
- •Тема 1. Асептика в биотехнологических процессах
- •Элементы асептики в биотехнологии
- •I. Физические методы стерилизации
- •Экспериментальная часть
- •Расчетно-аналитическая часть
- •Контрольные вопросы
- •Литература
- •Тема 2. Метаболизм углеродсодержащего субстрата. Способы культивирования дрожжей на различных углеродных субстратах
- •Биохимические особенности роста микроорганизмов на углеродных субстратах
- •Стехиометрия процессов культивирования микроорганизмов
- •Формула биомассы микроорганизмов. Молекулярный вес биомассы (биомоль)
- •Экспериментальная часть
- •Подготовка посевного материала
- •Приготовление питательных сред
- •Построение калибровочного графика
- •Условия культивирования
- •Методы аналитических исследований
- •Расчетно-аналитическая часть
- •Контрольные вопросы
- •Литература
- •Тема 3. Ингибирование роста микроорганизмов в условиях периодического культивирования
- •Описание кинетики ферментативных реакций
- •Описание кинетики микробного роста
- •Экспериментальная часть
- •Расчетно-аналитическая часть
- •Контрольные вопросы
- •Литература
- •Расчетные задания к практическим занятиям
- •Примерные темы самостоятельных работ к семинарским занятиям
Экспериментальная часть
1. Провести короткое (до 12 часов) культивирование дрожжей р. Candida (Erwinia) на питательной среде (ПС) с различными начальными концентрациями углеродного субстрата (этанола): 0,1 %; 0,3 %; 0,5 %. Внесение остальных компонентов питательной среды проводить согласно указаниям в лабораторной работе 2.
Условия периодического культивирования с использованием перемешивающего устройства («качалки»): t = 36 oС, n = 220 об/мин.
По окончании лаг-фазы в начале экспоненциальной фазы роста (обычно через 1,5 часа для данных условий культивирования) добавить в среду ингибитор – 1 % раствор CuSO4×5Н2О. Провести 12 часовые контрольные (без ингибитора) и опытные (с ингибитором) ферментации.
Схема ферментации представлена ниже:
а) без ингибитора (контроль):
ПС (V = 200 мл) + 0,2 мл + 0,2 мл + этанол + 20 мл →
раствор раствор 2 мл посевной
микро- витаминов S=0,1 % материал
элементов S=0,3 %
S=0,5 %
внести в 9 качалочных колб по 20 мл в каждую колбу;
б) с ингибитором (опыт):аналогично а) + 0,5 мл 1% раствора CuSO4×5Н2О:
ПС(V = 200 мл) + 0,2 мл + 0,2 мл + этанол + 20 мл + 0,5 мл →
раствор раствор 2 мл посевной раствор
микро- витаминов S=0,1 % материал CuSO4×5Н2О
элементов S=0,3 %
S=0,5 %
внести в 9 качалочных колб по 20 мл в каждую колбу.
2. Для анализа роста биомассы определить оптическую плотность (D) образцов дрожжевых суспензий в контрольной и опытной ферментациях. Полученные экспериментальные данные позволяют построить кривые роста дрожжевой культуры D = f(τ) и определить из них логарифмическую фазу роста.
Расчетно-аналитическая часть
1. Построить кривые роста периодической культуры D = f(τ) и определить из них логарифмическую фазу роста.
2. Определить значения удельной скорости роста для логарифмической фазы роста (пользуясь тремя значениями для контрольных ферментаций и тремя – для опытных при трех различных концентраций субстрата).
3. Результаты свести в таблицу 3.1. (Значения концентрации субстрата (этанола) для построения зависимостей Лайнуивера-Берка следует представить в г/л с учетом плотности этанола 0,8 г/см3 при температуре 20 оС).
Таблица 3.1 – Экспериментальные данные и расчетные показатели серии ферментаций в методе острых опытов
№ пробы |
τ, час. |
Значения D* |
Значения µ, час -1 для логарифмической фазы роста |
S, г/л |
1/S |
1/µ |
||
без ингибитора |
с ингибитором |
без ингибитора |
с ингибитором |
|||||
Результаты ферментаций с начальной концентрацией этанола 0,1 % |
||||||||
1 |
0 |
|
|
|
|
|
|
|
2 |
3 |
|
|
|||||
3 |
6 |
|
|
|||||
4 |
9 |
|
|
|||||
5 |
12 |
|
|
|||||
Результаты ферментаций с начальной концентрацией этанола 0,3 % |
||||||||
1 |
0 |
|
|
|
|
|
|
|
2 |
3 |
|
|
|||||
3 |
6 |
|
|
|||||
4 |
9 |
|
|
|||||
5 |
12 |
|
|
|||||
Результаты ферментаций с начальной концентрацией этанола 0,5 % |
||||||||
1 |
0 |
|
|
|
|
|
|
|
2 |
3 |
|
|
|||||
3 |
6 |
|
|
|||||
4 |
9 |
|
|
|||||
5 |
12 |
|
|
* Значения D для 3,4 и 5 проб (6,9 и 12 часов ферментации соответственно) следует указывать с учетом разбавления проб в 10 раз (т.е. экспериментально измеренные значения следует умножить на 10)
Построить зависимости Лайнуивера-Берка (1/µ = f (1/S)) и графически определить тип ингибирования.
При построении графика экспериментальные значения аппроксимировать линейным многочленом (например, построить линейный тренд к точечному графику в MS Excel и показать уравнение тренда на графике-диаграмме).
1/µ
1/µ
1/µmax
1/µmax
1/µmax
K
K
1/S
K
1/S
конкурентное неконкурентное
ингибирование ингибирование
1/µ
1/µmax
K
K
1/S
смешанное
ингибирование
5. Графически либо пользуясь уравнением тренда, определить параметры уравнения Моно – µmax и K . Записать уравнения Моно с найденными значениями параметров для описания роста дрожжевой культуры в присутствии и в отсутствии ингибитора.