1.4. Иммунитет

Постинфекционный иммунитет после брюшного тифа и паратифов хаарктеризуется высокой напряжённостью и сохраняется длительно. Повторные заболевания наблюдаются редко.

К концу первой недели болезни в крови появляются агглютинины, преципитины, комплиментсвязывающие антитела, бактериолизины. Под влиянием этих антител происходит гибель бактерий с освобождением эндотоксинов и развитием основных симптомов заболеваний. Количество антител постепенно нарастает и достигает максимума на 14-15 день заболевания.

Постинфекционный иммунитетпищевы токсикоинфекций, вызванных сальмонеллой, непродолжителен и не обладает достаточной напряжённостью. В сыворотке крови больных и реконвалесцентов обнаружены агглютинины, преципитины, бактериолизины и другие антитела. Заболевания, вызванные одними сероварами, не создают невосприимчивости к другим, а перенесенная инфекция не исключает реинфекцию.

1.5. Схема бактериологического обследования больных

на тиф-паратифозную инфекцию.

Материалом для бактериологического исследования при подозрении на инфекцию сальмонеллезной этиологии служат кровь, испражнения, рвотные массы или промывные воды желудка, дуоденальное содержимое, моча, а в тех случаях, когда заболевание заканчивается летально,— секционный материал (кусочки паренхиматозных органов, кровь из сердца, желчь, мезентериальные лимфатические узлы, содержимое и отрезок тонкой кишки). Выбор материала для лабораторного исследования определяется характером развития инфекционного процесса.

Наиболее ранним и достоверным методом диагностики сальмонеллезов является выделение гемокультуры, поскольку бактериемия у больных возникает в конце инкубационного периода и сохраняется в течение всего периода лихорадочного состояния. Кровь для посева берут из вены локтевого сгиба в количестве 5—10 мл. Исследование испражнений при острых кишечных заболеваниях повторяют многократно; со дня поступления больного и до дня выписки его из стационара. Поскольку при сальмопеллезных инфекциях патологический процесс развивается в тонком кишечнике, пробы для бактериологического исследования следует брать из последней, более жидкой порции испражнений. В соответствии с этим для взятия материала не следует пользоваться ректальными трубками. При брюшном тифе интенсивное выделение бактерий начинается на 3-й неделе заболевания, так как в этот период патологический процесс и соответственно возбудитель заболевания сосредоточиваются в лимфатическом аппарате кишечника. Однако следует иметь в виду, что в дуоденальном содержимом тифопаратифозные бактерии обнаруживаются в l'/г—2 раза чаще, чем в испражнениях, поэтому естественно, что бактериологическое исследование желчи дает лучшие результаты, чем бактериологическое исследование кала. Зондирование производят в лечебных учреждениях по назначению лечащего врача. Пробы содержимого двенадцатиперстной кишки берут натощак. Примерно через 15 мин после введения дуоденального зонда начинает выделяться светлый дуоденальный сок — порция А. После этого в двенадцатиперстную кишку через зонд вводят 30—50 мл стерильного, слегка подогретого раствора сульфата магния, который вызывает сокращение и опорожнение желчного пузыря (порция В темно-зеленого или коричневого цвета) и выход желчи из желчных протоков (порция С светло-желтого цвета). Для бактериологического исследования используют порции В и С; они могут быть засеяны отдельно или же делают общий посев из смеси обоих порций.

Исследование рвотных масс и промывных вод желудка производят при всех кишечных заболеваниях, сопровождающихся рвотой, и в случаях промывания желудка. Первичный посев и выделение сальмонелл из крови. Первый день. Кровь больного засевают немедленно после взятия во флакон с 10—20% желчным бульоном (рец. 76) или в среду Рапопорт (рец. 77). Желчь, содержащаяся в питательных средах, способствует росту тифопаратифозных бактерий, подавляет действие антител и предотвращает свертывание крови.

Высокий процент высеваемости тифопаратифозных бактерий отмечается также при посеве крови на голодную среду Клодницкого (рец. 78). Объем питательной среды для подавления бактерицидных свойств сыворотки должен в 10 раз превышать количество засеваемой крови. Второй день.

1. Просматривают колбы с посевами. Размножение бактерий тифопаратифозной группы в среде Рапопорт проявляется уже через 24—48 ч; питательная среда, совершенно прозрачная до посева, становится мутной. На дне сосуда обнаруживается желто-серый гомогенный осадок белков крови. Изменяется и цвет питательной среды: из желтой она становится розоватой вследствие восстановления индикатора Андреде, что свидетельствует о расщеплении с образованием кислоты входящих в ее состав глюкозы или ман-нита. Размножение паратифозных бактерий сопровождается появлением газа в поплавке. Размножение бактерий в желчном бульоне или стерильной воде (при посеве крови по Клодницкому) в первые 2—3 дня после произведенного посева не всегда сопровождается помутнением среды.

2. Из среды с первичным посевом крови независимо от того, имеются ли в ней внешне выраженные признаки микробного? роста, делают высев на чашки с висмут-сульфитным агаром (рец. 82), средой Плоскирева (рец. 81), Эндо (рец. 79) и Левина (рец. 80). Засеянные среды помещают в термостат вместе с первичным посевом крови; его сохраняют для повторных высевов на тот случай, если на плотных питательных средах не обнаружатся колонии, характерные для тифопаратифозных бактерий.

Повторные высевы со сред обогащения производят на 2-е, 3-й, 5-е, 7-е и 10-е сутки. В случае отсутствия характерных колоний после высева, произведенного на 10-е сутки, лаборатория дает отрицательный ответ и прекращает исследование. Первичный посев и выделение сальмонелл из дуоденального содержимого. Желчь, полученную для бактериологического исследования, засевают:

а) на плотные питательные среды Плоскирева (рец. 81), висмут-сульфитный агар (рец. 82), среду Левина (рец. 80) и Эндо (рец. 79); б) во флаконы с бульоном так, чтобы соотношение между исследуемым материалом и питательной средой составляло 1:10. Оставшийся от посева материал, являющийся питательной средой, благоприятной для бактерий, ставят в термостат вместе с посевами. В течение 10 дней из него производят высевы на плотные дифференциально-диагностические среды.

При обнаружении колоний, подозрительных на патогенные бактерии кишечной группы, дальнейшее изучение посевов крови и дуоденального содержимого ведется по общей схеме, приводимой ниже. В настоящее время для диагностики бактерий группы сальмонелл медицинская промышленность Советского Союза выпускает следующий набор сывороток.

1. Агглютинирующая адсорбированная поливалентная сальмонеллезная О-сыворотка (группы А, В, С, D, Е).

2. Агглютинирующая адсорбированная поливалентная сальмонеллезная О-сыворотка редких групп (по рецепторам).

3. Агглютинирующие адсорбированные сальмонеллезные О-сывороткн, рецепторы (с 1-го по 53-й).

4. Агглютинирующие адсорбированные сальмонеллезные Н-сывороткн, рецепторы (а, Ь, с, d, е — до г 36; 1,5; 1,6; 1,7).

5. Агглютинирующая неадсорбированная брюшнотифозная сыворотка.

6. Агглютинирующая неадсорбированная паратифозная А-сыворотка.

7. Агглютинирующая неадсорбированная паратифозная В-сыворотка.

8. Агглютинирующая неадсорбированная сыворотка S. typhimurium.

9. Агглютинирующая неадсорбированная сыворотка S. cholerae suis.

10. Агглютинирующая неадсорбированная сыворотка S. newport.

11. Агглютинирующая неадсорбированная сыворотка S. enteritidis.

Сухие, адсорбированные поливалентные и монорецепторные сыворотки разводят 1—2 мл (как указано на этикетке ампулы) стерильного изотонического раствора хлорида натрия, что соответствует первоначальному объему сыворотки до высушивания. Растворенные сыворотки используют в реакции агглютинации на стекле без дополнительного разведения. Культуры бактерий, не реагировавшие со смесью сывороток; А, В, С, D и Е, испытывают со смесью О-сывороток редко встречающихся групп сальмонелл: F, Q, Н, I и т. д. и затем при положительном результате реакции агглютинации испытывают раздельно с каждой монорецепторной О-сывороткой, входившей в состав смеси.