенных объектов, диафрагму нуж­но открыть.

5. Фокусировка изображения. Используя постоянный или изго­товив временный препарат, помещают его на предметный столик.

Начинать работу нужно с изучения объекта при малом увеличе­нии, поэтому, приступая к работе и закончив ее, следует поставить микроскоп на малое увеличение. Понять необходимость выпол­нения этого требования можно, если наблюдать изменения расстояния между нижним концом объектива и препаратом при повороте револь­вера и смене объектива малого увеличения (10^х или 15^х) на большое (40^х). Исходное положение объектива малого увеличения ~1 см от ниж­него его края до препарата.

Исследуя объект, основную информацию о нем можно получить при малом его увеличении, при котором оптимальны освещенность и резкость. Переходя на большое увеличение, мы выигрываем в разме­рах объекта, но значительно проигрываем в четкости общей картины.

При малом увеличении фокусировка (наведение на резкость) осу­ществляется с помощью макровинта под постоянным контролем глаза, т.е. не отнимая глаза от окуляра. Добившись необходимой резкости (грубая наводка макровинтом), окончательную доводку фокусировки выполняют микровинтом. При хорошей грубой наводке движение микровинта в одну или другую сторону (от себя или к себе) не должно превышать двух полных оборотов. В противном случае следует снова использовать макровинт. Это особенно важно при работе с большим увеличением, когда расстояние от края объектива до препарата очень

18 Технические средства изучения микроскопических объектов

Микроскоп бинокулярный стереоскопический (МБС) 19

мало. При большом увеличении следует пользоваться только микро­винтом, предварительно проведя грубую наводку при малом увели­чении, а затем поворотом револьвера установив большое увеличение. Закончив изучение препарата при большом увеличении, микроскоп следует сразу перевести на малое увеличение.

При работе с объективами разного увеличения нужно помнить два важных обстоятельства.

Во-первых, микроскоп дает плоскостное изображение объекта. Поэтому при большом увеличении мы видим четко очень тонкую плоскость, все, что выше или ниже ее, видно неясно, и нужно посто­янно работать микровинтом, чтобы рассмотреть все структуры. При объективе малого увеличения исследуемая плоскость толще и часто позволяет отчетливо видеть весь объект.

Вторая особенность работы при разных увеличениях связана с освещением. Маленькое входное отверстие и свойства линз объек­тива большого увеличения пропускают очень узкий пучок световых лучей, поэтому при переходе с малого на большое увеличение мы зна­чительно теряем в интенсивности освещения объекта. Необходимо открыть диафрагму конденсора.

6. Перемещение препарата на предметном столике при малом увели­чении осуществляется вручную. Определенную трудность представляет то, что оптическая система микроскопа дает обратное изображение. Нужна определенная сноровка, чтобы усвоить: все, что мы видим сверху, на са­мом деле расположено внизу, то, что справа, — находится слева, и нао­борот.

При переходе на большое увеличение движение препарата долж­но быть очень точным и проводится винтами предметного столика. Переходя с малого на большое увеличение, объект или его часть, ко­торую нужно изучить, необходимо предварительно движением пре­парата разместить в центре поля зрения малого увеличения и лишь после этого перевести на большое увеличение.

Микроскоп, как всякий точный прибор, требует бережного обра­щения. Протирать его, особенно линзы окуляра и объектива, изготов­ленные из мягкого, легко повреждаемого стекла, нужно осторожно, используя мягкие, много раз стиранные сухие полотняные салфетки. Нельзя использовать для очистки стекол спирт, т.к. это вызывает рас­творение специальных покрытий и помутнение оптики.

Нельзя самостоятельно развинчивать окуляры и объективы. Их повреждения может устранить только специалист.

Микроскоп бинокулярный стереоскопический (МБС)

Для изучения объемных организмов и наблюдения за движени­ем, питанием и другими формами поведения достаточно крупных (не микроскопических) животных, а также для их препарирования используются бинокулярные стереоскопические микроскопы малого увеличения (МБС). Они дают прямое изображение, имеют большое поле зрения, широкий диапазон разрешающих увеличений (табл. 2). С помощью МБС можно изучать прозрачные водные объекты в про­ходящем световом потоке и непрозрачные, темные — в отраженном свете. В настоящее время используются модели МБС-9 и МБС-10 (рис. 3).

Таблица 2 Кратность увеличения объектов бинокулярным микроскопом при использовании разных объективов и окуляров

					Окуляры
Объективы		6"		8"	12,5х	14"
0,6"	3,5		4,5		7	8,1
Iх	6		8		12,5	14,3
2"	12		16		25	28,6
4х	24		32		50	57,2
7х	42		56		88	100

Оптический блок МБС включает оптическую головку и окуляр­ную насадку.

В оптическую головку вмонтированы все оптические детали, включающие объектив микроскопа, выше которого установлен барабан с галилеевскими системами. Ось барабана заканчивается расположен­ными снаружи с двух сторон рукоятками, при вращении которых происходит переключение увеличений, значения которых нанесены на рукоятках (7^х, 4^х, 2^х, I^х, 0,6^х).

Чтобы установить нужное увеличение, необходимо, вращая ба­рабан, цифру на рукоятке совместить с точкой на подшипнике. При этом перефокусировку проводить не нужно. Положение барабана фиксируется щелчком. Фокусировка объектива оптической головки производится винтами на направляющей, с помощью которых поднимают или опускают головку относительно столика микроскопа.

20 Технические средства изучения микроскопических объектов

Изготовление препаратов для микроскопирования

21

крамальеры

Окулярная насадка состоит из двух призм, заключенных в по­движные оправы, на которых укреплены окулярные трубки. Двигая оп-швы призм, можно менять расстояние между центрами линз окулярных tdv6ok адаптируя их положение к межзрачковому расстоянию глаз исследователя.

Предметный столик съемный, устанавливается и закрепля­ется винтом на специальном основании. На задней стенке основания столика имеется гнездо для осветителя. Внутри основания располо­жено зеркало с матовой и зеркальной поверхностями и рукояткой для его вращения при регулировании освещения поля зрения.

Осветительная система, помимо зеркала, включает специальный осветитель, состоящий из конденсора и лампы накаливания, объе­диненных общим корпусом.

Изучение объекта возможно в отраженном и проходящем свете. Что­бы использовать осветитель для работы в отраженном свете, его крепят на шарнирном кронштейне. Для наблюдения в проходящем свете осветитель переносится в гнездо основания предметного столика.

В зависимости от структурных особенностей объекта (его плот­ности, прозрачности, окраски) отверстие предметного столика может закрываться стеклянной или металлической пластинкой, одна сторо­на которой окрашена в белый, другая — в черный цвет.

Изготовление препаратов для микроскопирования

Для изучения под микроскопом используют заранее изготовлен­ные постоянные препараты (их изготовление требует определен­ных навыков и времени) либо по ходу работы готовятся временные препараты. Материалом для них могут служить целые микроскопи­ческие или достаточно мелкие объекты (тотальные препараты) или части их тела.

При работе с микроскопом любой объект помещается на пред­метное стекло — стеклянную пластинку стандартного размера (76 х 26 мм). Очень немногие объекты рассматриваются сухими, чаще в капле воды или другой жидкости. Чтобы предохранить стекла объек­тивов от увлажнения, помещенный на предметное стекло в капле жидкости материал покрывается покровным стеклом. Его обычный размер 18 х 18 мм. Оно изготавливается из высококачественного сте­кла, очень тонкое и хрупкое.

22

Технические средства изучения микроскопических объектов

Рис.4.

Накладывание покровного стекла на объект

Покрывать каплю жидкости с исследуемым материалом нужно так, чтобы на препарате не остава­лись пузырьки воздуха. Для этого, держа покровное стекло за два угол­ка, противоположную его грань ста­вят в каплю жидкости и постепенно опускают стекло (рис. 4). Оставши­еся пузырьки легко отличить: они имеют широкий темный ободок, а поверхность их отливает зеркаль­ным блеском. Крупные пузырьки также имеют темное окаймление, а внутренняя их поверхность напо­минает запотевшее стекло.

Покрывая подготовленный временный препарат покровным стек­лом, необходимо учитывать объем изучаемого объекта, в противном случае он может быть деформирован или раздавлен тяжестью стекла. Во избежание этого на покровное стекло наносят восковые ножки. Обычный чистый пчелиный воск смешивается со скипидаром при подогреве (и тщательном соблюдении правил противопожарной бе­зопасности!) в пропорции 2,5:1. Такая масса может длительное время храниться, лучше в стеклянном бюксе или коробке. Перед исполь­зованием воск слегка разминают пальцами, чтобы он стал пластич­нее. Затем все четыре уголка покровного стекла, слегка царапая ими по комочку, снабжают восковыми ножками желаемой высоты и по­крывают объект на препарате, ориентируя покровное стекло ножками вниз.

Подцарство Protozoa — простейшие Тип Sarcomastigophora — саркомастигофоры

Тип объединяет более 25 000 видов простейших. Знакомству с его представителями в лабораторном практикуме по зоологии беспозво­ночных уделяется значительное внимание. В частности, предусмат­ривается ознакомление студентов с простейшими, принадлежащими к трем наиболее значимым подтипам: саркодовых, жгутиконосцев и опалинат.

Подтип Sarcodina — саркодовые

Изучение животных традиционно начинается с одноклеточных, а среди последних — с саркодовых. Наиболее удобным объектом явля­ется группа пресноводных амеб. Они малоподвижны, имеют доста­точно простое строение и легко культивируются в лабораторных усло­виях. Все это облегчает их изучение.

Представители подтипа в большинстве своем характеризуются амебоидным движением. Обитают в водной среде, почве, имеются па­разитические формы.

Надкласс Rhizopoda — корненожки

Объединяет организмы с псевдоподиями, не имеющими высоко-дифференцированных внутренних скелетных образований.

Класс Lobosea

Амебоидные формы с лопастевидными псевдоподиями (лобопо-диями), для которых не характерно слияние в сетевидные структуры.

Отряд АтоеЫпа — голые амебы

Материал. За 4—5 недель до начала работы с простейшими подго­тавливаются культуры для получения нужного материала. Водой из небольших стоячих или слабопроточных водоемов с гниющими

24

Тип Sarcomastigopho

«ласе Lobosea

25

растениями и илом заполняют сосуды объемом 0,5—1 л. Для отбора проб можно использовать планктонный сачок, которым проводят у дна, слегка взмучивая ил. Хороший материал может быть получен в во доемах с обильным развитием ряски и элодеи. После оседания ил в пробах воды из придонного слоя можно отыскать крупных АтоеЬ ' proteus. Для разведения амеб часто используется сенной настой. Для это­го луговое сено (2 гна 100 мл не кипяченой воды) кипятят 10—15 минуЕ в колбе и ставят в теплое место на 2—3 дня. На поверхности жидкости сенная палочка образует бактериальную пленку, бактерии служат пищей для амеб и инфузорий. Сенной настой подливают в банки с культурами простейших.

Хорошие результаты дает разведение простейших в чашках Петр на зернах риса (5—6 на чашку), залитых дождевой или отфильтро­ванной водой из естественных водоемов (в крайнем случае, отсто­явшейся водопроводной). На появляющихся вокруг зерен риса скоплениях бактерий, имеющих вид беловатого облачка, успешно размножаются амебы. Пересев культуры следует производить че­рез 1,5—2 месяца.

Отбирать амеб следует из поверхностной пленки либо из придон­ного слоя. Крупных амеб можно найти на нижней поверхности листьев растений. Для наблюдения за живыми амебами лучше использовать покровные стекла с восковыми ножками, которые препятствуют ги­бели животных ввиду сжатия стекол при подсыхании препарата. В по­следнем случае следует у края покровного стекла добавить каплю воды из культурального сосуда.

Изучение живого объекта. Начинать рассмотрение амеб следует при малом увеличении, предварительно притенив диафрагмой поле зрения микроскопа.

Наиболее подходящим видом и одновременно удобным объек­том для изучения является амеба-протей {Amoebaproteus) (рис. 5). Для нее характерны многочисленные длинные лопастевидные псевдо­подии, или ложноножки. Псевдоподии такого типа называются лобоподиями. Часто они составляют значительную часть тела аме­бы. Псевдоподии непрерывно меняют свои размеры и форму, могут исчезать или вытягиваться в направлении движения животного. Та­ким образом, форма тела амебы непостоянна.

В цитоплазме амебы четко выделяется светлый тонкий наружный однородный (гомогенный) слой — эктоплазма (лучше заметна при медленном вращении на пару оборотов вперед-назад микровинта

микроскопа). Она же образует тончайшую покровную мембрану — плазмалемму. Клетка, то есть тело амебы не имеет еще какой-либо оболочки, отсюда и название отряда — голые амебы. Внутренний гете­рогенный зернистый слой цитоплазмы — эндоплазма — содержит многочисленные включения. Внутренняя часть цитоплазмы называ­ется плазмазоль, периферическая — плазмагель. При рассмотре­нии клетки при большом увеличении хорошо заметны токи цитоплазмы в ее центральной части, где она менее вязкая, нежели в периферичес­кой. Постоянные токи цитоплазмы обеспечивают образование и изме­нение формы псевдоподий. При направленном движении амебы легко наблюдать перетекание цитоплазмы и переход плазмозоля в плазмо-гель и обратно. Такой тип движения этих простейших носит название амебоидного. Таким образом, псевдоподии амеб являются непосто­янными органеллами движения. Их число и форма различают­ся у разных видов амеб и являются важным систематическим приз­наком (рис. 5).

Питание амеб. Пищей амебам служат одноклеточные водоросли, бактерии, частицы органики. Для изучения питания амеб при изго­товлении временного препарата следует перенести на предметное стекло немного поверхностной пленки или небольшое количество осадка со дна культурального сосуда, где должно быть достаточно орга­ники и бактерий. На препарате можно наблюдать, как амеба обтекает пищевую частицу псевдоподиями и включает пузырек с нею в цито­плазму. Окруженная мембраной частица представляют собой пище­вую вакуоль. В нее из цитоплазмы поступают ферменты, и вакуоль становится пищеварительной.По завершении процесса пищева­рения и всасывания питательных веществ непереваренные остатки из вакуоли, называемой на этой стадии дефекационной, выводятся на­ружу. Как пищевые, так и дефекационные вакуоли образуются и опо­рожняются в любом месте клетки. Поэтому они рассматриваются как непостоянные пищеварительные органеллы.

Наблюдая за амебой последовательно при малом и большом уве­личении микроскопа, можно обнаружить сократительную или пуль­сирующую вакуоль. Она имеет вид небольшого прозрачного пузырька, который то медленно увеличивается, то резко уменьшается. При его сокращении через временную пору в эктоплазме наружу выбрасывает­ся избыточная вода с растворенными в ней углекислотой и продук­тами углеводного и азотного обмена. Удаление воды обеспечивает

26

Тип Sarcomastigophora

Класс Lobosea

27

Рис. 5. Голые амебы: А — амеба-протей (Amoeba proteus) (по Дофлейну): 1 — псевдоподии; 2— плазмалемма; 3 — эктоплазма; 4 — эндо­плазма; 5 — ядро; 6— пищеварительная вакуоль; 7— сократи­тельная вакуоль; Б — разнообразие внешнего облика предста­вителей группы (по Дофлейну): 1 — Amoeba Umax, 2— Pelomyxa binucleata; 3'—Amoeba proteus; 4—A. radiosa; 5—A. verrucosa; 6— A. polypodia

осморегуляцию, поддержание в клетке на необходимом уровне кон­центрации растворенных низкомолекулярных соединений, главным образом минеральных солей. Это главная функция сократительной вакуоли у пресноводных простейших. Вместе с водой из клетки

удаляются также растворенный углекислый газ (функция газооб­мена) и продукты диссимиляции (выделительная функция).

Ядро у живых амеб видно редко, так как оптическая плотность цитоплазмы и ядерного вещества (кариоплазмы) почти одинаковы. Лучше всего ядро различимо у Amoeba Umax. Оно выглядит как светлое пятно, но чаще маскируется включениями зернистой цитоплазмы. Поэ­тому ядро следует рассматривать на окрашенном тотальном препа­рате, обратив внимание на его центральное положение в клетке.

При длительном наблюдении или в период активного массового размножения можно наблюдать процесс бесполого размножения амеб делением (рис. 6).

5

Рис. 6. Стадии деления амебы (Amoeba polymorpha) при бесполом размножении: 1 — ядро; 2 — псевдоподии; 3 — эктоплазма; 4 — эндоплазма; 5 — сократительная вакуоль, 6 — митоти-ческое деление ядра