
- •Часть II
- •Электроёмкость биомембран. Определение электроёмкости конденсаторов
- •Блок информации
- •Биоэлектрические явления в живом организме. Регистрация биопотенциалов (бп). Потенциалы покоя (пп)
- •Блок информации
- •Моделирование биоэлектрической активности формального нейрона
- •Бюджет времени
- •Блок информации
- •Искусственные нейронные сети и нейрокомпьютеры
- •Блок информации
- •1. Нейрон и биологические нейронные сети.
- •2. Память - основное свойство нс и мозга.
- •3. Математические модели нс.
- •4. Искусственные нейронные сети
- •5. Основные представления о "Нейрокомпьютерах" – нэвм
- •Изучение регуляции работы мышц
- •Блок информации
- •Биофизика рецепций.
- •Закон вебера – фехнера
- •Блок информации
- •Измерение латентных периодов сенсомоторных реакций
- •Биофизика сложных систем в аспекте теории хаоса и синергетики
- •Блок информации
- •Изучение процессов фотосинтеза зеленых растений
- •Блок информации
- •Биофизика излучений. Методы регистрации активных радионуклидов. Изучение действия ультрафиолетового излучения на популяцию дрожжевых клеток
- •Блок информации
Изучение процессов фотосинтеза зеленых растений
Цель работы.
Обучаемый должен знать:
Механизмы поглощения света и трансформации энергии фотонов в химическую энергию биоструктур.
Основные этапы фотосинтеза световой и темновой фазы. Основные процессы, протекающие на мембранах гран хлоропластов.
Общебиологическое значение фотосинтеза в развитии биосферы на Земле.
Обучаемый должен уметь:
Экспериментально регистрировать процесс фотолиза воды.
Изучать влияние абиотических факторов (температуры и освещенности) на скорость фотосинтеза зеленых растений.
Практическое значение.
Процесс фотосинтеза обеспечивает усвоение солнечной энергии для синтеза органических соединений растений. Животные способны использовать только энергию, уже связанную в органические соединения, т.е. процесс фотосинтеза обеспечивает все энергетические потребности всех живых организмов Земли. Кроме того, кислород, выделяющийся при фотосинтезе, поддерживает состав атмосферы Земли.
Оборудование: лабораторная посуда, химические реактивы: растворы Ва(ОН)2, НСl, 4% СuSO, 1% K2Cr2O7, KMnO4, раствор фенолфталеина, часы, листы черной бумаги.
Объект исследования: веточки комнатных зеленых растений, веточки аквариумных растений – элодеи или валиснерии.
Бюджет времени
На изучение темы отводится 4 часов, из них 2 часа лабораторные занятия и 2 часа на самоподготовку.
ЛИТЕРАТУРА
1. Рубин А.В. Биофизика: В 2 кн.- М.: Высш. шк., 1987.- Кн. 2
2. Страйер Л. Биохимия: В 3 т.- М.: Мир, 1985.- Том 2
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО I ЭТАПУ
“САМОПОДГОТОВКА”
Цель этапа.
Повторить исходную информацию, необходимую для понимания изучаемой темы. Проверить качество усвоения новой информации (понятия и законы) перед выполнением работы.
I. Исходный уровень знаний.
Для изучения темы необходимо повторить:
Понятие фотосинтеза растительного и бактериального типа.
Понятие электронно-транспортной цепи.
II. Изучив блок информации и учебную литературу, обучающийся для самоконтроля должен ответить на следующие вопросы:
Дайте характеристику процессу фотосинтеза.
Объясните роль фотосинтеза в глобальных преобразованиях биосферы.
Какие факторы регулируют интенсивность и продуктивность фотосинтеза?
Каковы особенности фотосинтеза различных растений (водные и наземные)?
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО II ЭТАПУ:
“Выполнение лабораторной работы”
Цель этапа.
Изучить зависимость интенсивности процессов фотосинтеза от различных факторов окружающей среды (освещенность, спектральный состав света).
Для достижения цели необходимо:
I. Исследование влияния различной освещенности на интенсивность фотосинтеза.
Возьмите две конические колбы, предварительно выдержанные открытыми в течение 20- 30 минут в одинаковых условиях для заполнения воздухом. Срежьте веточку комнатного зеленого растения и поставьте ее в пробирку с водой, эту пробирку опустите в первую колбу (назовем ее опытной), а вторую колбу (назовем ее контрольной) оставьте пустой, затем обе колбы практически одновременно плотно закройте пробкой. Выставьте колбы на хорошо освещенное и теплое место. Время экспозиции 60 минут.
По окончании опыта извлеките растения из обеих колб одновременно, быстро закройте каждую колбу вновь пробкой с трубочкой. Налейте в каждую колбу по 20 мл раствора Ва(ОН)2 и добавьте по 2 капли раствора фенолфталеина. Оттитруйте полученные растворы в колбах раствором НСl. Интенсивность фотосинтеза определите по формуле:
,
где А- количество НСl в опытной колбе, В - количество НСl в контрольной колбе, К- поправка к титру НСl, 0,55- стандартная величина, Sх- площадь листа, t - продолжительность опыта в минутах, 60 - коэффициент перевода минут в часы.
Повторите опыт, но задайте иные условия освещенности. Например: поместите колбы в плохо освещенное, холодное место. Сравните полученные результаты и сделайте вывод о влиянии освещенности на интенсивность фотосинтеза.
II. Изучение влияния света на возможность фотосинтеза.
Возьмите три пробирки. В каждую налейте по 2 мл баритовой воды подкрашенной фенолфталеином. В две пробирки поместите веточку комнатного зеленого растения, третью оставьте контрольной. Все пробирки плотно закройте пробками. Одну изолируйте от света, плотно завернув в черную бумагу.
Время экспозиции 40 минут. По истечении времени возьмите пробирки в руку и хорошо встряхните их до тех пор, пока станут заметными изменения окраски раствора. Какие изменения произошли в двух опытных пробирках? Опишите эти изменения в тетради и объясните возможные причины этих событий.
III. Изучение влияния внешних условий на интенсивность фотосинтеза водных растений.
Привяжите веточку живой элодеи или валиснерии ниткой к стеклянной палочке и поместите ее в пробирку с водой. Добавьте в воду щепотку соды. Из срезанного листа водного растения начнут выделяться пузырьки воздуха, при подсчете которых судите об интенсивности фотосинтеза за определенный интервал времени. Подсчитайте количество пузырьков, выделившихся за 30 минут и запишите эти сведения в тетрадь.
Повторите опыт, но задайте при этом иные условия. Например, поместите пробирку в плохо или в хорошо освещенное место, подкрасьте воду 4% раствором СuSО4 в синий цвет или в красно-розовый 1% раствором дихромата или перманганата калия. Сравните полученные результаты и дайте им грамотное объяснение.