- •Микробиология, вирусология
- •Содержание
- •Введение
- •Тематический План практических занятий
- •Образец экзаменационного билета
- •Гбоу впо хмао-югры Ханты-Мансийская государственная медицинская академия
- •Индивидуальная карта студента, допущенного для выполнения экзаменационной работы по дисциплине микробиология, вирусология
- •Результаты экзамена
- •Нормировка рейтинга к стандартной оценке
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Видовая идентификация стафилококков
- •Дифференциация стрептококков и энтерококков
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Определение вирулентности на белой мыши
- •Микроскопия исследуемого материала
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Дифференцированные свойства некоторых видов рода Neisseria
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Биотипирование Haemophilus influenzae
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Дифференциация коринебактерий
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Серологическая диагностика острой дизентерии
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Биохимические свойства эшерихий и шигелл
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Результаты реакции Видаля больного п.
- •Результаты реакции Видаля больного т.
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Биохимическая активность сальмонелл
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Сероидентификация в реакции агглютинации с о-холерной сывороткой и типовыми сыворотками Огава и Инаба
- •Определение биовара холерного вибриона
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Сахаролитические свойства вибрионов на триаде Хейберга
- •Дифференциация биоваров Vibrio choleraе
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Дифференциация некоторых условно-патогенных грамотрицательных бактерий
- •Интерпретация результатов исследования при кандидозе
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Серологический метод диагностики
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Вопросы для подготовки
- •Сальмонеллы – возбудители брюшного тифа, паратифа а и паратифа в
- •Сальмонеллы – возбудители пищевых токсикоинфекций и генерализованного сальмонеллеза
- •Протеи – возбудители пищевых токсикоинфекций и уроинфекции
- •Диареегенные эшерихии – возбудители кишечных коли-инфекций
- •Патогенные вибрионы – возбудители холеры
- •Шигеллы – возбудители дизентерии
- •Иерсинии – возбудители кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза
- •Кампилобактерии – возбудители кампилобактериоза
- •Хеликобактерии – возбудители хеликобактериоза
- •Бруцеллы – возбудители бруцеллеза
- •Yersinia pestis – возбудитель чумы
- •Bacillus anthracis – возбудитель сибирской язвы
- •Francisella tularensis – возбудитель туляремии
- •Pseudomonas aeruginosa – возбудитель гнойно-септических инфекций человека
- •Стафилококки – возбудители гнойно-воспалительных инфекций человека
- •Стрептококки – возбудители раневой, гнойно-воспалительной и септической инфекции
- •Streptococcus pyogenes – возбудитель скарлатины
- •Streptococcus pneumoniae – возбудитель пневмококковой пневмонии
- •Neisseria meningitidis – возбудитель менингококковой инфекции
- •Neisseria gonorrhoeae – возбудитель гонореи
- •Клостридии – возбудители газовой гангрены
- •Clostridium tetani – возбудитель столбняка
- •Clostridium botulinum – возбудитель ботулизма
- •Неклостридиальные облигатные анаэробы (ноа) – возбудители гнойно-воспалительных заболеваний человека
- •Bordetella pertussis – возбудитель коклюша
- •Микобактерии – возбудители туберкулеза
- •Микобактерии – возбудители микобактериозов
- •Corynebacterium diphtheriae – возбудитель дифтерии
- •Дифтероиды – возбудители оппортунистических инфекций
- •Treponema pallidum – возбудитель сифилиса
- •Leptospira interrogans – возбудитель лептоспироза
- •Боррелии – возбудители боррелиозов (возвратный тиф и болезнь Лайма)
- •Mycoplasma pneumoniae – возбудитель острой пневмонии
- •M. Hominis и Ureaplasma urealiticum – возбудители урогенитального микоплазмоза
- •Chlamydia trachomatis – возбудитель урогенитального хламидиоза
- •Контрольные микропрепараты
- •Контрольные макропрепараты
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Результаты рга и ртга
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Справочный материал для оформления протоколов
- •Вопросы для подготовки
- •Задания для подготовки
- •Практическая работа
- •Вопросы для подготовки
- •Нейротропные вирусы
- •Энтеровирусы, Ротавирусы
- •Респираторные вирусы
- •Ретровирусы, Онкогенные вирусы, прионы
- •Контрольные макропрепараты
- •1. Бактериологическое исследование при подозрении на сепсис или бактериемию
- •2. Бактериологическое исследование грудного молока
- •3. Бактериологическое исследование мочи
- •4. Бактериологическое исследование спинномозговой жидкости (смж)
- •5. Бактериологическое исследование желчи
- •6. Бактериологическое исследование отделяемого дыхательных путей
- •7. Бактериологическое исследование раневого отделяемого
- •8. Бактериологическое исследование отделяемого женских половых органов
- •Библиографический Список Обязательная
- •Дополнительная
- •При составлении методического пособия была использована следующая литература:
- •Микробиология, вирусология
6. Бактериологическое исследование отделяемого дыхательных путей
Для исследования используют отделяемое зева и носа; мокрота; содержимое бронхов, экссудаты; резецированные ткани и др. Материал собирают с соблюдением правил асептики в предварительно простерилизованную тару и доставляют в лабораторию. Интервал между взятием материала и его посевом не должен превышать 1-2 ч.
Мокроту собирают утром во время приступа кашля в стерильную банку со стеклянными бусами, для «разбивания» кусочков гноя. Перед откашливанием больному необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой для удаления остатков пищи, эпителия и микрофлоры ротовой полости.
Промывные воды бронхов собирают при отсутствии или скудном количестве мокроты, для забора производят смыв из бронхов физиологическим раствором, однако, при этом микробиологическая ценность исследования снижается из-за разведения секрета (часто значительного) и бактерицидного действия раствора на чувствительные микроорганизмы, поэтому нередко концентрация бактерий в бронхиальном содержимом в 10-1000 раз ниже, чем в мокроте.
Пунктат инфильтрата или абсцесса легкого собирают до прорыва инфильтрата или абсцесса в дренирующий бронх.
Глотку, ротовую полость и нос часто исследуют при различного рода воздушно-капельных инфекциях (менингококк, коклюш, дифтерия и др.). Материал из ротовой полости берут натощак или через 2 ч после еды стерильным ватным тампоном или ложечкой со слизистой оболочки или ее пораженных участков у выходов протоков слюнных желез, поверхности языка, из язвочек. При наличии пленки ее снимают стерильным пинцетом. Материал из носовой полости забирают сухим стерильным ватным тампоном, который вводят в глубь полости носа. Материал из носоглотки берут стерильным заднеглоточным ватным тампоном. Если при этом у обследуемого начинается кашель, тампон не удаляют до его окончания. При исследовании на менингококк материал забирают дважды с интервалом 1-2 дня. Для этого заднеглоточный тампон заводят концом вверх за мягкое небо и собирают материал с задней стенки мягкого неба, затем с задней стенки носоглотки.
Для посева используют питательные среды подобранные в соответствии с приказом МЗ СССР № 535 от 22.04.85 г кровяной агар (основная питательная среда), желточно-солевой агар, «шоколадный» агар, среда Эндо и среда Сабуро (дополнительные питательные среды).
Отделяемое дыхательных путей на чашки тампоном или шпателем Дригальского (мокрота, промывные воды бронхов) Мокроту перед посевом гомогенизируют и отмывают, если необходимо комочки гноя стерильным физиологическим раствором. Посевы исследуемого материала (мокрота, содержимое бронхов, отделяемое зева, носа, ротовой полости) просматривают после 18-24 ч инкубации. Учитывают количество выросших колоний, соотношение отдельных ассоциантов, описывают характер колоний. Делают заключение о болезни обследуемого, используя следующие критерии:
I – очень скудный рост (рост единичных колоний, до 10 штук);
II – скудный рост (рост 10-25 колоний);
III – умеренный рост (рост множества сосчитываемых колоний не менее 50 штук);
IV – обильный рост (сплошной рост количество колоний не сосчитать).
I, II степени роста – свидетельствуют о носительстве или контаминации
III, IV степени роста обычно об этиологической роли данного микроорганизма.