
- •Практикум по микробиологии Учебно-практическое издание
- •Содержание
- •Введение
- •Правила работы в микробиологической лаборатории
- •Ведение лабораторных записей
- •Методы микроскопического исследования микроорганизмов
- •Методы микроскопии
- •Морфология бактерий
- •Содержание лабораторной работы Задание 1. Приготовление препаратов для прижизненного исследования микроорганизмов
- •Задание 2. Приготовление фиксированного мазка микроорганизмов и изучение при помощи иммерсионной системы микроскопа
- •Задание 3. Изучение различных морфологических групп микроорганизмов
- •Контрольные вопросы
- •Наиболее часто используемые красители
- •Внутриклеточные включения
- •Клеточные структуры
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •1.3. Морфологические особенности и ультраструктура актиномицетов, спирохет, риккетсий, хламидий и микоплазм Цель занятия
- •Основные сведения
- •Контрольные вопросы
- •1.4 Морфологические особенности и ультраструктура микроскопических грибов и простейших Цель занятия
- •Основные сведения
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Условия культивирования микроорганизмов
- •Пищевые потребности микроорганизмов и требования к питательным средам
- •Классификация питательных сред
- •Этапы приготовления питательных сред
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Методы посева биологического материала
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Методы дезинфекции
- •Методы антисептики
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Морфологическая характеристика
- •Культуральные свойства
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •3.2. Физиолого-биохимические свойства микроорганизмов Цель занятия
- •Основные сведения
- •Физиологические особенности микроорганизмов
- •Биохимические свойства микроорганизмов
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •3.3. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам Цель занятия
- •Основные сведения
- •Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам методом дисков (диффузионный тест)
- •Количественное определение чувствительности бактерий к антимикробным препаратам методом серийных разведений.
- •Микротест–системы для определения чувствительности к антимикробным препаратам
- •Количественное определение чувствительности бактерий к антимикробным препаратам с помощью е–теста
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •3.4. Изучение патогенности и вирулентности микроорганизмов. Работа с лабораторными животными Цель занятия
- •Основные сведения
- •Бактериоскопические методы
- •Биохимические методы
- •Биологические методы
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •4.2. Микрофлора воды Цель занятия
- •Основные сведения
- •Микрофлора природных вод
- •Микробиологический анализ образцов воды
- •Гигиенические и санитарно-бактериологические требования к питьевой воде
- •Нормативы питьевой воды по микробиологическим показателям (СанПин 2.1.4.559-96.)*
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •4.4. Микрофлора воздуха Цель занятия
- •Основные сведения
- •Микробиологический анализ воздуха
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Микрофлора лекарственного сырья и готовых лекарств
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Методы оценки неспецифической защиты организма
- •Дифференцировка лимфоцитов на кластеры дифференциации по поверхностным cd-маркерам
- •Количественное содержание лейкоцитов в циркулирующей крови здоровых людей
- •Анализ функциональной активности т- и в-лимфоцитов
- •Определение концентрации иммуноглобулинов четырех основных изотипов
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •5.2.Методы оценки иммунного ответа Цель занятия
- •Основные сведения
- •Содержание лабораторной работы
- •Контрольные вопросы
- •Библиографический список
- •Состав наиболее часто используемых питательных сред
- •Для выращивания патогенных кокков
- •Для выращивания бактерий кишечной группы (одновременно являются дифференциально-диагностическими)
- •3. Для выращивания патогенных анаэробов
- •4. Для выращивания холерного вибриона
- •5. Для выделения возбудителя дифтерии
- •Для выявления сахаролитических свойств.
- •Среды для выявления протеолитических и гемолитических свойств.
Основные сведения
Иммунный ответ на инфекцию или иммунизацию вакцинными препаратами позволяет оценить функциональную активность иммунной системы в целом. Часто выявление той или иной формы специфического иммунного ответа на конкретный антиген позволяет ускорить диагностику заболевания. Оценку иммунного ответ проводят в двух направлениях:
- оценка гуморального иммунного ответа;
- оценка клеточного иммунного ответа.
Оценка гуморального иммунного ответа основана на выявлении и определении титра специфических антител в сыворотке крови и других биологических жидкостях. Наиболее информативным является определение титра антител в динамике инфекционного заболевания, так как именно нарастание титра антител свидетельствует о текущей инфекции. Диагностическое значение имеет определение принадлежности специфических антител к тому или ному изотипу иммуноглобулинов: для первичной инфекции наиболее характерно накопление антител изотипа IgM, а рецидив инфекции сопровождается преобладанием антител изотипа IgG.
а) Выявление нарастания титра антител в серологических реакциях с парными сыворотками больного. Сыворотки получают от одного и того же пациента в динамике инфекционного или вакцинального процесса (например, на 1-ой и на 3–4 неделе). Затем ставят реакции агглютинации, РНГА и РСК (при бактериальных инфекциях и вакцинации бактериальными вакцинами); РСК, РТГА и реакцию нейтрализации (при вирусных инфекциях и вакцинации вирусными вакцинами). Нарастание титра антитоксических антител оценивают с помощью реакции флоккуляции или нейтрализации токсинов. Диагностическое значение имеет 4-кратное и более увеличение титра антител.
б) Дифференцировку IgM и IgG проводят обычно с помощью РСК или РТГА. Метод основан на различной чувствительности иммуноглобулинов этих изотипов к действию 2-меркаптоэтанола, цистеина и других редуцирующих веществ, которые вызывают разрывы дисульфитных связей в молекулах IgM и их распад на субъединицы, лишенные антительной активности. При действии этих же веществ молекулы IgG сохраняют свою целостность и антительную активность. При дифференцировке IgM и IgG ставят серологическую реакция (РСК или РТГА) с двумя порциями сыворотки одного пациента: с нативной и обработанной 2-меркаптоэтанолом. Снижение титра специфических антител в исследуемой сыворотке в результате обработки 2-меркаптоэтанолом свидетельствует о первичном иммунном ответе. Дифференцировку IgM и IgG можно проводить и методом ИФА.
Клеточно-опосредованный иммунный ответ оценивается выявлением специфической сенсибилизации Т-лимфоцитов (с помощью кожно-аллергических проб) и с помощью реакции торможения миграции лейкоцитов:
а) Кожно-аллергическая проба. В основе положительной кожной пробы лежит клеточная реакция гиперчувствительности замедленного типа. При внутрикожном введении небольшого количества антигена (туберкулина при туберкулезе, бруцеллина при бруцеллезе) в положительном случае наблюдается покраснение, припухание и уплотнение (инфильтрат) на месте введения через 24–48 часов. Положительная реакция свидетельствует о текущем или прошлом инфицировании микроорганизмом, которое привело к формированию в организме клона Т-лимфоцитов, способных распознавать его антигены и активироваться. Положительная кожная проба может быть и результатом эффективной вакцинации против соответствующей инфекции.
б) Реакция торможения миграции лейкоцитов. В основе метода лежит способность лимфоцитов после повторного контакта с анигеном, к которому они ранее были сенсибилизированы, продуцировать различные лимфокины, в том числе влияющие на миграцию индикаторных клеток (гранулоцитов, моноцитов, макрофагов). Реакцию торможения миграции лейкоцитов (РТМЛ) ставят в капиллярах или под слоем агарозы. Проводят инкубацию лейкоцитов крови в присутствии и в отсутствие причинного микробного агента, после чего измеряют зоны миграции (в %) в присутствии антигена по сравнению с контролем (принятым за 100 %). В случае выявления сенсибилизации к антигену наблюдается торможение миграции лейкоцитов (индекс ниже 100 %).