- •Практические навыки
- •Содержание
- •Введение
- •1. Соблюдение правил противоэпидемического режима и техники безопасности в бактериологических лабораториях
- •1.1 Основные правила поведения в бактериологической лаборатории
- •1.2 Правила забора материала для микробиологических исследований
- •1.3 Правила забора материала, хранения и транспортировки при особо опасных инфекциях (оои)
- •1.4 Оформление направления на микробиологическое исследование
- •1.5. Дезинфекция в микробиологической лаборатории: рук, рабочего места, выделений больного, предметных и покровных стекол.
- •1.6 Стерилизация лабораторной посуды, подготовка к стерилизации
- •2. Овладение навыками изучения морфологии и тинкториальных признаков микроорганизмов
- •2.1 Этапы приготовления мазка для иммерсионной микроскопии
- •2.2 Овладение методикой микроскопирования с иммерсионной системой
- •2.3 Сложные методы окраски: методы Грама, Циля- Нильсена, Нейссера и Бурри-Гинса Окраска мазка по Граму
- •Окраска мазка по Циль-Нильсену
- •Окраска по Нейссеру
- •Окраска по способу Ожешки
- •Обнаружение капсул по методу Бурри-Гинса
- •2.4 Методы определения подвижности бактерий Микроскопические
- •Бактериологические
- •3. Овладение навыками изучения культуральных, биохимических признаков микроорганизмов и фагочувствительности бактерий
- •3.1 Механические и биологические методы выделения чистых культур аэробных и факультативно-анаэробных бактерий
- •3.2 Метод Дригальского
- •3.3 Методы создания анаэробных условий (механические, физические, химические и биологический)
- •Физические методы удаления кислорода
- •Биологический метод удаления кислорода по Фортнеру
- •3.4 Этапы выделения чистой культуры анаэробных бактерий
- •3.5 Вирусологические методы
- •3.6 Реакция гемагглютинации (рга)
- •3.7 Методы индикации бактериофагов (качественные и количественные методы)
- •Индикация фага на твердой питательной среде по Отту.
- •3.8 Реакция фаголизиса
- •3.9 Реакция фаготипирования s.Aureus
- •4. Овладение навыками идентификации микроорганизмов по генетической структуре
- •4.1 Полимеразная цепная реакция (пцр)
- •4.2 Метод рекомбинации
- •5. Освоение принципов бактериологической оценки качества стерилизации и навыков определения антибиоткочуствительности
- •5.1 Контроль эффективности физического способа стерилизации (кипячение) бактериологическим методом
- •5.2 Определение антибиотикочусвтвительности бактерий методами «бумажных дисков» и серийных разведений Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом «бумажных дисков»
- •Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом серийных разведений
- •6. Бактериологическая диагностика дисбактериоза кишечника
- •7. Определение общего микробного числа (метод коха) и санитарно - показательных микробов воздуха
- •8. Биологический метод и методы идентификации бактерий по вирулентности
- •8.1 Заражение экспериментальных животных (биологический метод)
- •8.2 Методы определения факторов вирулентности микроорганизмов (адгезивности, ферментов агрессии бактерий: гиалуронидазы, лецитовителлазы, лизоцима; токсигенности, гемолизинов)
- •8.3 Методы определения персистентных свойств бактерий: капсулообразования, антигенов-ингибиторов фагоцитоза, антилизоцимной, антикомплементарной и антиинтерфероновой активностей
- •9. Иммунологичекие методы идентификации микроорганизмов и серодиагностики инфекционных заболеваний
- •9.1 Реакция агглютинации (ра) на стекле.
- •9.2 Развернутые реакции агглютинации Видаля, Вейгля и Райта
- •9.3 Рпга – реакция пассивной гемагглютинации (определение напряженности поствакцинального противодифтерийного и противоскарлатинозного антитоксических иммунитетов)
- •9.4 Реакция преципитации (рп): термопреципитации по Асколи и рп в геле по Оухтерлони
- •9.5 Идентификация с.Рerfringens по токсигенности в реакции нейтрализации токсина антитоксином (рн) на мышах
- •9.6 Идентификация вируса клещевого энцефалита в реакции нейтрализации вирусов (рн) на мышах
- •9.7 Реакция торможения гемагглютинации (ртга) (определение серотипа вируса гриппа а)
- •9.8 Реакции связывания комплемена: рск Борде-Жангу, рск, Вассермана, рибт – реакции иммобилизации бледной трепонемы
- •9.9 Опсоно-фагоцитарная реакция
- •9.10 Реакции непрямой иммунофлюоресценции (риф) (экспресс-диагностика и серологическая диагностика гриппа а)
- •9.11 Иммуноферментный анализ (ифа): конкуретный способ (определение hBs-аг вируса гепатита в) и непрямой способ (серологическая диагностика вич - инфекции)
- •9.12 Серологическая диагностика вич-инфекции с помощью реакции иммуноблоттинга
- •Рисунки
- •Список использованной литературы Основная литература
- •Дополнительная литература
- •3. Микробиология, вирусология: руководство к практическим занятиям: учебное пособие / Зверев в.В. ( и др.); под ред. В.В. Зверева, м.Н. Бойченко. – м.:гэотар- Медиа, 2015. – 360 с.:ил.
- •4. Медицинская микробиология и иммунология: Учебник / в.Н.Мальцев, е.П.Пашков; под ред. В.В. Зверева. – м.: Практическая медицина, 2014. – 512 с.:ил.
- •Коллектив авторов
7. Определение общего микробного числа (метод коха) и санитарно - показательных микробов воздуха
Для оценки санитарно-бактериологического состояния воздуха определяют следующих показателей: микробного числа воздуха (количество микробов в в 1м3 воздуха) методами осаждения по Коху и аспирации по Кротову, наличие зеленящего стрептококка путем посева воздуха на кровяной агар с добавлением генцианового фиолетового (среда Гарро), для обнаружения S. aureus – на желточно-солевой агар, для обнаружения других патогенных бактерий – соответствующие элективные питательные среды.
Определение микробного числа воздуха методом Коха проводится в 2 этапа:
1 этап. Отбор пробы воздуха. Стерильные чашки Петри с МПА открывают в месте отбора проб воздуха и выдерживают в течение 10 мин, после чего закрывают и инкубируют при 370С в течение 48 часов.
2 этап. Учет результатов. По количеству выросших колоний подсчитывают микробное число воздуха, пользуясь формулой Омелянского, в соответствии с которым считают, что на поверхность питательной среды площадью 100см2 в течение 5 мин оседает столько микроорганизмов, сколько их содержится в 10 л воздуха:
Х – количество микробов в 1м3 воздуха
X
=
а – число колоний, выросших на чашке
в – площадь чашки Петри, равная ПR 2
Метод Кротова является более точным методом определения микробного числа воздуха с помощью специального прибора.
8. Биологический метод и методы идентификации бактерий по вирулентности
8.1 Заражение экспериментальных животных (биологический метод)
Заражение экспериментальных животных может производиться в целях:
идентификации микроорганизмов по вирулентности;
выделения чистой культуры возбудителя из различных материалов и ее идентификации;
воспроизведения и изучения инфекционного процесса;
испытания лечебного эффекта химиотерапевтических и иммунологических препаратов.
получения иммунобиологических лечебно-профилактических и диагностических препаратов и др.
В зависимости от цели исследования заражают различных животных (кроликов, морских свинок, белых мышей, белых крыс и др.) различными способами: накожно, внутрикожно, подкожно, внутримышечно, внутривенно, перорально, интраназально, внутритрахеально, интрацеребрально и внутрибрюшинно.
Внутрибрюшинное заражение белых мышей с целью:
идентификации выделенной чистой культуры S.aureus по вирулентности;
установления формы инфекции по происхождению, локализации, длительности течениия, количеству возбудителя и др.
План работы первого этапа:
1. Суточную агаровую культуру S.aureus проверяют на чистоту
(готовят мазок и окрашивают по Граму).
2. Стерильным физ. раствором смывают культуру и готовят микробную взвесь соответствующей оптическому стандарту мутности (1мл – 1 мрд.мкр.тел)
3. Взвесь микробов (0,5 мл) набирают в шприц.
4. Заражают внутрибрюшинно белую мышь. Берут мышь левой рукой за хвост, фиксируют её в растянутом состоянии брюшком верх, головой вниз, чтобы кишечник переместился к диафрагме. В левой нижней трети живота делают прокол кожи под острым углом, затем устанавливают шприц под прямым углом, толчкообразным движением прокалывают брюшину и вводят содержимое шприца.
5. Зараженных животных маркируют и отправляют в лабораторию. Инструменты до и после заражения стерилизуют кипячением.
Второй этап. Вскрытие трупа с целью обнаружения возбудителя и идентификации путем микроскопического исследования и выделения чистой культуры.
План исследования:
Мышь фиксируют брюшком вверх в специальной подставке. Шерсть и кожу обрабатывают спиртом.
1. Макроскопическое исследование. Тщательно осматривают наружные покровы. Затем делают разрез кожи по прямой линии от нижней челюсти до лобка и боковые разрезы к лапкам. Отсепаровывают кожу в обе стороны от разреза. Отметить состояние подкожной клетчатки и лимфатических узлов. Обращают внимание на внешний вид лёгких, сердца. Осмотреть органы брюшной полости, характер экссудата, величину, цвет и консистенцию печени и селезенки.
2. Микроскопическое исследование. Приготовить следующие мазки и окрасить их методом Грама:: а) мазок из крови сердца; б) мазок-отпечаток легкого; в) мазок из асцитической жидкости (экссудата); г) мазок- отпечаток печени; д) мазок- отпечаток селезенки.
При микроскопии отмечают присутствие микроба-возбудителя в различных органах и тканях и по результатам исследования мазков оформить предварительное заключение.
3.Бактериалогические исследование. Параллельно с приготовлением мазков сделать посевы из тех же органов на 5 пробирок с МПБ:
а) для посева крови из сердца участок его поверхности прижигают раскалённым скальпелем и через прижжённый участок вводят капилляр стерильной пастеровской пипетки в полость сердца. Затем каплю крови из пипетки выдувают в пробирку с МПБ и на предметное стекло для приготовления мазка (мазок фиксируют спиртом в течение 3-5 минут);
б) из ткани лёгкого делают посев кусочка ткани в МПБ и приготовляют мазок – отпечаток;
в) разрезают брюшную стенку ножницами от диафрагмы до лобка. Обращают внимание на наличие экссудата, который собирают пастеровской пипеткой и засевают в МПБ. Каплю экссудата наносят на предметное стекло для окрашивания. Для приготовления мазков-отпечатков вырезают из печени, селезенки небольшие кусочки ткани, берут их пинцетом и прикасаются к предметному стеклу поверхностью разреза. Мазки-отпечатки фиксируют термическим способом;
г) результат посевов учитывают на следующий день после инкубации в термостате. Труп животного после вскрытия подлежит уничтожению;
д) учесть результаты посевов на питательных средах и оформить окончательное заключение (ответить на вопросы: 1.Вирулентна ли культура S.aureus? 2.Какие факторы вирулентности S.aureus Вы обнаружили? 3.От какой формы инфекции погибла мышь?).
