- •Эталоны ответов на вопросы для подготовки к промежуточной аттестации по дисциплине оп.09. «Основы микробиологии и иммунологии» для отделения 060101 – «Лечебное дело».
- •1. Классификация и строение бактерий.
- •2. Питание бактерий. Фазы роста бактерий на питательных средах.
- •3. Классификация питательных сред и основные требования к ним.
- •4. Дыхание бактерий. Ферменты и токсины бактерий.
- •5. Распространение микроорганизмов в почве, воде и воздухе.
- •6. Влияние факторов внешней среды на рост и размножение микроорганизмов.
- •7. Стерилизация. Способы и контроль стерилизации.
- •8. Дезинфекция и её виды. Асептика и антисептика.
- •9. Классификация, строение и репродукция вирусов.
- •10. Бактериофаги, их строение, классификация и пути взаимодействия с клеткой.
- •11. Генетика бактерий. Внехромосомная днк и пути её передачи.
- •12. Понятие об инфекционном процессе. Основные группы инфекционных болезней. Периоды и осложнения инфекционных болезней.
- •13. Антибактериальные средства. Определение чувствительности к антибиотикам.
- •14. Основные факторы эпидемического процесса. Классификация инфекционных болезней по распространенности.
- •15. Внутрибольничные инфекции – причины, источники и механизмы передачи.
- •16. Классификация, строение и физиология грибов.
- •17. Общая характеристика и классификация простейших.
- •18. Особенности жизнедеятельности гельминтов.
- •19. Виды иммунитета и их характеристика.
- •20. Неспецифические факторы защиты организма от микробов.
- •21. Фагоцитоз и его стадии. Причины незавершенного фагоцитоза.
- •22. Специфические факторы защиты организма от антигенов.
- •23. Основные компоненты иммунной системы.
- •24. Свойства антигенов, их виды и пути проникновения в организм человека.
- •25. Антитела, их виды, строение и роль в образовании иммунитета.
- •26. Серологические реакции.
- •27. Иммунодефицитные состояния.
- •28. Медицинские иммунобиологические препараты.
- •29. Аллергия, её виды и причины возникновения. Анафилактический шок.
- •30. Нормальная микрофлора человека. Дисбактериоз.
- •31. Возбудители бактериальных кишечных инфекций: брюшного тифа, ботулизма.
- •32. Возбудители бактериальных кишечных инфекций: дизентерии, холеры.
- •33. Возбудители бактериальных респираторных инфекций: дифтерии, коклюша.
- •34. Возбудители бактериальных респираторных инфекций: скарлатины.
- •35. Возбудители бактериальных респираторных инфекций: менингококковой инфекции.
- •36. Возбудители бактериальных респираторных инфекций: туберкулеза.
- •37. Возбудители бактериальных кровяных инфекций: чумы, туляремии.
- •38. Возбудители бактериальных кровяных инфекций: боррелиозов, риккетсиозов.
- •39. Возбудители бактериальных инфекций наружных покровов: сибирской язвы, столбняка.
- •40. Возбудители бактериальных инфекций наружных покровов: сифилиса, гонореи.
- •41. Возбудители инфекционных болезней, вызванных условно-патогенными бактериями: стафилококками, кишечными палочками.
- •42. Возбудители грибковых кишечных инфекций.
- •43. Возбудители грибковых респираторных инфекций.
- •44. Возбудители грибковых инфекций наружных покровов.
- •45. Возбудители оппортунистических грибковых инфекций.
- •46. Возбудители протозойных кишечных инвазий: дизентерийная амёба, лямблии, балантидий.
- •47. Возбудители протозойных кровяных инвазий: малярийный плазмодий.
- •48. Возбудители протозойных кровяных инвазий: лейшмании, трипаносомы.
- •49. Токсоплазма – источники, пути заражения, жизненный цикл и основные проявления токсоплазмоза.
- •50. Особенности морфологии и жизнедеятельности гельминтов: печёночный сосальщик.
- •51. Особенности морфологии и жизнедеятельности ленточных червей: бычий цепень, свиной цепень.
- •52. Особенности морфологии и жизнедеятельности круглых червей: аскарида.
- •53. Возбудители вирусных кишечных инфекций: гепатита а, ротавирусной инфекции.
- •Соблюдать элементарные гигиенические правила: мыть руки, использовать термическую обработку для всех овощей и фруктов. Вакцины и вакцинация против вируса гепатита а
- •54. Возбудители вирусных кишечных инфекций: полиомиелита.
- •55. Возбудители вирусных респираторных инфекций: гриппа, парагриппа.
- •56. Возбудители вирусных респираторных инфекций: кори, краснухи.
- •57. Возбудители вирусных респираторных инфекций: ветряной оспы, натуральной оспы.
- •58. Возбудители вирусных кровяных инфекций: гепатита в, гепатита с.
- •59. Возбудители вирусных кровяных инфекций: спиДа.
- •60. Возбудители вирусных инфекций наружных покровов: бешенства, цитомегалии.
7. Стерилизация. Способы и контроль стерилизации.
Стерилизация — уничтожение различных микроорганизмов и их спор с помощью физических и химических факторов. К физическим факторам стерилизации относятся высокая температура, ультрафиолетовые лучи, ионизирующие излучения, ультразвук и фильтрование через бактериальные фильтры. В лабораторной практике стерилизация с помощью высокой температуры достигается прокаливанием на пламени, прогреванием сухим жаром, кипячением, обработкой текучим паром или паром под давлением.
Стерилизация на пламени является простым и надежным методом для обработки различных термоустойчивых объектов: игл, бактериальных петель, микробиологических шпателей, пипеток, предметных и покровных стекол, пинцетов и т. п. Стерилизация сухим жаром производят в сушильном шкафу (печь Пастера). Этим методом стерилизуют только сухие предметы — лабораторную посуду, перевязочный материал и т. п. Сушильный шкаф представляет собой небольшой железный шкаф, с двойными стенками, между которыми вложен теплоизоляционный материал (асбест, стекловата). Чисто вымытые пробирки и флаконы закупоривают ватными пробками; пипетки, вату, марлю заворачивают в бумагу и помещают на полки шкафа так, чтобы стерилизуемые предметы не касались горячих стенок прибора и нагретый воздух свободно проникал между ними. Стерилизация в сушильном шкафу продолжается 45 минут — 1 час при t° 160—170°, При температуре выше 175° бумага и вата сгорают. Кипячение в воде уничтожает неспоровые формы микробов за 1—3 мин. Шприцы, иглы, ножи, небольшие инструменты и т. п. можно кипятить в металлических стерилизаторах и даже в обычной кастрюле. Прибавление к воде небольшого количества гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) повышает эффективность стерилизации. Флаконы, пробирки или ампулы с жидкостью можно стерилизовать кипячением в водяной бане (рис. 5). Однократное кипячение не уничтожает спор микробов, поэтому при необходимости применяется фракционная стерилизация, т. е. кипячение по 30—40 минут в течение трех дней подряд Стерилизация паром под давлением — наиболее надежный способ стерилизации; при однократной обработке материала уничтожаются не только вегетативные формы бактерий, но и их споры. Стерилизация паром под давлением проводят в специальных приборах — автоклавах под давлением до 1 избыточной атмосферы (am), что соответствует t° 119—120°. Таким путем в течение 15—20 мин. производят стерилизацию заразного материала, посуды, приборов, особенно имеющих резиновые части, питательных сред, не содержащих нативного белка и углеводов. Основные части автоклава: кожух, водопаровая камера, стерилизационная камера, крышка с резиновой прокладкой. Водопаровая камера из специальной высококачественной; стали предназначена для получения пара. Предназначенный для стерилизации материал помещают в стерилизационную камеру. Массивная крышка с резиновой прокладкой наглухо закрывает водопаровую камеру. Система подачи нагретого пара отделена от стерилизационной камеры. Пар подается в стерилизационную камеру через патрубок от котелка, снабженного электронагревательным элементом с регулятором степени нагрева. К автоклаву придается арматура: манометр с сифонной трубкой и трехходовым краном, водомерная стеклянная трубка для измерения уровня воды в водопаровой камере автоклава, предохранительный клапан для предупреждения чрезмерного повышения давления в автоклаве, воздушный и спускной краны для удаления воздуха в начале стерилизации и для удаления конденсата из стерилизационной камеры.
Лучевая (холодная) стерилизация — метод, при котором в качестве стерилизующего агента применяются некоторые виды ионизирующих излучений, пригодных для стерилизации пищевых продуктов, перевязочных материалов, лечебных и диагностических препаратов, антибиотиков, вакцин. Для стерилизации обычно используют гамма-излучения радиоактивных веществ и электроны высоких энергий, полученные на ускорителях. Для получения стерилизующего эффекта необходимы высокие дозы облучения. Так, для гибели дрожжевых клеток необходимо облучение в дозе 200 000 р, а бактерий кишечной группы — 400 000—600 000 р. Для обеспложивания материалов, содержащих споры бактерий, необходимы еще большие дозы — 1,5— 2,5 млн. р. Стерилизация ультрафиолетовым облучением проводится с помощью любого источника ультрафиолетовых лучей, чаще всего бактерицидных ламп. Бактерицидные лампы можно применять для обеззараживания воздуха и поверхностей помещений, различных предметов и оборудования, воды и пищевых продуктов. При работе с бактерицидными лампами, когда они находятся в поле зрения, надо обязательно защитить глаза специальными очками и иметь в виду, что облучение бактерицидной лампой может вызвать ожог кожи лица и рук. Стерилизация при помощи бактериальных фильтров применяется в тех случаях, когда стерилизуемые растворы (среды) не переносят нагревания, когда необходимо удалить микробы из той или иной жидкости, существенно не нарушив ее состава и свойств. Например, фильтруют воду, загрязненную микробами, мочу, асцитическую жидкость, кровяную сыворотку, а также бульонные культуры для получения содержащихся в бульоне продуктов обмена веществ бактерий (микробные яды, антибиотики и пр.). После фильтрования все эти жидкости оказываются стерильными, так как фильтры надежно задерживают микробы. Контроль стерилизации. Эффективность стерилизации контролируют химическими индикаторами (веществами, имеющими определенную точку плавления), реже — биологической пробой. При первом способе вещество-индикатор, смешанное с каким-нибудь красителем, в запаянной стеклянной трубочке помещают в автоклав и по его расплавлению и окрашиванию определяют температуру, при которой проводили стерилизацию. Для этой цели употребляют бензонафтол (t° плавления 110°), антипирин (t° плавления 110— 112°), резорцин (t° плавления 110°), серу (t° плавления 120°), бензойную кислоту (t° плавления 121,7°). При втором способе внутрь автоклава в стерильной упаковке кладут шелковые нити, смоченные споровым материалом; после окончания стерилизации их переносят на питательные среды и выращивают в течение 2—3 суток при t° 37°. Отсутствие роста указывает на хорошее качество обработки материала.
