3. Пульсовая оксиметрия

Пульсовая оксиметрия - это быстрый и удобный метод постоянного слежения за насыщением кислородом артериальной крови (SaO₂). Хотя он не заменяет измерения газов артериальной крови, он представляет собой менее дорогую методику определения насыщенности крови кислородом и является более точным, чем визуальная оценка.

Пульсовая океиметрия измеряет, какой процент гемоглобина насыщен кислородом. Единственный кислород, доступный для клеточного дыхания, это кислород, отделившийся от гемоглобина. Если парциальное давление кислорода, измеряемое при анализе газов артериальной крови, нормальное, то количество гемоглобина, насыщенного кислородом, также будет нормальным.

Стандартный пульсовой оксиметр представляет собой фотоэлектрический прибор с двумя диодами, испускающими луч света через пигментированный наружный слой кожи, ткани, ногти, венозную и артериальную кровь.

Фотодетектор на противоположной стороне улавливает красные и инфракрасные лучи, испускаемые диодами, и измеряет только то количество света, которое поглощено оксигенированным и деоксигенированным гемоглобином в пульсирующем артериальном ложе (деоксигенированный гемоглобин поглощает больше красную часть спектра, а оксигенированный — больше инфракрасную часть).

У современных оксиметров есть плоские датчики, которые могут быть установлены в центральных точках тела, таких как область сонных артерий; они измеряют отраженный свет, а не проходящий.

Постоянное слежение за насыщением крови кислородом также может осуществляться с помощью фиброптического датчика, введенного в артерию.

Методика, которая продолжает совершенствоваться, заключается в проведении пучка света через фиброптическое волокно на кончик катетера, обработанного чувствительными, индикаторными составами.

Устройство, напоминающее камеру, регистрирует отраженный свет, который проходит через один из индикаторных реагентов, и показывает уровень рН и содержание диоксида углерода. Такие датчики могут также измерять содержание кислорода, электролитов, кардиоспецифических ферментов.

Подготовка пациента. После того как медсестра объяснит пациенту, что оксиметрия позволяет измерять содержание кислорода в крови, она должна укрепить оксиметр на одном из перечисленных мест: пальце ноги или руки, носу, мочке уха, лбу. Клеящиеся датчики для взрослых и детей и датчики-прищепки для взрослых могут быть прикреплены к указательному, среднему и безымянному пальцам.

У новорожденных, детей и взрослых клеящиеся датчики могут быть прикреплены к большому пальцу ноги, если у пациента нет нарушений кровообращения нижних конечностей.

Носовой датчик клеится на хрящевой области, под переносицей.

VII. Исследование мокроты

Мокрота собирается для посева патологической культуры, для определения ее чувствительности к антибиотикам, для проведения цитологического исследования. Результаты анализа мокроты позволяют установить диагноз, определить контагиозность заболевания, выбрать соответствующую тактику лечения. Если у больного туберкулезом в обычном или окрашенном мазке обнаруживаются кислотоустойчивые бациллы туберкулеза, то считается, что этот больной может быть заразным.

Если бациллы туберкулеза выявляются только при посеве мокроты, а в мазках их нет, то считается маловероятным, что этот больной может заразить других людей.

Мокрота поступает из легких и бронхов. Она может быть получена при отхаркивании пациента или при помощи ряда непрямых методов, таких как трахеальное отсасывание, эндотрахеальная аспирация, транстрахеальная аспирация, бронхоскопическое удаление, аспирация желудочного содержимого.

Аспирация желудочного содержимого проводится пациентам с подозрением на туберкулез натощак с помощью назогастрального зонда.

При прямом способе получения мокроты объясните пациенту, что он должен прочистить нос и глотку, прополоскать полость рта, для того чтобы уменьшить попадание микрофлоры из этих полостей в мокроту. Попросите пациента сделать несколько глубоких вдохов, а затем покашлять, напрягая диафрагму. Пациент должен сплюнуть мокроту в стерильный контейнер.

Перед тем, как отнести контейнер в лабораторию, убедитесь, что там мокрота, которая должна быть слизистой по консистенции, а не слюна. После сбора мокрота должна быть немедленно отнесена в лабораторию, так как в теплой среде количество микроорганизмов быстро увеличивается.

Если пациент не может глубоко откашляться, используйте аэрозольные препараты для стимуляции кашля. Мокрота лучше отделяется при повышенном потреблении жидкостей. Также мокроту лучше собрать при пробуждении пациента, перед тем, как он успеет ее проглотить.

Проводя лабораторное исследование, определяют цвет мокроты, ее запах, количество, характер (слои) и различные включения (примеси).

Консистенция мокроты бывает жидкой и вязкой. Запах нативной, т.е. свежевыделенной мокроты обычно зависит от характера патологического процесса. Так, при бронхоэктазах, абсцессе легкого мокрота имеет дурной запах, а при гангрене легких отличается зловонием.

Цвет мокроты связан с ее характером. Слизистая мокрота бесцветная или беловатая. Слизисто-гнойная и гнойная мокрота мутна, желтоватого или желтозеленного цвета.

Ржавая мокрота бывает при крупозной пневмонии. Коричневая мокрота является результатом разложения гемоглобина (при гангрене легкого).

Двухслойная мокрота характерна для абсцесса легкого, а при гангрене легкого мокрота имеет 3 слоя: верхний – пенистый со слизисто-гнойными включениями; средний – жидкий; верхний – рыхлый, хлопьевидный.

Примеси в мокроте – это слизь, гной, серозная жидкость. Слизистая мокрота выделяется в первые дни при катарах верхних дыхательных путей, вязкая слизистая – при крупозной пневмонии, стекловидная – при бронхиальной астме, гнойная мокрота – при гнойных процессах в легких (абсцесс, бронхоэктазы и т. д.).

Слизисто-гнойная мокрота характерна для большинства заболеваний бронхов и легочной паренхимы.

Кровянистая мокрота наблюдается при туберкулезе легких, бронхоэктазах и раке легкого, тогда как серозная мокрота с примесью крови выделяется преимущественно при отеке легкого.

При микроскопическом исследовании мокроты обнаруживаются эритроциты, лейкоциты, спирали Куршмана, кристаллы Шарко- -Лейдена, тирозин, жирные кислоты, пробки Дитриха, паразиты, фиброзные сгустки.

Цилиндрические клетки мерцательного эпителия обнаруживаются в мокроте при бронхитах.

При туберкулезе легких и ряде легочных заболеваний в мокроте можно обнаружить альвеолярный эпителий (круглые клетки с большим круглым ядром).

Единичные эритроциты и лейкоциты можно встретить и в мокроте здоровых людей, но их значительное количество всегда говорит о патологии.

Эритроциты легочного происхождения равномерно перемешаны с мокротой.

Гнойная мокрота сплошь состоит из лейкоцитов в различных стадиях перерождения. В ряде случаев в мокроте обнаруживается только детрит – масса мелких зерен продуктов распада лейкоцитов.

Бактериоскопическое исследование мокроты используется для выявления возбудителя легочной инфекции, таких, как пневмококки, стафилакокки, стрептококки, спирохеты и микобактерии туберкулеза.

Цитологическое исследование мокроты

Цитологическое исследование мокроты имеет существенное значение в диагностике бластоматоизных процессов, антипически протекающих форм туберкулеза, некоторых диссеминированных процессов, симулирующих туберкулез (гемосидероз, рак), медиастинально-легочной формы лимфогранулематоза