
- •«Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарёва»
- •Курсовая работа флуоресцентный анализ нейронов пиявки
- •«Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарёва»
- •Задание на курсовую работу
- •Реферат
- •Обозначения и сокращения
- •Содержание
- •Введение
- •Обзор литературы
- •Основные характеристики флуоресценции
- •1.1.1 Метод флуоресцентных зондов
- •Флуоресцентные зонды, используемые в биологии и медицине
- •Флуоресцеин
- •Хлортетрациклин
- •Родамин с
- •1.2 Общая характеристика медицинской пиявки
- •1.2.1 Нервная система медицинской пиявки
- •1.2.1.1 Сенсорные клетки
- •1.2.1.2. Моторные клетки
- •Материал и методы исследования
- •Материал исследования
- •Методы исследования
- •Приготовление препаратов. Растворы и реактивы
- •2.2.2 Приготовление раствора хтц и ф
- •2.2.3 Флуоресцентная спектроскопия
- •2.2.4 Метод оптического имиджинга на основе системы визуализации ivis® LuminaIi
- •Метод оптической микроскопии
- •Список использованных источников
Материал и методы исследования
Материал исследования
Объектом исследования были медицинские пиявки. Животных приобретали в аптеке (ул. М. Расковой г. Саранска) и содержали при комнатной температуре в чистой воде в прохладном месте в прозрачной фаянсовой) посуде, плотно завязанной полотном. Полезно положить в воду немного конского волоса, о который животные могут счищать слизь. Для содержания 10 червей требуется не менее литра воды. Через каждые 2—4 дня воду меняли, а посуду тщательно мыли. Пиявки способны голодать долгое время. Однако при длительном содержании их необходимо подкармливать сгустками свежей крови (полученной с бойни) или подсаживать к ним на время живую лягушку.
Материалом исследования служила цепочка нервных ганглиев, полученная путем препарирования пиявки.
Методы исследования
Приготовление препаратов. Растворы и реактивы
Используемые препараты представляли собой цепочки нервных ганглиев медицинской пиявки. Животное анестезировали с помощью 10%–го раствора этанола. Для выделения ганглиев пиявку вскрывали с брюшной стороны и очищали выбранный ганглий от сосудистой оболочки. Все операции проводились в растворе Рингера для беспозвоночных (NaCl 115 мМ, KCl 4 мМ, CaCl2 1,8 мМ, MgCl2 1 мМ, HEPES 10 мМ; рН 7,4; 200C). Эксперименты проводились при комнатной температуре (200С). Отпрепарированную цепочку ганглиев фиксировали на предметном стекле вентральной стороной вверх и накрывали покровным стеклом для проведения оптической и флуоресцентной микроскопии. Так же помещали в водный раствор Ф, затем отмывали в растворе Рингера и определяли уровень флуоресценции на системе визуализации IVIS® LuminaII.
2.2.2 Приготовление раствора хтц и ф
Для получения флуоресцентного изображения нервной цепочки нами было приготовлено два раствора флуоресцентных зонда, ХТЦ и Ф. Приготовили 30 миллилитров раствора Ф с концентрацией 1мМ,
V=0,03литра; Mr(флуоресцеина)=332,306г/моль; С=0,001; по формуле (1)
(1)
Где C– молярная концентрация, моль/л;
m – масса навески, г;
Mr – молекулярная масса;
V – обьем, л;
,
m=0,001г.
Приготовили 50 мл. раствора ХТЦ (Mr=478,88), с концентрацией 0,001. Для этого навеску массой 0,024г. Растворили в воде. Расчет по формуле (1)
2.2.3 Флуоресцентная спектроскопия
Для успешного применения флуоресцентных методов необходимо хорошее знание аппаратуры и умение обращать внимание на детали эксперимента. Для этого существуют две причины. Во-первых, флуоресценция — очень чувствительный метод. Почти всегда можно получать наблюдаемые сигналы, увеличив коэффициент усиления приборов. Однако эти сигналы могут быть обусловлены не только используемым флуорофором: наблюдаются сигналы фоновой флуоресценции растворителей, просачивающегося в прибор света, побочное рассеяние света от мутных растворов, рэлеевское или/и комбинационное рассеяние (названы лишь некоторые из помех). Во-вторых, идеальных спектрофлуориметров не существует. Из-за неоднородного спектрального состава источников света и зависимости чувствительности монохроматоров и фотоумножителей от длины волны на приборах нельзя получить истинных спектров возбуждения и испускания. На измерения интенсивностей флуоресценции могут влиять также поляризация и анизотропия испускаемого света. Поэтому для получения надежных спектральных данных надо постоянно осуществлять контроль за многочисленными факторами.
Флуоресцентная спектроскопия - весьма чувствительный метод анализа химического состава образца, позволяющий обнаруживать следовые количества веществ и даже их отдельные молекулы. В качестве источников возбуждающего излучения особенно эффективны лазеры.
Существует ряд чувствительных методов, позволяющих регистрировать изменения, происходящие в исследуемых образцах под действием света. К ним, в частности, относятся индуцированная лазером флуоресценция, лазерная фотоионизация и фотодиссоциация. Оптико-акустический преобразователь измеряет поглощение модулированного света по интенсивности возникающей звуковой волны. Фотогальванические элементы контролируют ток в газовом разряде при исследовании заселенностей высоколежащих уровней, селективно возбуждаемых перестраиваемым лазером.
Изучение флуоресценции обычно производится при помощи перестраиваемых лазеров непрерывного излучения. Перестраиваемость лазеров на красителях или лазеров на титан-сапфире с удвоением частоты расширяет экспериментальные возможности изучения непрерывной флуоресценции. Для изучения широкополосной флуоресценции в твердых и жидких образцах обычно удобны ширины линий от2 до 400 ГГц [27].