
- •35.Физико-химическое исследование порций желудочного сока:
- •36.Исследование кислотообразующей функции желудка:
- •2.Титрование по Тепферу:
- •37. Микроскопическое исследование желудочного сока:
- •38. Состав и функции желчи. Фракционный метод получения желчи, желчегонные средства, преимущества и недостатки.
- •40. Микроскопическое исследование порций желчи: приготовление препаратов, диагностическое значение элементов, встречающихся при микроскопии.
- •41.Общие св-ва фекалий в норме, патология:
- •42. Хим. Исследование фекалий: определение скрытой крови, стеркобелина, кдз.
- •44. Микроскопия каловых масс: кдз
- •45. Состав и функции крови. Гемопоэз. Периоды кроветворения.
- •46. Эритропоэз, морфология клеток ряда. ,функции эритроцитов, эритроцитоз, эритроцитопения.Кдз
- •47. Тромбоцитопоэз. Морфология клеток ряда. ,функции тромбоцитов, тромбоцитоз, тромбоцитопения. Кдз
- •48. Гранулоцитопоэз.,морфология клеток ряда ,виды специфической зернистости. Функции гранулоцитов в организме , норма.
23.ПРОБА ГАЙНЕСА-АКИМОВА
Принцип: реакция основана на свойстве глюкозы восстанавливать в щелочной среде гидрат окиси меди в гидрат закиси меди (желтый цвет) или закись меди (красный цвет). В состав реактива Гайнеса входит: сульфат меди, едкий натр, глицерин и вода.
Вариант 3: В пробирку набрать 6-8 мл мочи;Добавить 8-12 капель реактива и перемешать – окраска станет бледно-голубой;Нагреть верхнюю часть пробирки в пламени горелки НЕ КИПЯТИТЬ!;Учесть результат:
В присутствии глюкозы появляется желто-красная окраска в верхней части пробирки и бурая - в нижней.
ГЛЮКОТЕСТПринцип: в основе окисление глюкозы глюкозооксидазой. Образовавшаяся при этом перекись водорода разлагается ферментом пероксидазой и окисляет добавленный краситель О-толидин. Перед работой необходимо проверять годность.
Опустить тест-полоску в пробирку, так чтобы намокла индикаторная зона;
Вынуть полоску и выдержать 2 минуты;
Сравнить полученный цвет с эталонной шкалой;Учесть полученный результат.
Качественные пробы на глюкозу: проба Гайнеса и «Глюкотест» являются унифицированными методами. Определение глюкозы является обязательным методом исследования!
35.Физико-химическое исследование порций желудочного сока:
1.Общая кислотность - представляет собой все кислореагирующие вещества желудочного сока и состоит из свободной, связанной соляной кислоты и кислого остатка.
2.Свободная ск-это свободно диссоциированные ионы Н+ CL- в желудочном содержимом.
3.Связанная ск- кислота, которая находится в соединении с белками и продуктами их переваривания.
4.Дефицит ск- недостаточное содержание соляной кислоты в желудочном соке определяют в любой порции желудочного сока, кроме натощаковой,в которой отсутствует свободная соляная кислота.
5.для получения количественной характеристики кислотообразующей функции желудка исследуют абсолютную величину продукции соляной кислоты во времени- дебит-час соляной кислоты. Дебит-час свободной соляной кислоты- это количество свободной соляной кислоты,выработанной париетальными клетками за час.
36.Исследование кислотообразующей функции желудка:
1. титрование по Михаэлису:
-Реактивы: спиртовой раствор диметиламидоазобензола 5г/л
-Спиртовой раствор фенолфталеина 10г/л
-0,1 N NaOH
: в стакан наливают 5мл профильтрованного через 2 слоя марли сока, добавляют 1-2 капли смеси индикаторов. ТИТРИРУЮТ 0,1 N NaOH от красного цвета до цвета «семги»(оранжево-желтый) и определяют свободную соляную кислоту, каждый раз отмечая количество щелочи, прошедшее на титрование. Далее титрируют от цвета «семги» до лимонно-желтого. Продолжают титрировать до перехода цвета в стойкий розово-красный .Количество щелочи, прошедшее на все титрование, позволяет определить общую кислотность в присутствии фенолфталеина. Расчет проводят на 100 мл сока, поэтому количество щелочи, израсходованной на титрование, необходимо умножить на 20.Одна традиционная единица соответствует концентрации соляной кислоты в 1 ммоль/л.
2.Титрование по Тепферу:
Реактивы: спиртовой раствор диметиламидоазобензола 5г/л
-Спиртовой раствор фенолфталеина 10г/л
- Раствор ализарина С 10Г/л
-0,1 N NaOH
: исследование проводят в двух стаканах, в каждый наливают по 5 мл профильтрованного сока. В 1 стакан капают 1-2 капли смеси фенолфталеина и диметиламидоазобензола, а во второй ализарин С. Если в соке отсутствует свободная соляная кислота, то в первом стакане содержимое окрашивается в желтый цвет. Сок в первом стакане титруют 0,1 N NaOH от желтого цвета до стойко-розового, минуя лимонно-желтый цвет. Определяют общую кислотность ,умножая количество щелочи, пошедшей на титрование на 20. Свободная соляная кислота в этом соке равна 0. Во втором стакане титруют от желтого цвета до перехода в слабо-фиолетовый и определяют все кислореагирующие вещества, кроме связанной соляной кислоты, а затем высчитывают связанную.
Расчет показателей кислотности:
Дефицит:
Реактивы: 0,1 N NaOH, спиртовой раствор диметиламидоазобензола 5г/л
: к 5 мл профильтрованного сока добавляют 1-2 капли индикатора и титруют 0,1 N соляной кислотой до появления красного цвета. Полученное кол-во щелочи умножают на 20,определяют дефицит соляной к-ты.
Дебит:
Дϥ = (V₁E₁ + V₂E₂ + V₃E₃ + V₄E₄)× 0,001= ммоль/ч
Д-дебит-час свободной соляной к-ты в ммоль/ч
V - объем каждой порции в мл в базальную или стимулированную секрецию
E – концентрация свободной соляной к-ты в каждой 15-минутной порции ммоль/л
0,001 – количество ск в 1 мл желудочного сока при концентрации ее в 1 ммоль/л.