Некоторые возрастные особенности антигенов, антител и правил переливания крови

Групповые антигены. В онтогенезе человека антигены системы АВО появляются у эмбриона на 5-6 неделе развития, а О и Н антигены формируются в более поздние сроки. Формирование антигенов резус происходит также в раннем эмбриональном периоде. Так, антигены С, D, E выявляются у плода на 10-14 неделе внутриутробной жизни. Групповые антигены в большинстве систем полностью развиваются к моменту рождения ребенка и активность их в дальнейшем сохраняется почти на постоянном уровне (однако отмечено, что максимальная активность антигена А достигается в 3 года). Исключением являются антигены системы Левис и Р, слабовыраженные при рождении; антигены I системы Ай почти не проявляют свою активность у новорожденных и развиваются только к 18 мес жизни; антиген Rho(D), у которого, наоборот, активность к концу эмбрионального развития выше, чем у взрослого человека.

Групповые естественные антитела лишь системы АВО являются врожденными, хотя их максимальное количество и активность отмечается у детей 5-10 лет и именно с этого возраста ярко проявляются реакции несовместимости при переливании. Групповые иммунные антитела в большинстве других систем при рождении либо совсем не выражены, либо слабо и развиваются в течение первого года жизни. Полного развития они достигают к 18 годам, а в старости титр их снижается. Кроме того, титр групповых антител подвержен сезонным колебаниям.

При переливании крови в детской практике не допускается вводить сыворотку или плазму группы I(O) реципиентам с другой группой крови, а также переливание разногруппной цельной крови. Детям можно переливать только одногруппную кровь по системе АВО и в случае необходимости, эритроциты группы I(O), тщательно отмытые от плазмы.

Самостоятельная работа студентов

Для самостоятельной работы необходимы: водяная баня, клиническая центрифуга, стерильные скарификаторы, шприц инъекционный однократного применения, медицинский жгут, штатив с пробирками, штатив Панченкова с капиллярами, часовое стекло, мерные пипетки, планшетки для определения групп крови, предметные стекла, стеклянные палочки, спиртовка; 0,85, 0,7, 0,45, 0,3% растворы NaCl, дистиллированная вода, 5% раствор цитрата Na, 3н раствор аммиака, хлороформ (или эфир), 1 н раствор HCl, реагенты (цоликлоны:анти-А, анти-В и анти-АВ, анти-D Супер, анти-D), две серии стандартных сывороток I(0), II(А), III(В) групп, полиглюкин (или альбумин), стандартные аллоимунные анти-Rh сыворотки, 10 % раствор желатина, эритроциты заранее типированных доноров II(А), III(В) групп крови (либо смесь от 2-3 одногруппных эритроцитов), спирт, вата.

Работа 1. Определение осмотической резистентности эритроцитов

Эритроциты характеризуются различной устойчивостью к повреждающим факторам. Более высокую осмотическую стойкость имеют молодые формы эритроцитов, старые и некоторые патологические формы эритроцитов менее устойчивы к осмотическому повреждению. В связи с этим определение этого показателя имеет диагностическое значение. Так, необходимость оценки осмотической стойкости возникают при выявлении некоторых анемий гемолитического характера. При наследственной микросфероцитарной гемолитической анемии она уменьшается (минимальная  0,6-0,7% NaCl, а максимальная  0,3-0,25% NaCl). Устойчивость эритроцитов можно оценить количественно с помощью гипотонических растворов NaCl.

Ход работы. Для точного определения этого показателя применяют растворы хлорида натрия, различающиеся по концентрации на 0,02% в последовательном ряду от 0,60 до 0,24. Используется также более упрощенный способ определения осмотической резистентности эритроцитов. В пробирки одинакового размера наливают по 5 мл растворов хлорида натрия: изотонического (0,85-0,9%) и гипотонических (0,7%, 0,45%, 0,3%). В пятую пробирку наливают 5 мл дистиллированной воды. Затем добавляют во все пробирки по 0,3 мл взвеси эритроцитов, тщательно перемешивают и ставят штатив на 40-60 мин. После этого времени по степени прозрачности жидкости в пробирках определяют, где произошел гемолиз и в какой мере. При полном гемолизе жидкость прозрачна и относительно ярко окрашена (лаковая кровь). При частичном гемолизе раствор окрашен слабее и в нижней части пробирки жидкость мутная. При отсутствии гемолиза жидкость окрашена слабо, мутная, за исключением верхнего ободка. На основании этого определяют (в % концентрации NaCl) минимальную устойчивость эритроцитов по появлению признаков гемолиза и максимальную устойчивость по возникновению полного гемолиза.

Рекомендации к оформлению работы. В результатах укажите показатели минимальной и максимальной осмотической резистентности эритроцитов, в анализе сравните их с нормальными показателями.