- •3.3.9. Цитохимические исследования
- •Эритроцитов
- •Фетальный гемоглобин. Метод Ветке.
- •3.4.5. Цитохимические исследования
- •35 Мл буферного раствора.
- •1969, № 1, С. 377—383; Шубич м. Г., Нестеро-
- •Пероксидаза (миелопероксида-
- •5 П/р в. В. Меньшикова 129
- •Кислая а-нафтилацетат-эстераза.
- •Нафтол-as ацетат-эстераза. Метод
- •Нафтол-as d-хлорацетат-эстера-
- •Метод Пигаревского (модифицированный).
- •Метод с бромфеноловым синим (по м. Г. Шу-
- •Окраска судаком 111 (метод Гольдмана).
- •0,9 % Раствора хлорида натрия. 2. 0,1 % вод-
35 Мл буферного раствора.
С п е ц и а л ь н о е о б о р у д о в а н и е .
Холодильник.
Х о д и с с л е д о в а н и я . Высохшие на воз-
духе мазки фиксируют в 10 % растворе фор-
малина в абсолютном метаноле при температуре
О—5 °С в течение 30 с. На высохшие мазки нано-
сят инкубационную среду после фильтрования
и оставляют мазки при комнатной температуре
на 8—10 мин. Ополаскивают в проточной воде
в течение 10 с. Докрашивают метиловым зеле-
ным в течение 15 мин или гематоксилином Май-
ера 3—4 мин.
Метод азосочетания (модификация М. Г. Шу-
бича). П р и н ц и п см. метод азосочетания по
Кеплоу.
Р е а к т и в ы . I. 0,5 % раствор целлоидина
в смеси равных количеств абсолютного спирта
и эфира. Целлоидин можно готовить из кино-
и фотопленок по методике Меркулова: удалить
слой эмульсии после вымачивания в горячей во-
де или щелочи, выдержать 5—10 дней в трех
сменах хлороформа, промыть спиртом, высу-
шить, мелко нарезать и растворить в смеси
абсолютного спирта с эфиром. 2. 0,5 М раствор
тетрабората рН 9,18 [19,1 г тетрабората натрия
(бура) растворить и довести дистиллированной
водой до 1 л]. Раствор стойкий. 3. 0,1 % рас-
твор а-нафтилфосфата в растворе тетрабората
(готовят перед употреблением). 4. 0,2 % раствор
диазоля синего 0 в растворе тетрабората (гото-
вят перед употреблением и фильтруют в защи-
щенном от света месте). 5. Гематаль 8 Бейкера:
один объем 0,1 % гематеина, приготовленного
на 50 % водном растворе этиленгликоля, смеши-
вают с одним объемом 1,6 % водного раствора
сульфата алюминия. Вместо гематаля можно
использовать гематоксилин: 1 г краски раство-
ряют в 50 мл дистиллированной воды, доводят
до кипения, доливают 50 мл дистиллированной
воды, добавляют 0,02 г йодата натрия и 5 г
алюмокалиевых квасцов, встряхивают до раст-
ворения и охлаждают. 6. Инкубационная среда
(готовят перед употреблением); равные коли-
чества реактивов 3 и 4.
С п е ц и а л ь н о е о б о р у д о в а н и е . Хо-
лодильник.
Ход о п р е д е л е н и я . Мазки фиксируют
в 0,5 % растворе целлоидина в течение 3—5 с.
После фиксации целлоидин с обратной стороны
предметного стекла удаляют салфеткой, стекла
ставят в вертикальном положении на фильтро-
вальную бумагу и дают им высохнуть. Инкуби-
руют в инкубационной среде при комнатной
температуре в защищенном от света месте в те-
чение 30 мин. Промывают в проточной воде в те-
чение 5—10 мин и ополаскивают в дистиллиро-
ванной воде. Докрашивают ядра красителем
(реактив 5). При использовании гематаля 8 маз-
ки окрашивают 18—24 ч, затем ополаскивают
в дистиллированной и проточной воде и высу-
шивают. При использовании гематоксилина маз-
ки окрашивают 30—60 мин, ополаскивают в тет-
раборатном буфере, разведенном водопроводной
водой, промывают водой и высушивают.
Н о р м а л ь н ы е в е л и ч и н ы . У здоровых
людей большинство сегментоядерных нейтрофи-
лов являются фосфатазоотрицательными и толь-
ко в 20—30 % клеток выявлена слабая актив-
ность фермента ( + )• По данным М. Г. Шубича
и Б. С. Нагоева, активность фосфатазы для
здоровых обоего пола составляет 26,6 ед.,
или СЦК 0,26 + 0,006. Выявлено достоверное
различие между показателями энзиматической
активности у мужчин и женщин (соответственно
21 Ѓ}0,7 и 31 Ѓ}0,8 ед.).
К л и н и ч е с к о е з н а ч е н и е . Наиболь-
шее диагностическое значение имеет определе-
ние активности фермента при гемобластозах;
снижение активности характерно для хроничес-
кого миелолейкоза, повышение — рассматри-
вают как один из признаков эритремии. Повы-
шение активности наблюдается также при вос-
палительных процессах, интоксикациях, опухо-
лях, коллагенозах, циррозах печени. Показатель
может быть использован как дифференциально-
128
диагностический признак при лейкемоидных ре-
акциях (активность фермента повышена) и хро-
ническом миелолейкозе. Снижение активности
фермента часто сопутствует вирусному гепатиту,
инфекционному мононуклеозу и другим вирус-
ным инфекциям, лучевой болезни.
Л и т е р а т у р а . Буйкис И. М., Руденс Ю. Ф.
Гистохимическое определение активности ще-
лочной фосфатазы методом одновременного
азосочетания.— Вопросы лейкозологии (Рига),
1969, № 1,с. 369—376; Шубин М. Г.— Лаб. дело,
1965, № 1, с. 10—14; Шубин М. Г., Нагоев Б. С.
Щелочная фосфатаза лейкоцитов в норме и па-
тологии.— М.: Медицина, 1980, с. 41; Kaplow L.
Blood, 1955, vol. 10, № 10, p. 1023-1029.
КИСЛАЯ ФОСФАТАЗА (К. Ф. 3.1.3.2). Об-
наруживают преимущественно в нейтрофилах
и лимфоцитах крови; локализацию связывают
с лизосомами цитоплазмы клеток. Кислая фос-
фатаза является гидролитическим ферментом
с оптимумом действия рН 5,2. Для цитохими-
ческого исследования чаще используют методы
азосочетания.
Метод азосочетания Берстона (модификация
Ю. Ф. Руденса, И. М. Буйкиса). П р и н ц и п см.
Метод азосочетания по Кеплоу.
Реактивы. 1. 0,1 М раствор цитратного буфе-
ра (рН 5,2). 2. 0,05 М раствор хлорида магния.
3. Нафтол-АS-Фосфат (можно использовать
нафтол-АS-ТR-фосфат или нафтол-АS-В1-фос-
фат. 4. Диметилформамид. 5. Диазоль синий
2С или прочный синий ВВ. 6. Краситель Рома-
новского — Гимзы. 7. Изотонический раствор
хлорида натрия. 8. Инкубационная среда: 10 мг
нафтол-АS-Фосфата, растворенного в 5 мл диме-
тилформамида; 15 мл 0,1 М цитратного буфера
рН 5,2, 45 мл дистиллированной воды, 5 мл
раствора хлорида магния, 50 мг диазоля синего.
Готовят перед употреблением и используют по-
сле фильтрования.
С п е ц и а л ь н о е о б о р у д о в а н и е . Тер-
мостат.
Ход и с с л е д о в а н и я . Нефиксирован-
ные мазки инкубируют в инкубационной среде
при 37 °С в течение 2 ч. Промывают изотони-
ческим раствором хлорида натрия. Докрашива-
ют красителем Романовского — Гимзы. Промы-
вают в проточной воде. Активность фермента
выявляется в виде синей окраски.
Н о р м а л ь н ы е в е л и ч и н ы . В сегмен-
тоядерных нейтрофилах активность фермента
равна 38,6,82 ед., или СЦК 0,386 + 0,028, в
лимфоцитах —26,9Ѓ}1,94 ед., или СЦК 0,268Ѓ}
Ѓ}0,019. У детей активность кислой фосфатазы
в нейтрофилах выше, чем у взрослых.
К л и н и ч е с к о е з н а ч е н и е . Повыше-
ние активности наблюдается в нейтрофилах при
воспалительных процессах, при туберкулезе, ин-
фаркте миокарда, острых хирургических заболе-
ваниях, злокачественных опухолях. При этом
следует учитывать, что высокие цифры актив-
ности фермента могут быть результатом повы-
шения активности щелочной фосфатазы в ней-
трофилах, так как активность последней может
выявляться и в кислой среде. Поскольку при
всех указанных выше заболеваниях наблюда-
ется повышение активности и щелочной фосфа-
тазы, а при цитохимическом методе исследова-
ния обоих ферментов используют единый суб-
страт, при получении высокой активности кис-
лой фосфатазы М. Г. Шубич и И. В. Нестерова
предлагают проводить повторное исследование
после ингибирования щелочной фосфатазы с по-
мощью ЭДТА.
Повышение активности кислой фосфатазы
в лимфоцитах отмечается при иммунизации,
различных аллергических заболеваниях.
В властных клетках при острых лейкозах
характер распределения продукта реакции раз-
личен в зависимости от формы лейкоза. При
острых лимфобластных формах активность вы-
является в гранулярной форме, при миелоб-
ластных — в диффузной форме.
Л и т е р а т у р а . Берстон М. Гистохимия
ферментов.— М.: Мир, 1965, с. 215; Руденс Ю. Ф.,
Буйкис И. М. Вопросы лейкозологии (Рига),